Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Nascimento, Elisamara Caldeira do
Data de Publicação: 2011
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13656
Resumo: A fixação biológica de N2 (FBN) é fundamental para a nutrição da cultura de soja, existindo também indícios de que esse processo esteja relacionado à produção de N2O no solo, um gás com alto potencial de efeito-estufa. O objetivo principal desse trabalho foi avaliar a capacidade de produção de N2O por estirpes de Bradyrhizobium spp., recomendadas para a cultura da soja, e observar a presença ou ausência dos genes ligados a desnitrificação nestas mesmas bactérias. O estudo foi conduzido em três etapas. Na primeira, a técnica de amplificação do gene 16S rDNA foi testada para identificar as espécies de Bradyrhizobium que seriam utilizadas nos demais ensaios. Na segunda etapa, 12 estirpes de B. japonicum e B.elkanii, crescidas em meio de cultura, foram incubadas em atmosfera livre de O2, contendo ou não acetileno, após enriquecimento do meio com nitrato. Avaliou-se a produção de N2O por cada estirpe. Nestas estirpes foi verificada a presença dos genes ligados a desnitrificação (napA, nirK, norC, e nosZ) utilizando reações de PCR. Em um segundo estudo, avaliou-se a produção de N2O emitido pelo solo durante 63 dias após o plantio de soja em vasos utilizando-se sementes inoculadas, ou não, com estirpes de B. japonicum e B. elkanii recomendadas para inoculantes comerciais. As plantas foram colhidas na floração, e os nódulos foram incubados em solução com nitrato em atmosfera livre de O2, para avaliar a presença de intermediários do processo de desnitrificação. Outra parte dos nódulos colhidos foi incubada em atmosfera livre de O2, contendo concentração conhecida de N2O. A técnica de PCR utilizando iniciadores para o gene 16S rDNA possibilitou diferenciar as espécies B. japonicum e B. elkanii. Além disso, pela primeira vez as estirpes SMB1 e DF395 foram identificadas geneticamente como pertencentes à espécie B. elkanii. Em cultura pura as estirpes de B. japonicum produziram mais N2O do que as estirpes de B. elkanii, especialmente na presença de acetileno. Entre as 12 estirpes testadas, todas as quatro estirpes de B. japonicum possuíam todos os genes necessários para a desnitrificação, que permitem a redução de nitrato até N2, exceto a estirpe USDA06 que não possuía o gene nosZ que codifica a enzima N2O-redutase. Para as estirpes de B. elkanii, apenas 29W e SM1b apresentam o gene norC (NO-redutase), sendo o gene nosZ também presente na estirpe 29W. No ensaio em vasos, as plantas de soja inoculadas com B. japonicum produziram mais N2O do que as plantas inoculadas com B. elkanii. Dos nódulos dessas plantas, apenas aqueles resultantes da inoculação com a estirpe CPAC 7 apresentaram consumo de N2O, em todas as repetições, quando incubados em atmosfera contendo N2O. Não houve consistência nos resultados do ensaio com nódulos em meio com nitrato, pois se observou grande variação nas quantidades de nitrato, nitrito e N2O entre as repetições, com indícios de que em algumas repetições parte dos nódulos poderia estar ocupada com estirpes nativas do solo diferentes das inoculadas. Conclui-se que a capacidade de produzir N2O seja mais comum às estirpes de B. japonicum, embora também ocorra em algumas estirpes de B. elkanii. Em condições favoráveis, a emissão de N2O do solo plantado com soja deve ser maior em plantas inoculadas com estirpes de B. japonicum.
id UFRRJ-1_09ac3e57480f1706cbe423e018de7de3
oai_identifier_str oai:rima.ufrrj.br:20.500.14407/13656
network_acronym_str UFRRJ-1
network_name_str Repositório Institucional da UFRRJ
repository_id_str
spelling Nascimento, Elisamara Caldeira doCaballero, Segundo Sacramento Urquiaga058.898.198-28http://lattes.cnpq.br/0525790556695433Boddey, Robert M.Araújo, Jean Luis Simões deJacob Neto, Jorge067.179.126-50http://lattes.cnpq.br/38409548975475862023-12-22T02:49:18Z2023-12-22T02:49:18Z2011-12-02NASCIMENTO, Elisamara Caldeira do. Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja. 2011. 62 f. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) - Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2011.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13656A fixação biológica de N2 (FBN) é fundamental para a nutrição da cultura de soja, existindo também indícios de que esse processo esteja relacionado à produção de N2O no solo, um gás com alto potencial de efeito-estufa. O objetivo principal desse trabalho foi avaliar a capacidade de produção de N2O por estirpes de Bradyrhizobium spp., recomendadas para a cultura da soja, e observar a presença ou ausência dos genes ligados a desnitrificação nestas mesmas bactérias. O estudo foi conduzido em três etapas. Na primeira, a técnica de amplificação do gene 16S rDNA foi testada para identificar as espécies de Bradyrhizobium que seriam utilizadas nos demais ensaios. Na segunda etapa, 12 estirpes de B. japonicum e B.elkanii, crescidas em meio de cultura, foram incubadas em atmosfera livre de O2, contendo ou não acetileno, após enriquecimento do meio com nitrato. Avaliou-se a produção de N2O por cada estirpe. Nestas estirpes foi verificada a presença dos genes ligados a desnitrificação (napA, nirK, norC, e nosZ) utilizando reações de PCR. Em um segundo estudo, avaliou-se a produção de N2O emitido pelo solo durante 63 dias após o plantio de soja em vasos utilizando-se sementes inoculadas, ou não, com estirpes de B. japonicum e B. elkanii recomendadas para inoculantes comerciais. As plantas foram colhidas na floração, e os nódulos foram incubados em solução com nitrato em atmosfera livre de O2, para avaliar a presença de intermediários do processo de desnitrificação. Outra parte dos nódulos colhidos foi incubada em atmosfera livre de O2, contendo concentração conhecida de N2O. A técnica de PCR utilizando iniciadores para o gene 16S rDNA possibilitou diferenciar as espécies B. japonicum e B. elkanii. Além disso, pela primeira vez as estirpes SMB1 e DF395 foram identificadas geneticamente como pertencentes à espécie B. elkanii. Em cultura pura as estirpes de B. japonicum produziram mais N2O do que as estirpes de B. elkanii, especialmente na presença de acetileno. Entre as 12 estirpes testadas, todas as quatro estirpes de B. japonicum possuíam todos os genes necessários para a desnitrificação, que permitem a redução de nitrato até N2, exceto a estirpe USDA06 que não possuía o gene nosZ que codifica a enzima N2O-redutase. Para as estirpes de B. elkanii, apenas 29W e SM1b apresentam o gene norC (NO-redutase), sendo o gene nosZ também presente na estirpe 29W. No ensaio em vasos, as plantas de soja inoculadas com B. japonicum produziram mais N2O do que as plantas inoculadas com B. elkanii. Dos nódulos dessas plantas, apenas aqueles resultantes da inoculação com a estirpe CPAC 7 apresentaram consumo de N2O, em todas as repetições, quando incubados em atmosfera contendo N2O. Não houve consistência nos resultados do ensaio com nódulos em meio com nitrato, pois se observou grande variação nas quantidades de nitrato, nitrito e N2O entre as repetições, com indícios de que em algumas repetições parte dos nódulos poderia estar ocupada com estirpes nativas do solo diferentes das inoculadas. Conclui-se que a capacidade de produzir N2O seja mais comum às estirpes de B. japonicum, embora também ocorra em algumas estirpes de B. elkanii. Em condições favoráveis, a emissão de N2O do solo plantado com soja deve ser maior em plantas inoculadas com estirpes de B. japonicum.Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq, Brasil)The N2 fixation (BNF) is essential for the nutrition of the soybean crop, and there is also evidence that this process is related to the production of N2O in the soil, a gas with a high potential for greenhouse effect. The main objective of this study was to evaluate the ability of N2O production by strains of Bradyrhizobium spp., recommended for the soybean crop, and observe the presence or absence of denitrification genes linked to these same bacteria. The study was conducted in three steps. At first, the technique of amplification of the 16S rDNA was tested to identify species of Bradyrhizobium that would be used in other tests. In the second step, 12 strains of B. japonicumand B. elkanii, grown in culture medium were incubated in O2-free atmosphere containing acetylene or not, after enrichment of the culture medium with nitrate. The production of N2O by each strain was evaluated. These same strains were tested for the presence of genes linked to denitrification (NapA, NirK, NorC, and NosZ) using PCR reactions. In a second study carried out in pots, the soil N2O emission for 63 days after soybean planting using seeds inoculated or not with strains of B. Japonicum and B.elkanii, recommended for commercial inoculants was evaluated. Plants were harvested at flowering, and the nodules were incubated in solution with nitrate under an O2-free atmosphere to assess the presence of intermediates of the denitrification process. Another portion of the harvested nodules was incubated in an atmosphere free from O2, containing a known concentration of N2O. The technique of 16S rDNA gene amplification was efficient to identify species of B. japonicumand B. elkanii, and for the first time the strains DF395 and SMB1 were genetically identified as belonging to the species B. elkanii. In pure culture, strains of B. japonicum produced more N2O than strains of B.elkanii, especially in the presence of acetylene. Among the 12 strains tested, the four strains of B. Japonicum presented the whole set of denitrification genes responsible for the reduction of nitrate to N2, except the strain USDA 06 which lacked the nosZ gene encoding the enzyme N2O-reductase. For the strains of B. elkanii, only 29W and SM1b presented the gene NorC (NO-reductase), but the nosZ gene was also present in 29W. In the pot experiment, the soybean plants inoculated with B. japonicum produced more N2O than plants inoculated with B. elkanii. Different from the other treatments, nodules resulting from the inoculation with strain CPAC 7 showed a consumption of N2O in all repetitions, when incubated in an atmosphere containing N2O. There was no consistency in the results when nodules were soaked in nitrate solution, as a great variation in the amounts of nitrate, nitrite and N2O between repetitions was observed, with indications that in some repetitions the nodules could have been occupied with soil native strains different from the inoculated ones. It is concluded that the ability to produce N2O is more common for strains of B. japonicum, although it also occurs in some strains of B. elkanii. Under favourable conditions, the N2O emission from soil planted with soybeans should be greater in plants inoculated with strains of B. japonicum.