Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Muszinski, Diego Amaral
Data de Publicação: 2018
Tipo de documento: Trabalho de conclusão de curso
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da UFRGS
Texto Completo: http://hdl.handle.net/10183/233792
Resumo: Introdução: durante décadas, a única solução para estudar o comportamento de certos componentes celulares, foi pelo isolamento por fracionamento e purificação. Ou ainda através da fixação da célula num momento fisiológico completo, para poder aplicar diferentes técnicas de estudo. No entanto, dessa forma não é possível observar de forma direta, como os componentes celulares interagem entre si, ou a interação célula-a-células. Atualmente é possível o estudo da “célula viva”, e isso está para revolucionar e alterar os conceitos clássicos da biologia celular a uma grande velocidade. Objetivo: o objetivo deste estudo foi estabelecer as condições ideais para o estudo da captação e internalização de vesículas extracelulares por diferentes linhagens celulares utilizando técnicas de microscopia confocal em tempo real (time lapse). Método: utilizamos a técnica time lapse através da microscopia confocal para analisar as interações de células com vesículas extracelulares coletadas de células-tronco mesenquimais. Resultados: após fazermos imagens estáticas (in vitro) comprovamos que as vesículas extracelulares são internalizadas e, a partir de então, estabelecemos as técnicas e parâmetros para observar esse movimento. A partir de 2 h de incubação com as VEs verificou-se a presença das mesmas na região perinuclear. Através de microscopia time lapse (in vivo) observamos que a captação das VEs é muito rápida e ocorre nos primeiros minutos de incubação. Conclusão: neste estudo mostramos que para a visualização de células in vivo é importante determinar as condições ideais de incubação, estabelecendo o tempo de exposição e a intensidade do laser, assim como a frequência da captura das imagens para minimizar ao máximo o dano celular e o desaparecimento da fluorescência. Com base nesse estudo podemos estabelecer os parâmetros para analisar as células em tempo real.
id UFRGS-2_85c035119d46e3a5e3b73c537b3fdc88
oai_identifier_str oai:www.lume.ufrgs.br:10183/233792
network_acronym_str UFRGS-2
network_name_str Repositório Institucional da UFRGS
repository_id_str
spelling Muszinski, Diego AmaralGuma, Fátima Theresinha Costa RodriguesRohden, Francieli2022-01-06T04:31:16Z2018http://hdl.handle.net/10183/233792001107646Introdução: durante décadas, a única solução para estudar o comportamento de certos componentes celulares, foi pelo isolamento por fracionamento e purificação. Ou ainda através da fixação da célula num momento fisiológico completo, para poder aplicar diferentes técnicas de estudo. No entanto, dessa forma não é possível observar de forma direta, como os componentes celulares interagem entre si, ou a interação célula-a-células. Atualmente é possível o estudo da “célula viva”, e isso está para revolucionar e alterar os conceitos clássicos da biologia celular a uma grande velocidade. Objetivo: o objetivo deste estudo foi estabelecer as condições ideais para o estudo da captação e internalização de vesículas extracelulares por diferentes linhagens celulares utilizando técnicas de microscopia confocal em tempo real (time lapse). Método: utilizamos a técnica time lapse através da microscopia confocal para analisar as interações de células com vesículas extracelulares coletadas de células-tronco mesenquimais. Resultados: após fazermos imagens estáticas (in vitro) comprovamos que as vesículas extracelulares são internalizadas e, a partir de então, estabelecemos as técnicas e parâmetros para observar esse movimento. A partir de 2 h de incubação com as VEs verificou-se a presença das mesmas na região perinuclear. Através de microscopia time lapse (in vivo) observamos que a captação das VEs é muito rápida e ocorre nos primeiros minutos de incubação. Conclusão: neste estudo mostramos que para a visualização de células in vivo é importante determinar as condições ideais de incubação, estabelecendo o tempo de exposição e a intensidade do laser, assim como a frequência da captura das imagens para minimizar ao máximo o dano celular e o desaparecimento da fluorescência. Com base nesse estudo podemos estabelecer os parâmetros para analisar as células em tempo real.Introduction: for decades, the only solution to study the behavior of certain cellular components was by fractionation isolation and purification. Or even by fixing the cell at a complete physiological moment, in order to be able to apply different techniques of study. However, in this way it is not possible to directly observe how the cellular components interact with each other, or the cell-to-cell interaction. It is now possible to study the "living cell", and this is to revolutionize and change the classical concepts of cell biology at a great speed. Objective: The purpose of this study was to establish the ideal conditions for the study of the uptake and internalization of extracellular vesicles by different cell lines using real time confocal microscopy techniques (time lapse). Method: We used the time lapse technique through confocal microscopy to analyze the interactions of cells with extracellular vesicles collected from mesenchymal stem cells. Results: After making static images (in vitro) we verified that the extracellular vesicles are internalized and, from then on, we established the techniques and parameters to observe this movement. After 2 h of incubation with the VEs the presence of the same ones in the perinuclear region was verified. Through time lapse microscopy (in vivo) we observed that the uptake of VEs is very fast and occurs within the first few minutes of incubation. Conclusion: In this study we showed that for the visualization of cells in vivo it is important to determine the ideal conditions of incubation, establishing the exposure time and laser intensity, as