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em FitotecniaUFRRJBrasilInstituto de AgronomiaBradyrhizobium sp.desnitrificaçãosojadenitrificationsoybeanAgronomiaPotencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da sojaPotential denitrifying strains of Bradyrhizobium sp. recommended for soybeaninfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisALVES, B. J. R., BODDEY R. M. & URQUIAGA, S. The success of soybean in Brazil. Plant and Soil, v. 252, p. 1-9. 2003. ALVES, B. J. R.; SANTOS, J. C. F.; BODDEY, R. M. Métodos de determinação do nitrogênio em solo e planta. In: HUNGRIA, M.; ARAÚJO, R. S. Manual de métodos empregados em estudos de microbiologia agrícola. EMBRAPA/SPI, p. 449-470, 1994 ALVES, B.; CARDOSO, S. A.; LESSA, A. C. R.; PAREDES, D.; JANTALIA, C. P.; SANTOS, H. P.; FRANCHINNI, J. C.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M.; A fixação biológica de nitrogênio não é uma fonte direta de N2O nos sistemas agrícolas. Comunicado Técnico 125, Embrapa Agrobiologia, 2010. BAGGS, E. M.; REES, R.M., SMITH K.A., VINTEN J.A. Nitrous legume oxide emission from soils after incorporating crop residues. Soil Use Manage. vol. 16, p. 82–87, 2000. BAGGS, E.M. et al. Nitrous oxide release from soils receiving N-rich crop residues and paper mill sludge in eastern Scotland. Agriculture, Ecosystems and Environment, v.90, p.109-123, 2002. BAIRD, C. Química Ambiental. Trad. RECEIO, A. M. L. e CARRERA, L. C. M., 2ª ed. Porto Alegre, Bookman, 2002. BALL, B.C. et al. Field N2O, CO2 and CH4 fluxes in relation to tillage, compaction and soil quality in Scotland. Soil & Tillage Research, v.53, p.29-39, 1999. BAYER, C. et al. Efeito de sistemas de preparo e de cultura na dinâmica da matéria orgânica e na mitigação das emissões de CO2 . Revista Brasileira de Ciência do Solo, v.24, p.599- 607, 2000. BERGAUST, L.; SHAPLEIGH, J.; FROSTEGARD, A; and BAKKEN, L. Transcription and activities of NOx reductases in Agrobacterium tumefaciens: the influence of nitrate, nitrite and oxygen availability. Environmental Microbiology v.10, 3070-3081, 2008 BEZERRA, A. A. C. Variabilidade e diversidade genética em caupi (Vigna unguiculata (L.) Walp.) precoce, de crescimento determinado e porte ereto e semi-ereto. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal Rural de Pernambuco, PE, 105p, 1997. BODDEY, L. H. Determinação das características das espécies Bradyrhizobium japonicum e Bradyrhizobium elkanii nas estirpes brasileiras noduladoras da soja. Universidade Estadual de Londrina, 130p, 1995. BODDEY, L. H.; HUNGRIA, M. Classificação das estirpes de soja utilizadas em estudos e/ou inoculantes brasileiros nas espécies Bradyrhizobium japonicum e Bradyrhizobium elkanii. In. HUNGRIA, M.; BALOTA, E. L.; COLOZZI-FILHO, A.; ANDRADE, D. S., Eds. Microbiologia do solo: desafios para o século XXI, IAPAR/Embrapa- CNPSo, p. 332-339, 1995. 52 BORTOLAN, S.; BARCELLOS, F. G.; MARCELINO, F. C.; HUNGRIA, M., Expressão dos genes nodC, nodW, e nopP em Bradyrhizobium japonicum estirpe CPAC 15 avaliada por RT-qPCR, Pesquisa Agropécuária Brasileira, v.44, p. 1491-1498, 2009. BOUWMAN, A.F. Direct emissions of nitrous oxide from agricultural soils. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v. 46, p. 53-70, 1996. BRAITHWAITE, A.; SMITH, F.J. Chromatographic methods. 5.ed. Dordrecht: Kluwer, 1999. p.165-257. BREMMER, J. M.; ROBBINS, S. G.; BLACKMER, A. M. Seasonal variability in emission of nitrous oxide from soil. Geophysical Research Letters, v. 7, p. 641-644, 1980. CÂMARA, G. M. S.; MARCOS FILHO, J.; OLIVEIRA, E. A. M. CÂMARA, G. M. S.; Ecofisiologia da cultura da soja. In: (Org.) Simpósio sobre cultura e produtividade da soja. Piracicaba-SP, 1991. Anais. Piracicaba-SP, p. 129-142, 1992 CÂMARA, G.M.S; Inoculação das sementes de soja. In:. Soja: tecnologia da produção. Piracicaba: p. 278-293, 1998 CARDOSO, A. S.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M.; SOARES, L. H. B. Uma evidência de que a FBN não é uma fonte direta de N2O na cultura de soja. In. Reunião Brasileira De Fertilidade Do Solo E Nutrição De Plantas, 28., Reunião Brasileira Sobre Micorrizas, 12., Simpósio Brasileiro De Microbiologia Do Solos, 10., Reunião Brasileira Brasileira de Biologia Do Solo,7., 2008, Londrina. Fertbio: Desafios para o uso do solo com deficiência e qualidade ambiental: Anais. Londrina: Embrapa Soja:SBCS:IAPAR, UEL, 2008 CAVIGELLI, M.; and ROBERTSON, G., Role of denitrifier diversity in rates of nitrous oxide consumption in a terrestrial ecosystem. Soil Biology & Biochemistry v. 33, p. 297-310, 2001. CERRI, C. E. P.; FEIGL, B. J.; PICCOLO, M. C.; BERNOUX, M.; CERRI, C. C. Seqüestro de carbono em áreas de pastagens. In: SIMPÓSIO SOBRE MANEJO ESTRATÉGICO DA PASTAGEM, Viçosa. Anais. Viçosa: UFV, p. 73-80. 2006. CHAPUIS-LARDY, L.; WRAGE, N.; METAY, A.; CHOTTE, J. and BERNOUX, M. Soils, a sink for N2O A review. Global Change Biol ,v. 13, p.1-17, 2007. CHÈNEBY, D.; HARTMANN, A.; HÉNAULT, C. ;TOPP, E. Diversity of denitrifying microflora and ability to reduce N2O in two soils. Biology and Fertility, 1998. CHENG, W. et al. N2O and NO production in various chinese agricultural soils by nitrification. Soil Biology Biochemistry, v.36, p.953-963, 2004. CHOUDHARY, H.A. et al. Nitrous oxide emissions from New Zealand cropped soil; Tillage effects, spatial and seasonal variability. Agriculture, Ecosystems and Environment,v.93, p.33-43, 2002. 53 CHUEIRE, L.M.O. et al. Classificação taxonômica das estirpes de rizóbio recomendadas para as culturas da soja e do feijoeiro baseada no seqüenciamento do gene 16S rRNA. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v.27, p.883-840, 2003. CIAMPITTI, I. A., CIARLO, E. A. CONTI, M. E. Nitrous oxide emissions from soil during soybean [(Glycine max (L.) Merrill] crop phenological stages and stubbles decomposition period. Biologic Fertility of Soils. v. 44, p. 581-588, 2008. CONAB (Companhia Nacional de Abastecimento). Avaliação da Safra Agrícola 2010/2011. Acesso: 17 de agosto de 2011 http://www.conab.gov.br/conabweb/download/safra/4levsafra.pdf. COP15 – UNITED NATIONS CLIMATE CHANGE CONFERENCE. Copenhagen, Dinamarca (2009). Disponível em: (http://en.cop15.dk/frontpage). Acesso: 16-12-2010. COSTA, F. S., GOMES, J., BAYER,C., MIELNICZUK, J., Métodos para avaliação das emissões de gases do efeito estufa no sistema solo - atmosfera. Ciência Rural, Santa Maria, v.36, n.2, mar-abr, 2006. DELGADO, M.J., N. BONNARD, A. TRESIERRA-AYALA, E.J. BEDMAR AND P. MÜLLER, The Bradyrhizobium japonicum napEDABC genes encoding the periplasmic nitrate reductase are essential for nitrate respiration. Microbiology, v.149, p. 3395–3403, 2003. DENMEAD, O.T.; RAUPACH, M.R. Methods for measuring atmospheric gas transport in agricultural and forest systems.In: HARPER, L.A. et al. (ed). Agricultural ecosystem effects on trace gases and global climate change. Madison: ASA, CSSA e SSSA, 1993. p.19-43. (ASA Spec. Publ.55). DESJARDINS, R.L. AND RIZNEK, R., Agricultural greenhouse gas budget. In: Environmental Sustainability of Canadian Agriculture: Report of the Agri-Environmental Indicator Project. McRae, T., C.A.S. Smith and L.J. Gregorich (eds.) Catalogue No. A22-201/2000E. Agriculture and AgriFood Canada, p. 133-142, 2000. DÖBEREINER, J.; FRANCO, A.A.; GUZMÁN, I. Estirpes de Rhizobium japonicum de excepcional eficiência. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Série Agronomia, Rio de Janeiro, v.5, p.155-161, 1970. DUXBURY, J. M.; SMITH, M. S.; DORAN, J. M. Soil organic matter as a source and a sink of plant nutrients. In: COLEMAN, D. C.; OADES, J. M.; UEHARA. G (Ed.) Dynamics of soil organic matter en tropical ecosystems. Hawaii: University of Hawaii, p. 33-67, 1994. EARDLY, B.D.; YOUNG, J.P.W.; SELANDER, R.K. Phylogenetic position of Rhizobium sp. strain Or 191, a symbiont of both Medicago sativa and Phaseolus vulgaris, based on partial sequences of the 16S rRNA and nifH genes. Applied Environ Microbiol, v.58, p. 1809-1815, 1992. EMBRAPA, Manual de métodos de análises de solo. Rio de Janeiro, Embrapa Centro Nacional de Pesquisa de Solos, 1997 54 ETCHEBEHERE, C. Ecologia Microbiana e Ciclos Biogeoquímicos. Florianópolis, Brasil: V Curso de Tratamento Biológico de Resíduos, 2005. EVANS, H. J; EISBRENNER, G.; CANTRELL, M. A.; RUSSEL, S. A.; HANUS, F. J. The present status of hydrogen recycling in legumes. Israel Journal of Botany, v.31, p. 72-88, 1982. FAO-FAOSTAT, Database Results, http://apps.fao.org, (19/12/2008) FERNANDES, S.A.P. et al. Seasonal variation of soil chemical properties and CO2 and CH4 fluxes in unfertilized an P-fertilizes pastures in an Ultisol of the Brazilian Amazon. Geoderma, v.107, p. 227-241, 2002 FERREIRA, E. S. Cinética Química e Fundamentos dos Processos de Nitrificação e Desnitrificação Biológica. XXVII Congresso Interamericano de Engenharia Sanitária e Ambiental, 2000. FIGURSKI, D. H.; HELINSKI, D. R. Replication of an origin-containing derivative of plasmid RK2 dependent on a plasmid function provided in trans. Proceedings of the National Academy of Sciences, v. 76, p. 1648–1652, 1979. FLESSA, H. et al. N2O and CH4 fluxes in potato fields: automated measurement, management effects and temporal variation Geoderma, v.105, p.307-325, 2002. FRANCO, A. A. Fixação biológica de nitrogênio na cultura da soja no Brasil: Uma lição para o futuro, Boletim Informativo da SBCS, janeiro - abril, 2009 FRED, E. B.; GRAUL, E. J.; McCOY, E., Root nodule bacteria of leguminous plants. Madison: The University of Wisconsin Press, 343p., 1932. FRED, E.B.; WAKSMAN, S.A., Yeast Extract – Manitol Agar Laboratory Manual of General Microbiology, 145p, 1928. GARCIA-PLAZAOLA, J. I.; BECERRIL, J. M.; ARRESE-IGOR, C.; HERNANDEZ, A.; GONZALEZ-MURUA, C.; APARICIO-TEJO, P.M. The contribution of Rhizobium meliloti to soil denitrification. Plant Soil, v. 157, p. 207–213, 1993. GARCIA-PLAZOLA, J. I.; BECERRIL. J. M.; ARRESE-IGOR, C.; HERNANDES, A.; GONZALEZ-MURUA, C.; APARICIAOTEJO, P. M. The contribution of Rhizobium melilot to soil denitrification. Plant and Soil, v. 157, p. 207-213.1993 GELFAND, D. H. In Erlich, H. A. (ed.) PCR Technology. Stockton Press, NY, p.17, 1989. GIONGO, A.; AMBROSINI, A.; FREIRE, J. R. J.; ZANETTINI, M. H. B.; Passaglia, L. M. P. Amplification of 16S rRNA gene sequences to differentiate two highly related bradyrhizobia species. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.42, p.1361-1364, 2007 GIONGO, A.; PASSAGLIA, L. M. P.; FREIRE, J.R.J.; SÁ; E.L.S. Genetic diversity and symbiotic efficiency of population of rhizobia of Phaseolus vulgaris L. in Brazil. Biology Fertil Soils, in press. 2007. 55 GRAHAM, P. H.; SADOWSKY, M. J.; KEYSER, H. H.; BARNET, Y. M.; BRADLEY, R. S.; COOPER, J. E.; DELEY, D. J.; JARVIS, B. D. W.; ROSLYCKY, E. B., STRIJDOM, B.W.; YOUNG, J. P. W. Proposal minimal standards for the description of new genera and species of root- and stem-nodulating bacteria. International Journal System Bacteriology, p. 41:582-587, 1991. GUIMARAES, A. P., Determinação do coeficiente isotopica de 15N relacionado ao processo de fixação biológica de nitrogênio em soja. Dissertação, Universidade Federaral Rural do Rio de Janeiro, 47p., 2005 HARRISON, S.P.; MYTTON, L.R.; SKOT, L.; DYE, M.; CRESSWELL, A. Characterization of Rhizobium isolates by amplification of DNA polymorphisms using random primers. Canadian Journal Microbiology, v.38, p. 1009-1015, 1992. HARROW, S. A.; RAVINDRAN, V.; BUTLER, J. W.; MARSHALL, J. W., TANNOCK, G. W., Real time quantitative PCR measurement of ileal Lactobacillus salivarius populations from broiler chickens to determine the influence of farming practices. Applied Environmental Microbiology, v. 73, p. 7123-7127, 2007 HERRIDGE, D.F.; PEOPLES M.B.; BODDEY R.M. Marschner Review: Global inputs of biological nitrogen fixation in agricultural systems, Plant and Soil v. 311, p.1-18, 2008. HOLSTEN, R. D.; BURNS, R. C.; HARD, R. W. F.; HERBERT, R. R. Establishment of symbioses between Rhizobium and plant cells in vitro. Nature, v. 323, p. 173-175, 1971. HOUGHTON, J. T.; DING, Y.; GRIGGS, D. J.; NOGUER, M.; VAN DER LINDEN, P. J.; DAI, X.; MASKELL, K.; JOHNSON, C. A. Climate Change 2001: The Scientific Basis. Cambridge: Cambridge University Press, 881 p, 2001. HUNGRIA, M., R. J. Campo, and I.C. Mendes. Fixaçao biológica do nitrogénio na cultura da soja. Embrapa Soja/Embrapa Cerrados, Londrina, Brazil. (Circular Técnica, 13) 2001. HUNGRIA, M.; ANDRADE, D. S.; BALOTA, E. L. COLOZZI FILHO, A. importância do sistema de semeadura direta na população microbiana do solo. Londrina, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, 9 p., (EMBRAPA-CNPSo. Comunicado técnico, 56). 1997. HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T., Environmental factors affecting N2 fixation in grain legumes in the tropics, which an emphasis on Brazil. Field Crops Research, Amsterdam, v. 65, p. 151-164, 2000. HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T.; SHUET, A. R.; PERES, J. R. R. Fixação biológica de nitrogênio em soja. In: ARAUJO, R. S.; HUNGRIA, M., Eds Microorganismos de importância agrícola. Brasília: Embrapa-SPI, p. 9-89, 1994a HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T.; SHUET, A. R.; PERES, J. R. R., MENDES, I. C. Identificação de parâmetros relacionados com a eficiência e capacidade competitiva do rizobio. In: ARAUJO, R. S.; HUNGRIA, M., Eds. Manual de métodos empregados em microbiologia agrícola. Brasilia: Embrapa-SPI, p. 285-325, 1994b. 56 HUTCHINSON, G.L.; LIVINGSTON, G.P. Use of chamber systems to measure trace gas fluxes. In: HARPER, L.A. et al. (ed). Agricultural ecosystem effects on trace gases and global climate change. Madison: ASA, CSSA e SSSA, 1993. p.63-78. (ASA Spec. Publ. 55). HYNES, R.K.; KNOWLES, R. Effect of acetylene on autotrophic and heterotrophic nitrification. Canadian Journal Microbiology, v. 28, p. 334–340, 1982. IPCC (International Panel on Climate Change) Guidelines for National Greenhouse Gas Inventories. p. 546-554, 2006. IPCC [INTERGOVERNMENTAL PANEL ON CLIMATE CHANGE]. Climate change – The IPCC scientific assessment. Cambridge University, 572p., 1995. IPCC. INTERGOVERNMENTAL PANEL ON CLIMATE CHANGE. 2007. Climate Change 2007: Impacts, Adaptation and Vulnerability. Working Group II Report. Chapter 5: Food, Fibre, and Forest Products. Genebra, Suíça (2007). Disponível em: http://www.ipcc.ch/ipccreports/ar4-wg2.htm. Acesso: 16-12-2010. ISOLDI, L. A.; KOETZ, P. R. Tratamentos biológicos para remoção de matéria carbonada e nitrogenada. Revista eletrônica de Mestrado em Educação Ambiental, v. 12, p. 1517-1256, 2004. JANZEN, H.H. et al. Management effects on soil C storage on the Canadian prairies. Soil & Tillage Research, v.47, p.181-195, 1998. JARDIM-FREIRE, J.R.; COSTA, J.A.; STAMMEL, J.G. Principais fatores que propiciaram a expansão da soja no Brasil. Revista Plantio Direto, v.92, p.39-47, 2006. JONES, C.M.; HALLIN. S. Ecological and evolutionary factors underlying global and local assembly of denitrifier communities. The ISME Journal, v. 4, p.633-641, 2010. JORDAN, D.C. Transfer of Rhizobium japonicum Buchanan 1980 to Bradyrhizobium gen. nov., a genus of slow-growing, root nodule bacteria from leguminous plants. International Journal Systematic Bacteriology, v. 32, p. 136-139, 1982. KESSAVALOU, A. et al. Greenhouse gas fluxes following tillage and wetting in a wheat-fallow cropping system. Journal of Environmental Quality, v.27, p.1105-1116, 1998. KHALIL, M. et al. Nitrous oxide production by nitrification and denitrification in soil aggregates as affected by O2 concentration. Soil Biology and Biochemistry, v.36, p.687-699, 2004. KLEPPE, K.; OHTSUKA, E.; KLEPPE, R.;MOLINEUX, I.; AND KHORANA, H. G., Studies on polynucleotides. XCVI. Repair replications of short synthetic DNA's as catalyzed by DNA polymerases. Journal Molecular Biology, v. 56, p. 341-361, 1971. KONEMAN, E.W.; ALLEN, S.D.; JANDA, W.M.; SCHRECKENBERGER, P.C.; INN Jr., W.C. Diagnóstico Microbiológico. 5.ed., Rio de Janeiro: MEDSI, 1465p, 2001. 57 KUYKENDALL, L.D.; SAXENA, B.; DEVINE, T.E.; UDELL, S.E. Genetic diversity in Bradyrhizobium japonicum Jordan 1982 and a proposal for Bradyrhizobium elkanii sp. nov. Canadian Journal of Microbiology, v.38, p.501-505, 1992. KUYKENDALL, L.D.; SAXENA, B.; DEVINE, T.E.; UDELL, S.E. Genetic diversity in Bradyrhizobium japonicum Jordan 1982 and a proposal for Bradyrhizobium elkanii sp. nov. Canadian Journal of Microbiology, v.38, p.501-505, 1992. LAGUERRE, G.; ALLARD, M.R.; REVOY, F.; AMARGER, N. Rapid identification of rhizobia by restriction fragment length polymorphism analysis of PCR-amplified 16S rRNA, Applied Environmental Microbiology, v. 60, p. 56-63, 1994. LESSA, A. C. R.; PAREDES, D. S.; OLIVEIRA, W. R. D.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Produção de N2O por estirpes de Bradyrhizobium sp. in vitro, e do solo sob plantas de soja noduladas. In: Congresso brasileiro de Ciência do Solo, 32, 2009, Fortaleza. Anais... Fortaleza: Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2009. LEUNG, K.; YAP, K.; DASHTI, N.; BOTTOMLEY, P. J. Serological and ecological characteristics of a nodule-dominant serotype from an indigenous soil population of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii. Applied Environmental Microbiology, v. 60, p. 408-415, 1994. LINN, D.M.; DORAN, J.W. Effect of water-filled pore space on carbon dioxide and nitrous oxide production in tilled and no-tilled soils. Soil Science Society of American Journal,v.48, p.1267-1272, 1984. LUCINSKI, R., POLCYN, W., RATAJCZAK L., Nitrate reduction and nitrogen fixation in symbiotic association Rhizobium-legumes. Acta Biochimisty, v. 49, p. 537–546, 2002 MAHAN, B. M., MYERS, R. J. Química. Um curso universitário. Trad. de TOMA, H.E.; A R A K I K, D. O., MATSUMOTO, F. M. São Paulo: Editora Edgard Blücher, 1993. MALORNY, B., HOOFAR, J., HUGAS, M., HEUVELINK, A., FACH, P., ELLERBYOEK, L., BUNGE, C., DORN, C., HELMUTH, R. Standardization of diagnostic PCR for detection of foodborne pathogens. International Journal Food Microbiology, v. 83, p. 39-48, 2003 MATTHIAS, A.D. et al. A simple chamber technique for field measurement of emissions of nitrous oxide from soils. Journal of Environmental Quality, v.9, p.251-256, 1980. MCCARTHY, J. J., CANZIANI, O.F., LEARY, N. A., DOKKEN, D. J., WHITE, K.S. Climate change 2001: impacts, adaptation, and vulnerability. United Nations Intergovernmental, 2001 Panel on Climate Change. Available at: www.grida.no/climate/ipcc_tar/wg2/001.htm MENDONÇA, L. C. Microbiologia e Cinética de Sistemas de Lodos Ativados como Pós-tratamento de Efluente de Reator Anaeróbio de Leito Expandido. Tese de doutorado. Universidade de São Paulo, Escola de Engenharia de São Carlos, departamento de Hidráulica e Saneamento, 240p., 2002. 