well as the frequency of image capture to minimize cell damage and disappearance of fluorescence. Based on this study we can establish the parameters to analyze the cells in real time.application/pdfporCélulas-tronco mesenquimaisVesículas extracelularesTime lapseConfocalMesenchymal stem cellsExtracellular vesiclesIn vivoMicroscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de célulasinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisUniversidade Federal do Rio Grande do SulInstituto de BiociênciasPorto Alegre, BR-RS2018Biotecnologiagraduaçãoinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da UFRGSinstname:Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)instacron:UFRGSTEXT001107646.pdf.txt001107646.pdf.txtExtracted Texttext/plain43406http://www.lume.ufrgs.br/bitstream/10183/233792/2/001107646.pdf.txt72622c60b8b1712de13aad606d542626MD52ORIGINAL001107646.pdfTexto completoapplication/pdf1337391http://www.lume.ufrgs.br/bitstream/10183/233792/1/001107646.pdf5eb738f86695bffa75e8cc98a7fb8a9aMD5110183/2337922022-02-22 04:48:46.389383oai:www.lume.ufrgs.br:10183/233792Repositório de PublicaçõesPUBhttps://lume.ufrgs.br/oai/requestopendoar:2022-02-22T07:48:46Repositório Institucional da UFRGS - Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)false
dc.title.pt_BR.fl_str_mv Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
title Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
spellingShingle Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
Muszinski, Diego Amaral
Células-tronco mesenquimais
Vesículas extracelulares
Time lapse
Confocal
Mesenchymal stem cells
Extracellular vesicles
In vivo
title_short Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
title_full Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
title_fullStr Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
title_full_unstemmed Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
title_sort Microscopia confocal in vivo: estabelecimento da técnica de time lapse para a análise da captação de vesículas extracelulares liberadas por células tronco mesenquimais em cultura de células
author Muszinski, Diego Amaral
author_facet Muszinski, Diego Amaral
author_role author
dc.contributor.author.fl_str_mv Muszinski, Diego Amaral
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Guma, Fátima Theresinha Costa Rodrigues
dc.contributor.advisor-co1.fl_str_mv Rohden, Francieli
contributor_str_mv Guma, Fátima Theresinha Costa Rodrigues
Rohden, Francieli
dc.subject.por.fl_str_mv Células-tronco mesenquimais
Vesículas extracelulares
topic Células-tronco mesenquimais
Vesículas extracelulares
Time lapse
Confocal
Mesenchymal stem cells
Extracellular vesicles
In vivo
dc.subject.eng.fl_str_mv Time lapse
Confocal
Mesenchymal stem cells
Extracellular vesicles
In vivo
description Introdução: durante décadas, a única solução para estudar o comportamento de certos componentes celulares, foi pelo isolamento por fracionamento e purificação. Ou ainda através da fixação da célula num momento fisiológico completo, para poder aplicar diferentes técnicas de estudo. No entanto, dessa forma não é possível observar de forma direta, como os componentes celulares interagem entre si, ou a interação célula-a-células. Atualmente é possível o estudo da “célula viva”, e isso está para revolucionar e alterar os conceitos clássicos da biologia celular a uma grande velocidade. Objetivo: o objetivo deste estudo foi estabelecer as condições ideais para o estudo da captação e internalização de vesículas extracelulares por diferentes linhagens celulares utilizando técnicas de microscopia confocal em tempo real (time lapse). Método: utilizamos a técnica time lapse através da microscopia confocal para analisar as interações de células com vesículas extracelulares coletadas de células-tronco mesenquimais. Resultados: após fazermos imagens estáticas (in vitro) comprovamos que as vesículas extracelulares são internalizadas e, a partir de então, estabelecemos as técnicas e parâmetros para observar esse movimento. A partir de 2 h de incubação com as VEs verificou-se a presença das mesmas na região perinuclear. Através de microscopia time lapse (in vivo) observamos que a captação das VEs é muito rápida e ocorre nos primeiros minutos de incubação. Conclusão: neste estudo mostramos que para a visualização de células in vivo é importante determinar as condições ideais de incubação, estabelecendo o tempo de exposição e a intensidade do laser, assim como a frequência da captura das imagens para minimizar ao máximo o dano celular e o desaparecimento da fluorescência. Com base nesse estudo podemos estabelecer os parâmetros para analisar as células em tempo real.
publishDate 2018
dc.date.issued.fl_str_mv 2018
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2022-01-06T04:31:16Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
format bachelorThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.uri.fl_str_mv http://hdl.handle.net/10183/233792
dc.identifier.nrb.pt_BR.fl_str_mv 001107646
url http://hdl.handle.net/10183/233792
identifier_str_mv 001107646
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.none.fl_str_mv application/pdf
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Repositório Institucional da UFRGS
instname:Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)
instacron:UFRGS
instname_str Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)
instacron_str UFRGS
institution UFRGS
reponame_str Repositório Institucional da UFRGS
collection Repositório Institucional da UFRGS
bitstream.url.fl_str_mv http://www.lume.ufrgs.br/bitstream/10183/233792/2/001107646.pdf.txt
http://www.lume.ufrgs.br/bitstream/10183/233792/1/001107646.pdf
bitstream.checksum.fl_str_mv 72622c60b8b1712de13aad606d542626
5eb738f86695bffa75e8cc98a7fb8a9a
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositório Institucional da UFRGS - Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)
repository.mail.fl_str_mv
_version_ 1801224617604415488