58 MESA, S., L. VELASCO, M.E. MANZANERA, M.J. DELGADO AND E.J. BEDMAR, Characterization of the norCBQD genes, encoding nitric oxide reductase, in the nitrogen fixing bacterium Bradyrhizobium japonicum, Microbiology, V.148, P. 3553–3560, 2002. MINAMISAWA, K., Division of rhizobitoxine producing and hydrogen uptake positive strains of Bradyrhizobium japonicum by nifDKE sequence divergence. Plant and Cell Physiology, v. 31, p 81-89, 1990. MINAMISAWA, K.; SEKI, T.; ONODERA, S.; KUBOTA, M.; ASAMI, T. Genetic relatedness of Bradyrhizobium japonicum field isolates as revealed by repeated sequences na various other characteristics, Applied and Environmental Microbiology, Washington, v. 58, p. 2832-2839, 1992. MOSIER, A. R.; DUXBURY, J. M.; FRENEY, J. R.; HEINEMEYER O.; MINAMI, K. Nitrous oxide emissions from agricultural fields: assessment, measurement and mitigation, Plant Soil, v. 181, p. 95–108, 1996. MOSIER, A. R.; KROEZE, C.; NEVISON, C.; OENEMA, O.; SEITZINGER S.; AND VAN CLEEMPUT, O. Closing the global N2O budget: nitrous oxide emissions through the agricultural nitrogen cycle, Nutrient Cycling Agroecosystems, v. 52, p. 225–248. 1998. MOSIER, A.; WASSMANN, R.; VERCHOT, L.; KING, J.; PALM, C. Methane and nitrogen oxide fluxes in tropical agricultural soils: sources, sinks and mechanisms. Environment Development and Sustainability, v. 6, p. 11–49, 2004. MULLIS, K., E FALOONA, S. SCHARF, R. SAIKI, G. HORN, AND H. ERLICH., Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symposia Quantitative Biology, v. 51 p. 263-273, 1986. NEVES, M.C.P.; DIDONET, A.D.; DUQUE, F.F.; DOBEREINER, J. Rizobium strain effects on nitrogen transport and distribution in soybeans, Journal Experimental Botany, v.36, p.1179-1192, 1985. NISHI, C. Y. M.; HUNGRIA, M., Efeito da reinoculação na soja (Glycine max ) em um solo com população estabelecida de Bradyrhizobium com as estirpes SEMIA 566,587,5019, 5079, 5080. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.31, p. 359-368, 1996. NORMAN, R. J.; EDBERG, J. C.; STUCKI, J.W., Determination of Nitrate in Soil Extracts by Dual-wavelength Ultraviolet Spectrophotometry, Soil Science Society of America Journal, v. 49, p.1182-1185, 1985. O´HARA, G. W., DANIEL. R. M. Rhizobial denitrification: a review. Soil Biology and Biochemistry, v.17, p. 1-9, 1985. OKITO, A.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Isotopic fractionation during N2 fixation by four tropical legumes. Soil Biology e Biochemitry, v. 36, p. 1179-1190, 2004. 59 OLIVEIRA, A. L. M.; URQUIAGA, S. e BALDANI, J. I. Processos e mecanismos envolvidos na influência de microrganismos sobre o crescimento vegetal. Seropédica: Embrapa Agrobiologia. (Embrapa Agrobiologia: Documentos, 161), 40 p, 2003. OLIVEIRA, W. R. D., Quantificação das emissões de N2O resultantes de fertilizante, fixação de N2 e resíduos de colheita em argissolo vermelho amarelo, Dissertação, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, 47p., 2009. PEOPLES M.B., HAUGGAARD-NIELSEN H, JENSEN E.S., The potential environmental benefits and risks derived from legumes in rotations. In: Emerich DW, Krishnan HB (eds) Agronomy Monograph. Nitrogen Fixation in Crop Production, American Society Agronomy, Crop Science Society of America, and Soil Science Society of America, USA, p. 349–385, 2009 PRINN, R.G., J. HUANG, R.F. WEISS, D.M. CUNNOLD, P.J. FRASER, P.G. SIMMONDS, A. MCCULLOCH, C. HARTH, S. REIMANN, P. SALAMEH, S. O'DOHERTY, R.H.J. WANG, L.W. PORTER, B.R. MILLER, AND P.B. KRUMMEL Evidence for variability of atmospheric hydroxyl radicals over the past quarter century, Geophysical Research Letters, 32p., 2005. RELARE - Rede de Laboratórios para Recomendação, Padronização e Difusão de Tecnologia de Inoculantes Microbianos de Interesse Agrícola, In: Reunião da Rede de Laboratórios para Recomendação, Padronização e Difusão de Tecnologia de Inoculantes Microbianos de Interesse Agrícola, 13., Londrina-PR. Anais... Londrina: Embrapa Soja, 212p, 2007. ROBERTSON, G.P. et al. Greenhouse gases in intensive agriculture: contributions of individual gases to the radiative forcing of the atmosphere. Science, v.289, p.1922-1925, 2000. ROBERTSON, Dominique. VIGS vectors for gene silencing: many targets, many tools, Annual Review of Plant Biology, vol. 55, p. 495-519, 2004. ROBERTSON, G. AND P. GRACE, Greenhouse Gas Fluxes in Tropical and Temperate Agriculture: The need for a Full-Cost accounting of Global Warming Potentials, Environment Development and Sustainability, v. 6, p. 51-63, 2004. ROCHESTER I.J., PEOPLES M.B., HULUGALLE N.R., GAULT R.R., Constable GA Using legumes to enhance nitrogen fertility and improve soil condition in cotton cropping systems. Field Crops Research, v.70, p. 27–41, 2001. ROCHETTE, P., AND JANZEN, H. H., Towards a revised coefficient for estimating N2O emissions from legumes, Nutrient Cycling in Agroecosystems, v.73, p.171-179, 2005. ROCHETTE, P.; ANGERS, D. A.; BÉLANGER, G.; CHANTIGNY, M. H.; PRÉVOST, D.; LÉVESQUE G. Emissions of N2O from alfalfa and soybean crops in Eastern Canada, Soil Science Society American Journal, v. 68, p. 493–506, 2004. 60 ROSENKRANZ, P., BRÜGGEMANN, N., PAPEN, H., XU, Z., SEUFERT, G., BUTTERBACH-BAHL, K., N2O, NO and CH4 exchange, and microbial N turnover over a Mediterranean pine forest soil, Biogeosciences, v. 3, p. 121-133, 2006. RUMJANECK N. G.; DOBERT R. C.; VanBERKUN P.; AND TRIPLETT E. W., Common soybean strains in Brazil are members of Bradyrhizobium Elkanii. Applied and Environmental Microbiology, v. 59, p. 4371-4373, 1993. RUMJANEK, N.G.; XAVIER, G.R.; MARTINS, L.M.V.; MORGADO, L.B. e NEVES, M.C.P. Feijão Caupi tem uma nova estirpe de Rizóbio, BR3267, recomendada como inoculante. Boletim de pesquisa e desenvolvimento. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, (Embrapa Agrobiologia. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 15), 16p, 2006. RUSER , R. et al. Compaction and fertilization effects on nitrous oxide and methane fluxes in potato fields. Soil Science Society American Journal, v.62, p.1587-1595, 1998. RYCHLIK, W.; SPENCER, W. J.; RHOADS, R. E. Optimization of the annealing temperature for DNA amplification in vitro, Nucleic Acids Research, Oxford, v. 18, p. 6409-6412, 1990. SAIKI, R., GELFAND, D., STOFFEL, S., SCHARF, S., HIGUCHI, R., HORN, G., MULLIS, K. AND ERLICH, H. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase, Science, v. 239, p.487-91, 1988. SAIKI, R.K.; SCHARF, S.; FALOONA, F.; MULLIS, K.B.; HORN, G.T.; ERLICH, H.A.; ARNHEIM, N. Enzymatic amplification of b-globulin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science, v. 230, p. 1350-1354, 1985. SAMBROOK, J.; FRITSCH, E.F. and MANIATIS, T. Molecular Cloning: a laboratory manual. 2nd ed. N.Y., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1659 p.,1989. SAMESHIMA-SAITO, R.; CHIBA, K.; HIRAYAMA, J.; ITAKURA, M.; MITSUI, H.; EDA, S.; MINAMISAWA, K. Symbiotic Bradyrhizobium japonicum reduces N2O surrounding the soybean root system via nitrous oxide reductase, Applied and Environmental Microbiology, v. 72, p. 2526–2532, 2006b. SAMESHIMA-SAITO, R.; CHIBA, K.; MINAMISAWA, K. Correlation of denitrifying capability with the existence of nap, nir, nor e nos genes in diverse strains of soybean Bradyrhizobia. Microbes and Environments, v.21, p. 174-184, 2006a. SANTOS, C.E.R.S.; STAMFORD, N.P.; FREITAS, A.D.S.; VIEIRA, I.M.M.B.SOUTO, S.M.; NEVES, M.C.P. e RUMJANECK, N.G. Efetividade de rizóbios isolados de solos da região Nordeste do Brasil na fixação de N2 em amendoim (Arachis hypogea L.). Acta Scientiarum, Agronomy, v.27, p.301-307, 2005. SANTOS, V. A. F.; NEVES, M. C. P.; RUMJANECK, N. G. Differential symbiotic efficiency by shadyng of soybean nodulated by B. Japonicum and B. Elkanii strains. Soil Biology e Biochemistry, v. 29, n. 5/6, p. 1015-1018, 1997. 61 SCHEINERT, P.; BEHRENS, B.; KAHLE, D. Optimizing DNA Amplification Protocols using the Eppendorf ® Mastercycler ® . Eppendorf North America, Apr. 8. 2003. Disponível em: http://www.eppendorfna.com/applications/PCR_appl_protocolsMC.asp acesso em: 3 de março 2010. SCHNEIDER, M., DE BRUIJN, F.J. Rep-PCR mediated genomic fingerprinting of rhizobia and computer-assisted phylogenetic patterns analysis.World Journal Microbiol. Biotechnol. p.12, v. 163-174, 1996 SHAPLEIGH, J. P., The denitrifying prokaryotes, p. 769-792. In M. Dworkin (ed.), The Prokaryotes:A Handbook on the Biology of Bacteria: Volume 2: Ecophysiology and Biochemistry, Springer-Verlag, 2007. SITAULA, B.K. et al. Rapid analysis of climate gases by wide bore capillary gas chromatography. Journal of Environmental Quality, v.21, p.493-496, 1992. SMITH, G. B., SMITH, M. S., Symbiotic and free-living denitrification by Bradyrhizobium japonicum, Soil Scienty Society American, v. 50, p. 349–354, 1986. SMITH, J. L. & MYUNG, H. U. Rapid procedures for preparing soil and KCL extracts for 15N analysis, Community Soil Science and Plant Analyses, v. 21, p. 2173-2179, 1990. SPRENT, J.I. Legume trees and shrubs in the tropics: N2 fixation in perspective, Soil Biology Biochemist, v. 27, p. 401–407, 1995. TAYLOR, C. et al., Determination of the order of substrate addition to MspI DNA methyltransferase using a novel mechanism-based inhibitor, The Biochemical Journal, v. 291, p. 493–504, 1993. THOMSEN, J.; GEEST, T.; and COX, R. Mass-spectrometric Studies of the Effect of pH on the Accumulation of Intermediates in Denitrification by Paracoccus denitrificans. Applied and Environmental Microbiology, v. 60, p. 536-541,1994. TIEDJE, J.M., Methods of Soil Analysis, Denitrifiers, Microbiological and Biochemical Properties, Soil Science Society of American, Part 2, p. 245-267, 1994. UEDA, T.; SUGA, Y.; YAHIRO, N.; MATSUGUCHI,T. Phylogeny of sym plasmids of rhizobia by PCR-based sequencing of a nodC segment. Journal Bacteriology, v. 177, p. 468-472, 1995. VAN BERKUM P, KEYSER H.H., Anaerobic growth and denitrification among different serogroups of soybean rhizobia, Applied Environmental Microbiology, v. 49, p. 772–777, 1985. VAN BERKUN, P. Evidence for a third uptake hydrogenase phenotype among the soybean bradyrhizobia, Applied and Environmental Microbiology, v. 56, p. 3835-3841, 1990. VAN SPANNING, R.; RICHARDSON, D., FERGUSON, S. Introduction to the biochemistry and molecular biology of denitrification. In: Bothe, H., et al. (Eds.) Biology of the nitrogen cycle. p. 3-20. Amsterdam: Elsevier. 2007. 62 VARGAS, M. A. T.; MENDES, I. C.;SUHET, A. R.; PERES,J. R. Duas novas esitirpes para inoculação da soja. Planaltina, EMBRAPA-CPAC, (EMBRAPA CPAC. Comunicado técnico), 3p, 1992. VARGAS, M. A. T.; SUHET, A. R.; MENDES, I. C.; PERES, J. R. R. Fixação biológica de nitrogênio em solos do cerrado. Brasília: EMBRAPA-SPI, 83p, 1994. VELASCO, L., S. MESA, C. X. U., M. J. DELGADO AND E. J. BEDMAR, Molecular characterization of nosRZDFYLX genes coding for denitrifying nitrous oxide reductase of Bradyrhizobium japonicum. Antonie van Leeuwenhoek, v. 85, p. 229–235, 2004 WATSON, R.J., HAITAS-CROCKETT, C., MARTIN, T., HEYS, R. Detection of Rhizobium meliloti cells in field soil and nodules by polymerase chain reaction, Canadian Journal Microbiology, v. 41, p. 815-825, 1995. WEBER, D. F.; KEYSER, H. H.; URATSU, S. L. Serological distribution of Bradyrhizobium japonicum from U.S. soybean production areas, Agronomical Journal, v.81, p. 786-789, 1989. XAVIER, G. R. Estudo da ocupação nodular de rizóbio em genótipos de caupi (Vigna unguiculata L. Walp) agrupados pela técnica de RAPD. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 123 p, 2000. YANG, L., CAI, Z. The effect of growing soybean (Glycine max L.) on N2O emission from soil, Soil Biology and Biochemistry, v. 37, p. 1205-1209, 2005. YE, R. W.; THOMASm S. M. Microbial nitrogen cycles: physiology, genomics and applications, Current Opinion in Microbiology, v. 4, p. 307–312, 2001. ZUMFT, W. G., Nitric oxide reductases of prokaryotes with emphasis on the respiratory, heme-copper oxidase type. Journal Inorganic Biochemisty, v. 99, p.194-215, 2005. ZUMFT,W. G., Cell biology and molecular basis of denitrification, Microbiology Molecular Biology, v. 61, p. 533-616, 1997.https://tede.ufrrj.br/retrieve/61799/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/3851Submitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2020-09-09T12:25:54Z No. of bitstreams: 1 2011 - Elisamara Caldeira do Nascimento.pdf: 1443932 bytes, checksum: 6d6f5bde520118b7eec482ee19fb9abc (MD5)Made available in DSpace on 2020-09-09T12:25:54Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2011 - Elisamara Caldeira do Nascimento.pdf: 1443932 bytes, checksum: 6d6f5bde520118b7eec482ee19fb9abc (MD5) Previous issue date: 2011-12-02info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJinstname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)instacron:UFRRJTHUMBNAIL2011 - Elisamara Caldeira do Nascimento.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1959https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/1/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf.jpg3dc5d72889275717023e7b5445e035a3MD51TEXT2011 - Elisamara Caldeira do Nascimento.pdf.txtExtracted Texttext/plain157498https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/2/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf.txtf865344781a844c9a5ab6eb32046b00fMD52ORIGINAL2011 - Elisamara Caldeira do Nascimento.pdf2011 - Elisamara Caldeira do Nascimentoapplication/pdf1443932https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/3/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf6d6f5bde520118b7eec482ee19fb9abcMD53LICENSElicense.txttext/plain2089https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/4/license.txt7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7MD5420.500.14407/136562023-12-21 23:49:18.821oai:rima.ufrrj.br:20.500.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Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttps://tede.ufrrj.br/PUBhttps://tede.ufrrj.br/oai/requestbibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.bropendoar:2023-12-22T02:49:18Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)false
dc.title.por.fl_str_mv Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
dc.title.alternative.eng.fl_str_mv Potential denitrifying strains of Bradyrhizobium sp. recommended for soybean
title Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
spellingShingle Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
Nascimento, Elisamara Caldeira do
Bradyrhizobium sp.
desnitrificação
soja
denitrification
soybean
Agronomia
title_short Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
title_full Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
title_fullStr Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
title_full_unstemmed Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
title_sort Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja
author Nascimento, Elisamara Caldeira do
author_facet Nascimento, Elisamara Caldeira do
author_role author
dc.contributor.author.fl_str_mv Nascimento, Elisamara Caldeira do
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Caballero, Segundo Sacramento Urquiaga
dc.contributor.advisor1ID.fl_str_mv 058.898.198-28
dc.contributor.advisor1Lattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/0525790556695433
dc.contributor.advisor-co1.fl_str_mv Boddey, Robert M.
dc.contributor.referee1.fl_str_mv Araújo, Jean Luis Simões de
dc.contributor.referee2.fl_str_mv Jacob Neto, Jorge
dc.contributor.authorID.fl_str_mv 067.179.126-50
dc.contributor.authorLattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/3840954897547586
contributor_str_mv Caballero, Segundo Sacramento Urquiaga
Boddey, Robert M.
Araújo, Jean Luis Simões de
Jacob Neto, Jorge
dc.subject.por.fl_str_mv Bradyrhizobium sp.
desnitrificação
soja
topic Bradyrhizobium sp.
desnitrificação
soja
denitrification
soybean
Agronomia
dc.subject.eng.fl_str_mv denitrification
soybean
dc.subject.cnpq.fl_str_mv Agronomia
description A fixação biológica de N2 (FBN) é fundamental para a nutrição da cultura de soja, existindo também indícios de que esse processo esteja relacionado à produção de N2O no solo, um gás com alto potencial de efeito-estufa. O objetivo principal desse trabalho foi avaliar a capacidade de produção de N2O por estirpes de Bradyrhizobium spp., recomendadas para a cultura da soja, e observar a presença ou ausência dos genes ligados a desnitrificação nestas mesmas bactérias. O estudo foi conduzido em três etapas. Na primeira, a técnica de amplificação do gene 16S rDNA foi testada para identificar as espécies de Bradyrhizobium que seriam utilizadas nos demais ensaios. Na segunda etapa, 12 estirpes de B. japonicum e B.elkanii, crescidas em meio de cultura, foram incubadas em atmosfera livre de O2, contendo ou não acetileno, após enriquecimento do meio com nitrato. Avaliou-se a produção de N2O por cada estirpe. Nestas estirpes foi verificada a presença dos genes ligados a desnitrificação (napA, nirK, norC, e nosZ) utilizando reações de PCR. Em um segundo estudo, avaliou-se a produção de N2O emitido pelo solo durante 63 dias após o plantio de soja em vasos utilizando-se sementes inoculadas, ou não, com estirpes de B. japonicum e B. elkanii recomendadas para inoculantes comerciais. As plantas foram colhidas na floração, e os nódulos foram incubados em solução com nitrato em atmosfera livre de O2, para avaliar a presença de intermediários do processo de desnitrificação. Outra parte dos nódulos colhidos foi incubada em atmosfera livre de O2, contendo concentração conhecida de N2O. A técnica de PCR utilizando iniciadores para o gene 16S rDNA possibilitou diferenciar as espécies B. japonicum e B. elkanii. Além disso, pela primeira vez as estirpes SMB1 e DF395 foram identificadas geneticamente como pertencentes à espécie B. elkanii. Em cultura pura as estirpes de B. japonicum produziram mais N2O do que as estirpes de B. elkanii, especialmente na presença de acetileno. Entre as 12 estirpes testadas, todas as quatro estirpes de B. japonicum possuíam todos os genes necessários para a desnitrificação, que permitem a redução de nitrato até N2, exceto a estirpe USDA06 que não possuía o gene nosZ que codifica a enzima N2O-redutase. Para as estirpes de B. elkanii, apenas 29W e SM1b apresentam o gene norC (NO-redutase), sendo o gene nosZ também presente na estirpe 29W. No ensaio em vasos, as plantas de soja inoculadas com B. japonicum produziram mais N2O do que as plantas inoculadas com B. elkanii. Dos nódulos dessas plantas, apenas aqueles resultantes da inoculação com a estirpe CPAC 7 apresentaram consumo de N2O, em todas as repetições, quando incubados em atmosfera contendo N2O. Não houve consistência nos resultados do ensaio com nódulos em meio com nitrato, pois se observou grande variação nas quantidades de nitrato, nitrito e N2O entre as repetições, com indícios de que em algumas repetições parte dos nódulos poderia estar ocupada com estirpes nativas do solo diferentes das inoculadas. Conclui-se que a capacidade de produzir N2O seja mais comum às estirpes de B. japonicum, embora também ocorra em algumas estirpes de B. elkanii. Em condições favoráveis, a emissão de N2O do solo plantado com soja deve ser maior em plantas inoculadas com estirpes de B. japonicum.
publishDate 2011
dc.date.issued.fl_str_mv 2011-12-02
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2023-12-22T02:49:18Z
dc.date.available.fl_str_mv 2023-12-22T02:49:18Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/masterThesis
format masterThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv NASCIMENTO, Elisamara Caldeira do. Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja. 2011. 62 f. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) - Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2011.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13656
identifier_str_mv NASCIMENTO, Elisamara Caldeira do. Potencial desnitrificador de estirpes de Bradyrhizobium sp. recomendadas para a cultura da soja. 2011. 62 f. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) - Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2011.
url https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/13656
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.relation.references.por.fl_str_mv ALVES, B. J. R., BODDEY R. M. & URQUIAGA, S. The success of soybean in Brazil. Plant and Soil, v. 252, p. 1-9. 2003. ALVES, B. J. R.; SANTOS, J. C. F.; BODDEY, R. M. Métodos de determinação do nitrogênio em solo e planta. In: HUNGRIA, M.; ARAÚJO, R. S. Manual de métodos empregados em estudos de microbiologia agrícola. EMBRAPA/SPI, p. 449-470, 1994 ALVES, B.; CARDOSO, S. A.; LESSA, A. C. R.; PAREDES, D.; JANTALIA, C. P.; SANTOS, H. P.; FRANCHINNI, J. C.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M.; A fixação biológica de nitrogênio não é uma fonte direta de N2O nos sistemas agrícolas. Comunicado Técnico 125, Embrapa Agrobiologia, 2010. BAGGS, E. M.; REES, R.M., SMITH K.A., VINTEN J.A. Nitrous legume oxide emission from soils after incorporating crop residues. Soil Use Manage. vol. 16, p. 82–87, 2000. BAGGS, E.M. et al. Nitrous oxide release from soils receiving N-rich crop residues and paper mill sludge in eastern Scotland. Agriculture, Ecosystems and Environment, v.90, p.109-123, 2002. BAIRD, C. Química Ambiental. Trad. RECEIO, A. M. L. e CARRERA, L. C. M., 2ª ed. Porto Alegre, Bookman, 2002. BALL, B.C. et al. Field N2O, CO2 and CH4 fluxes in relation to tillage, compaction and soil quality in Scotland. Soil & Tillage Research, v.53, p.29-39, 1999. BAYER, C. et al. Efeito de sistemas de preparo e de cultura na dinâmica da matéria orgânica e na mitigação das emissões de CO2 . Revista Brasileira de Ciência do Solo, v.24, p.599- 607, 2000. BERGAUST, L.; SHAPLEIGH, J.; FROSTEGARD, A; and BAKKEN, L. Transcription and activities of NOx reductases in Agrobacterium tumefaciens: the influence of nitrate, nitrite and oxygen availability. Environmental Microbiology v.10, 3070-3081, 2008 BEZERRA, A. A. C. Variabilidade e diversidade genética em caupi (Vigna unguiculata (L.) Walp.) precoce, de crescimento determinado e porte ereto e semi-ereto. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal Rural de Pernambuco, PE, 105p, 1997. BODDEY, L. H. Determinação das características das espécies Bradyrhizobium japonicum e Bradyrhizobium elkanii nas estirpes brasileiras noduladoras da soja. Universidade Estadual de Londrina, 130p, 1995. BODDEY, L. H.; HUNGRIA, M. Classificação das estirpes de soja utilizadas em estudos e/ou inoculantes brasileiros nas espécies Bradyrhizobium japonicum e Bradyrhizobium elkanii. In. HUNGRIA, M.; BALOTA, E. L.; COLOZZI-FILHO, A.; ANDRADE, D. S., Eds. Microbiologia do solo: desafios para o século XXI, IAPAR/Embrapa- CNPSo, p. 332-339, 1995. 52 BORTOLAN, S.; BARCELLOS, F. G.; MARCELINO, F. C.; HUNGRIA, M., Expressão dos genes nodC, nodW, e nopP em Bradyrhizobium japonicum estirpe CPAC 15 avaliada por RT-qPCR, Pesquisa Agropécuária Brasileira, v.44, p. 1491-1498, 2009. BOUWMAN, A.F. Direct emissions of nitrous oxide from agricultural soils. Nutrient Cycling in Agroecosystems, v. 46, p. 53-70, 1996. BRAITHWAITE, A.; SMITH, F.J. Chromatographic methods. 5.ed. Dordrecht: Kluwer, 1999. p.165-257. BREMMER, J. M.; ROBBINS, S. G.; BLACKMER, A. M. Seasonal variability in emission of nitrous oxide from soil. Geophysical Research Letters, v. 7, p. 641-644, 1980. CÂMARA, G. M. S.; MARCOS FILHO, J.; OLIVEIRA, E. A. M. CÂMARA, G. M. S.; Ecofisiologia da cultura da soja. In: (Org.) Simpósio sobre cultura e produtividade da soja. Piracicaba-SP, 1991. Anais. Piracicaba-SP, p. 129-142, 1992 CÂMARA, G.M.S; Inoculação das sementes de soja. In:. Soja: tecnologia da produção. Piracicaba: p. 278-293, 1998 CARDOSO, A. S.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M.; SOARES, L. H. B. Uma evidência de que a FBN não é uma fonte direta de N2O na cultura de soja. In. Reunião Brasileira De Fertilidade Do Solo E Nutrição De Plantas, 28., Reunião Brasileira Sobre Micorrizas, 12., Simpósio Brasileiro De Microbiologia Do Solos, 10., Reunião Brasileira Brasileira de Biologia Do Solo,7., 2008, Londrina. Fertbio: Desafios para o uso do solo com deficiência e qualidade ambiental: Anais. Londrina: Embrapa Soja:SBCS:IAPAR, UEL, 2008 CAVIGELLI, M.; and ROBERTSON, G., Role of denitrifier diversity in rates of nitrous oxide consumption in a terrestrial ecosystem. Soil Biology & Biochemistry v. 33, p. 297-310, 2001. CERRI, C. E. P.; FEIGL, B. J.; PICCOLO, M. C.; BERNOUX, M.; CERRI, C. C. Seqüestro de carbono em áreas de pastagens. In: SIMPÓSIO SOBRE MANEJO ESTRATÉGICO DA PASTAGEM, Viçosa. Anais. Viçosa: UFV, p. 73-80. 2006. CHAPUIS-LARDY, L.; WRAGE, N.; METAY, A.; CHOTTE, J. and BERNOUX, M. Soils, a sink for N2O A review. Global Change Biol ,v. 13, p.1-17, 2007. CHÈNEBY, D.; HARTMANN, A.; HÉNAULT, C. ;TOPP, E. Diversity of denitrifying microflora and ability to reduce N2O in two soils. Biology and Fertility, 1998. CHENG, W. et al. N2O and NO production in various chinese agricultural soils by nitrification. Soil Biology Biochemistry, v.36, p.953-963, 2004. CHOUDHARY, H.A. et al. Nitrous oxide emissions from New Zealand cropped soil; Tillage effects, spatial and seasonal variability. Agriculture, Ecosystems and Environment,v.93, p.33-43, 2002. 53 CHUEIRE, L.M.O. et al. Classificação taxonômica das estirpes de rizóbio recomendadas para as culturas da soja e do feijoeiro baseada no seqüenciamento do gene 16S rRNA. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v.27, p.883-840, 2003. CIAMPITTI, I. A., CIARLO, E. A. CONTI, M. E. Nitrous oxide emissions from soil during soybean [(Glycine max (L.) Merrill] crop phenological stages and stubbles decomposition period. Biologic Fertility of Soils. v. 44, p. 581-588, 2008. CONAB (Companhia Nacional de Abastecimento). Avaliação da Safra Agrícola 2010/2011. Acesso: 17 de agosto de 2011 http://www.conab.gov.br/conabweb/download/safra/4levsafra.pdf. COP15 – UNITED NATIONS CLIMATE CHANGE CONFERENCE. Copenhagen, Dinamarca (2009). Disponível em: (http://en.cop15.dk/frontpage). Acesso: 16-12-2010. COSTA, F. S., GOMES, J., BAYER,C., MIELNICZUK, J., Métodos para avaliação das emissões de gases do efeito estufa no sistema solo - atmosfera. Ciência Rural, Santa Maria, v.36, n.2, mar-abr, 2006. DELGADO, M.J., N. BONNARD, A. TRESIERRA-AYALA, E.J. BEDMAR AND P. MÜLLER, The Bradyrhizobium japonicum napEDABC genes encoding the periplasmic nitrate reductase are essential for nitrate respiration. Microbiology, v.149, p. 3395–3403, 2003. DENMEAD, O.T.; RAUPACH, M.R. Methods for measuring atmospheric gas transport in agricultural and forest systems.In: HARPER, L.A. et al. (ed). Agricultural ecosystem effects on trace gases and global climate change. Madison: ASA, CSSA e SSSA, 1993. p.19-43. (ASA Spec. Publ.55). DESJARDINS, R.L. AND RIZNEK, R., Agricultural greenhouse gas budget. In: Environmental Sustainability of Canadian Agriculture: Report of the Agri-Environmental Indicator Project. McRae, T., C.A.S. Smith and L.J. Gregorich (eds.) Catalogue No. A22-201/2000E. Agriculture and AgriFood Canada, p. 133-142, 2000. DÖBEREINER, J.; FRANCO, A.A.; GUZMÁN, I. Estirpes de Rhizobium japonicum de excepcional eficiência. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Série Agronomia, Rio de Janeiro, v.5, p.155-161, 1970. DUXBURY, J. M.; SMITH, M. S.; DORAN, J. M. Soil organic matter as a source and a sink of plant nutrients. In: COLEMAN, D. C.; OADES, J. M.; UEHARA. G (Ed.) Dynamics of soil organic matter en tropical ecosystems. Hawaii: University of Hawaii, p. 33-67, 1994. EARDLY, B.D.; YOUNG, J.P.W.; SELANDER, R.K. Phylogenetic position of Rhizobium sp. strain Or 191, a symbiont of both Medicago sativa and Phaseolus vulgaris, based on partial sequences of the 16S rRNA and nifH genes. Applied Environ Microbiol, v.58, p. 1809-1815, 1992. EMBRAPA, Manual de métodos de análises de solo. Rio de Janeiro, Embrapa Centro Nacional de Pesquisa de Solos, 1997 54 ETCHEBEHERE, C. Ecologia Microbiana e Ciclos Biogeoquímicos. Florianópolis, Brasil: V Curso de Tratamento Biológico de Resíduos, 2005. EVANS, H. J; EISBRENNER, G.; CANTRELL, M. A.; RUSSEL, S. A.; HANUS, F. J. The present status of hydrogen recycling in legumes. Israel Journal of Botany, v.31, p. 72-88, 1982. FAO-FAOSTAT, Database Results, http://apps.fao.org, (19/12/2008) FERNANDES, S.A.P. et al. Seasonal variation of soil chemical properties and CO2 and CH4 fluxes in unfertilized an P-fertilizes pastures in an Ultisol of the Brazilian Amazon. Geoderma, v.107, p. 227-241, 2002 FERREIRA, E. S. Cinética Química e Fundamentos dos Processos de Nitrificação e Desnitrificação Biológica. XXVII Congresso Interamericano de Engenharia Sanitária e Ambiental, 2000. FIGURSKI, D. H.; HELINSKI, D. R. Replication of an origin-containing derivative of plasmid RK2 dependent on a plasmid function provided in trans. Proceedings of the National Academy of Sciences, v. 76, p. 1648–1652, 1979. FLESSA, H. et al. N2O and CH4 fluxes in potato fields: automated measurement, management effects and temporal variation Geoderma, v.105, p.307-325, 2002. FRANCO, A. A. Fixação biológica de nitrogênio na cultura da soja no Brasil: Uma lição para o futuro, Boletim Informativo da SBCS, janeiro - abril, 2009 FRED, E. B.; GRAUL, E. J.; McCOY, E., Root nodule bacteria of leguminous plants. Madison: The University of Wisconsin Press, 343p., 1932. FRED, E.B.; WAKSMAN, S.A., Yeast Extract – Manitol Agar Laboratory Manual of General Microbiology, 145p, 1928. GARCIA-PLAZAOLA, J. I.; BECERRIL, J. M.; ARRESE-IGOR, C.; HERNANDEZ, A.; GONZALEZ-MURUA, C.; APARICIO-TEJO, P.M. The contribution of Rhizobium meliloti to soil denitrification. Plant Soil, v. 157, p. 207–213, 1993. GARCIA-PLAZOLA, J. I.; BECERRIL. J. M.; ARRESE-IGOR, C.; HERNANDES, A.; GONZALEZ-MURUA, C.; APARICIAOTEJO, P. M. The contribution of Rhizobium melilot to soil denitrification. Plant and Soil, v. 157, p. 207-213.1993 GELFAND, D. H. In Erlich, H. A. (ed.) PCR Technology. Stockton Press, NY, p.17, 1989. GIONGO, A.; AMBROSINI, A.; FREIRE, J. R. J.; ZANETTINI, M. H. B.; Passaglia, L. M. P. Amplification of 16S rRNA gene sequences to differentiate two highly related bradyrhizobia species. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.42, p.1361-1364, 2007 GIONGO, A.; PASSAGLIA, L. M. P.; FREIRE, J.R.J.; SÁ; E.L.S. Genetic diversity and symbiotic efficiency of population of rhizobia of Phaseolus vulgaris L. in Brazil. Biology Fertil Soils, in press. 2007. 55 GRAHAM, P. H.; SADOWSKY, M. J.; KEYSER, H. H.; BARNET, Y. M.; BRADLEY, R. S.; COOPER, J. E.; DELEY, D. J.; JARVIS, B. D. W.; ROSLYCKY, E. B., STRIJDOM, B.W.; YOUNG, J. P. W. Proposal minimal standards for the description of new genera and species of root- and stem-nodulating bacteria. International Journal System Bacteriology, p. 41:582-587, 1991. GUIMARAES, A. P., Determinação do coeficiente isotopica de 15N relacionado ao processo de fixação biológica de nitrogênio em soja. Dissertação, Universidade Federaral Rural do Rio de Janeiro, 47p., 2005 HARRISON, S.P.; MYTTON, L.R.; SKOT, L.; DYE, M.; CRESSWELL, A. Characterization of Rhizobium isolates by amplification of DNA polymorphisms using random primers. Canadian Journal Microbiology, v.38, p. 1009-1015, 1992. HARROW, S. A.; RAVINDRAN, V.; BUTLER, J. W.; MARSHALL, J. W., TANNOCK, G. W., Real time quantitative PCR measurement of ileal Lactobacillus salivarius populations from broiler chickens to determine the influence of farming practices. Applied Environmental Microbiology, v. 73, p. 7123-7127, 2007 HERRIDGE, D.F.; PEOPLES M.B.; BODDEY R.M. Marschner Review: Global inputs of biological nitrogen fixation in agricultural systems, Plant and Soil v. 311, p.1-18, 2008. HOLSTEN, R. D.; BURNS, R. C.; HARD, R. W. F.; HERBERT, R. R. Establishment of symbioses between Rhizobium and plant cells in vitro. Nature, v. 323, p. 173-175, 1971. HOUGHTON, J. T.; DING, Y.; GRIGGS, D. J.; NOGUER, M.; VAN DER LINDEN, P. J.; DAI, X.; MASKELL, K.; JOHNSON, C. A. Climate Change 2001: The Scientific Basis. Cambridge: Cambridge University Press, 881 p, 2001. HUNGRIA, M., R. J. Campo, and I.C. Mendes. Fixaçao biológica do nitrogénio na cultura da soja. Embrapa Soja/Embrapa Cerrados, Londrina, Brazil. (Circular Técnica, 13) 2001. HUNGRIA, M.; ANDRADE, D. S.; BALOTA, E. L. COLOZZI FILHO, A. importância do sistema de semeadura direta na população microbiana do solo. Londrina, Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, 9 p., (EMBRAPA-CNPSo. Comunicado técnico, 56). 1997. HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T., Environmental factors affecting N2 fixation in grain legumes in the tropics, which an emphasis on Brazil. Field Crops Research, Amsterdam, v. 65, p. 151-164, 2000. HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T.; SHUET, A. R.; PERES, J. R. R. Fixação biológica de nitrogênio em soja. In: ARAUJO, R. S.; HUNGRIA, M., Eds Microorganismos de importância agrícola. Brasília: Embrapa-SPI, p. 9-89, 1994a HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T.; SHUET, A. R.; PERES, J. R. R., MENDES, I. C. Identificação de parâmetros relacionados com a eficiência e capacidade competitiva do rizobio. In: ARAUJO, R. S.; HUNGRIA, M., Eds. Manual de métodos empregados em microbiologia agrícola. Brasilia: Embrapa-SPI, p. 285-325, 1994b. 56 HUTCHINSON, G.L.; LIVINGSTON, G.P. Use of chamber systems to measure trace gas fluxes. In: HARPER, L.A. et al. (ed). Agricultural ecosystem effects on trace gases and global climate change. Madison: ASA, CSSA e SSSA, 1993. p.63-78. (ASA Spec. Publ. 55). HYNES, R.K.; KNOWLES, R. Effect of acetylene on autotrophic and heterotrophic nitrification. Canadian Journal Microbiology, v. 28, p. 334–340, 1982. IPCC (International Panel on Climate Change) Guidelines for National Greenhouse Gas Inventories. p. 546-554, 2006. IPCC [INTERGOVERNMENTAL PANEL ON CLIMATE CHANGE]. Climate change – The IPCC scientific assessment. Cambridge University, 572p., 1995. IPCC. INTERGOVERNMENTAL PANEL ON CLIMATE CHANGE. 2007. Climate Change 2007: Impacts, Adaptation and Vulnerability. Working Group II Report. Chapter 5: Food, Fibre, and Forest Products. Genebra, Suíça (2007). Disponível em: http://www.ipcc.ch/ipccreports/ar4-wg2.htm. Acesso: 16-12-2010. ISOLDI, L. A.; KOETZ, P. R. Tratamentos biológicos para remoção de matéria carbonada e nitrogenada. Revista eletrônica de Mestrado em Educação Ambiental, v. 12, p. 1517-1256, 2004. JANZEN, H.H. et al. Management effects on soil C storage on the Canadian prairies. Soil & Tillage Research, v.47, p.181-195, 1998. JARDIM-FREIRE, J.R.; COSTA, J.A.; STAMMEL, J.G. Principais fatores que propiciaram a expansão da soja no Brasil. Revista Plantio Direto, v.92, p.39-47, 2006. JONES, C.M.; HALLIN. S. Ecological and evolutionary factors underlying global and local assembly of denitrifier communities. The ISME Journal, v. 4, p.633-641, 2010. JORDAN, D.C. Transfer of Rhizobium japonicum Buchanan 1980 to Bradyrhizobium gen. nov., a genus of slow-growing, root nodule bacteria from leguminous plants. International Journal Systematic Bacteriology, v. 32, p. 136-139, 1982. KESSAVALOU, A. et al. Greenhouse gas fluxes following tillage and wetting in a wheat-fallow cropping system. Journal of Environmental Quality, v.27, p.1105-1116, 1998. KHALIL, M. et al. Nitrous oxide production by nitrification and denitrification in soil aggregates as affected by O2 concentration. Soil Biology and Biochemistry, v.36, p.687-699, 2004. KLEPPE, K.; OHTSUKA, E.; KLEPPE, R.;MOLINEUX, I.; AND KHORANA, H. G., Studies on polynucleotides. XCVI. Repair replications of short synthetic DNA's as catalyzed by DNA polymerases. Journal Molecular Biology, v. 56, p. 341-361, 1971. KONEMAN, E.W.; ALLEN, S.D.; JANDA, W.M.; SCHRECKENBERGER, P.C.; INN Jr., W.C. Diagnóstico Microbiológico. 5.ed., Rio de Janeiro: MEDSI, 1465p, 2001. 57 KUYKENDALL, L.D.; SAXENA, B.; DEVINE, T.E.; UDELL, S.E. Genetic diversity in Bradyrhizobium japonicum Jordan 1982 and a proposal for Bradyrhizobium elkanii sp. nov. Canadian Journal of Microbiology, v.38, p.501-505, 1992. KUYKENDALL, L.D.; SAXENA, B.; DEVINE, T.E.; UDELL, S.E. Genetic diversity in Bradyrhizobium japonicum Jordan 1982 and a proposal for Bradyrhizobium elkanii sp. nov. Canadian Journal of Microbiology, v.38, p.501-505, 1992. LAGUERRE, G.; ALLARD, M.R.; REVOY, F.; AMARGER, N. Rapid identification of rhizobia by restriction fragment length polymorphism analysis of PCR-amplified 16S rRNA, Applied Environmental Microbiology, v. 60, p. 56-63, 1994. LESSA, A. C. R.; PAREDES, D. S.; OLIVEIRA, W. R. D.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Produção de N2O por estirpes de Bradyrhizobium sp. in vitro, e do solo sob plantas de soja noduladas. In: Congresso brasileiro de Ciência do Solo, 32, 2009, Fortaleza. Anais... Fortaleza: Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2009. LEUNG, K.; YAP, K.; DASHTI, N.; BOTTOMLEY, P. J. Serological and ecological characteristics of a nodule-dominant serotype from an indigenous soil population of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii. Applied Environmental Microbiology, v. 60, p. 408-415, 1994. LINN, D.M.; DORAN, J.W. Effect of water-filled pore space on carbon dioxide and nitrous oxide production in tilled and no-tilled soils. Soil Science Society of American Journal,v.48, p.1267-1272, 1984. LUCINSKI, R., POLCYN, W., RATAJCZAK L., Nitrate reduction and nitrogen fixation in symbiotic association Rhizobium-legumes. Acta Biochimisty, v. 49, p. 537–546, 2002 MAHAN, B. M., MYERS, R. J. Química. Um curso universitário. Trad. de TOMA, H.E.; A R A K I K, D. O., MATSUMOTO, F. M. São Paulo: Editora Edgard Blücher, 1993. MALORNY, B., HOOFAR, J., HUGAS, M., HEUVELINK, A., FACH, P., ELLERBYOEK, L., BUNGE, C., DORN, C., HELMUTH, R. Standardization of diagnostic PCR for detection of foodborne pathogens. International Journal Food Microbiology, v. 83, p. 39-48, 2003 MATTHIAS, A.D. et al. A simple chamber technique for field measurement of emissions of nitrous oxide from soils. Journal of Environmental Quality, v.9, p.251-256, 1980. MCCARTHY, J. J., CANZIANI, O.F., LEARY, N. A., DOKKEN, D. J., WHITE, K.S. Climate change 2001: impacts, adaptation, and vulnerability. United Nations Intergovernmental, 2001 Panel on Climate Change. Available at: www.grida.no/climate/ipcc_tar/wg2/001.htm MENDONÇA, L. C. Microbiologia e Cinética de Sistemas de Lodos Ativados como Pós-tratamento de Efluente de Reator Anaeróbio de Leito Expandido. Tese de doutorado. Universidade de São Paulo, Escola de Engenharia de São Carlos, departamento de Hidráulica e Saneamento, 240p., 2002. 58 MESA, S., L. VELASCO, M.E. MANZANERA, M.J. DELGADO AND E.J. BEDMAR, Characterization of the norCBQD genes, encoding nitric oxide reductase, in the nitrogen fixing bacterium Bradyrhizobium japonicum, Microbiology, V.148, P. 3553–3560, 2002. MINAMISAWA, K., Division of rhizobitoxine producing and hydrogen uptake positive strains of Bradyrhizobium japonicum by nifDKE sequence divergence. Plant and Cell Physiology, v. 31, p 81-89, 1990. MINAMISAWA, K.; SEKI, T.; ONODERA, S.; KUBOTA, M.; ASAMI, T. Genetic relatedness of Bradyrhizobium japonicum field isolates as revealed by repeated sequences na various other characteristics, Applied and Environmental Microbiology, Washington, v. 58, p. 2832-2839, 1992. MOSIER, A. R.; DUXBURY, J. M.; FRENEY, J. R.; HEINEMEYER O.; MINAMI, K. Nitrous oxide emissions from agricultural fields: assessment, measurement and mitigation, Plant Soil, v. 181, p. 95–108, 1996. MOSIER, A. R.; KROEZE, C.; NEVISON, C.; OENEMA, O.; SEITZINGER S.; AND VAN CLEEMPUT, O. Closing the global N2O budget: nitrous oxide emissions through the agricultural nitrogen cycle, Nutrient Cycling Agroecosystems, v. 52, p. 225–248. 1998. MOSIER, A.; WASSMANN, R.; VERCHOT, L.; KING, J.; PALM, C. Methane and nitrogen oxide fluxes in tropical agricultural soils: sources, sinks and mechanisms. Environment Development and Sustainability, v. 6, p. 11–49, 2004. MULLIS, K., E FALOONA, S. SCHARF, R. SAIKI, G. HORN, AND H. ERLICH., Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symposia Quantitative Biology, v. 51 p. 263-273, 1986. NEVES, M.C.P.; DIDONET, A.D.; DUQUE, F.F.; DOBEREINER, J. Rizobium strain effects on nitrogen transport and distribution in soybeans, Journal Experimental Botany, v.36, p.1179-1192, 1985. NISHI, C. Y. M.; HUNGRIA, M., Efeito da reinoculação na soja (Glycine max ) em um solo com população estabelecida de Bradyrhizobium com as estirpes SEMIA 566,587,5019, 5079, 5080. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.31, p. 359-368, 1996. NORMAN, R. J.; EDBERG, J. C.; STUCKI, J.W., Determination of Nitrate in Soil Extracts by Dual-wavelength Ultraviolet Spectrophotometry, Soil Science Society of America Journal, v. 49, p.1182-1185, 1985. O´HARA, G. W., DANIEL. R. M. Rhizobial denitrification: a review. Soil Biology and Biochemistry, v.17, p. 1-9, 1985. OKITO, A.; ALVES, B. J. R.; URQUIAGA, S.; BODDEY, R. M. Isotopic fractionation during N2 fixation by four tropical legumes. Soil Biology e Biochemitry, v. 36, p. 1179-1190, 2004. 59 OLIVEIRA, A. L. M.; URQUIAGA, S. e BALDANI, J. I. Processos e mecanismos envolvidos na influência de microrganismos sobre o crescimento vegetal. Seropédica: Embrapa Agrobiologia. (Embrapa Agrobiologia: Documentos, 161), 40 p, 2003. OLIVEIRA, W. R. D., Quantificação das emissões de N2O resultantes de fertilizante, fixação de N2 e resíduos de colheita em argissolo vermelho amarelo, Dissertação, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, 47p., 2009. PEOPLES M.B., HAUGGAARD-NIELSEN H, JENSEN E.S., The potential environmental benefits and risks derived from legumes in rotations. In: Emerich DW, Krishnan HB (eds) Agronomy Monograph. Nitrogen Fixation in Crop Production, American Society Agronomy, Crop Science Society of America, and Soil Science Society of America, USA, p. 349–385, 2009 PRINN, R.G., J. HUANG, R.F. WEISS, D.M. CUNNOLD, P.J. FRASER, P.G. SIMMONDS, A. MCCULLOCH, C. HARTH, S. REIMANN, P. SALAMEH, S. O'DOHERTY, R.H.J. WANG, L.W. PORTER, B.R. MILLER, AND P.B. KRUMMEL Evidence for variability of atmospheric hydroxyl radicals over the past quarter century, Geophysical Research Letters, 32p., 2005. RELARE - Rede de Laboratórios para Recomendação, Padronização e Difusão de Tecnologia de Inoculantes Microbianos de Interesse Agrícola, In: Reunião da Rede de Laboratórios para Recomendação, Padronização e Difusão de Tecnologia de Inoculantes Microbianos de Interesse Agrícola, 13., Londrina-PR. Anais... Londrina: Embrapa Soja, 212p, 2007. ROBERTSON, G.P. et al. Greenhouse gases in intensive agriculture: contributions of individual gases to the radiative forcing of the atmosphere. Science, v.289, p.1922-1925, 2000. ROBERTSON, Dominique. VIGS vectors for gene silencing: many targets, many tools, Annual Review of Plant Biology, vol. 55, p. 495-519, 2004. ROBERTSON, G. AND P. GRACE, Greenhouse Gas Fluxes in Tropical and Temperate Agriculture: The need for a Full-Cost accounting of Global Warming Potentials, Environment Development and Sustainability, v. 6, p. 51-63, 2004. ROCHESTER I.J., PEOPLES M.B., HULUGALLE N.R., GAULT R.R., Constable GA Using legumes to enhance nitrogen fertility and improve soil condition in cotton cropping systems. Field Crops Research, v.70, p. 27–41, 2001. ROCHETTE, P., AND JANZEN, H. H., Towards a revised coefficient for estimating N2O emissions from legumes, Nutrient Cycling in Agroecosystems, v.73, p.171-179, 2005. ROCHETTE, P.; ANGERS, D. A.; BÉLANGER, G.; CHANTIGNY, M. H.; PRÉVOST, D.; LÉVESQUE G. Emissions of N2O from alfalfa and soybean crops in Eastern Canada, Soil Science Society American Journal, v. 68, p. 493–506, 2004. 60 ROSENKRANZ, P., BRÜGGEMANN, N., PAPEN, H., XU, Z., SEUFERT, G., BUTTERBACH-BAHL, K., N2O, NO and CH4 exchange, and microbial N turnover over a Mediterranean pine forest soil, Biogeosciences, v. 3, p. 121-133, 2006. RUMJANECK N. G.; DOBERT R. C.; VanBERKUN P.; AND TRIPLETT E. W., Common soybean strains in Brazil are members of Bradyrhizobium Elkanii. Applied and Environmental Microbiology, v. 59, p. 4371-4373, 1993. RUMJANEK, N.G.; XAVIER, G.R.; MARTINS, L.M.V.; MORGADO, L.B. e NEVES, M.C.P. Feijão Caupi tem uma nova estirpe de Rizóbio, BR3267, recomendada como inoculante. Boletim de pesquisa e desenvolvimento. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, (Embrapa Agrobiologia. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 15), 16p, 2006. RUSER , R. et al. Compaction and fertilization effects on nitrous oxide and methane fluxes in potato fields. Soil Science Society American Journal, v.62, p.1587-1595, 1998. RYCHLIK, W.; SPENCER, W. J.; RHOADS, R. E. Optimization of the annealing temperature for DNA amplification in vitro, Nucleic Acids Research, Oxford, v. 18, p. 6409-6412, 1990. SAIKI, R., GELFAND, D., STOFFEL, S., SCHARF, S., HIGUCHI, R., HORN, G., MULLIS, K. AND ERLICH, H. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase, Science, v. 239, p.487-91, 1988. SAIKI, R.K.; SCHARF, S.; FALOONA, F.; MULLIS, K.B.; HORN, G.T.; ERLICH, H.A.; ARNHEIM, N. Enzymatic amplification of b-globulin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science, v. 230, p. 1350-1354, 1985. SAMBROOK, J.; FRITSCH, E.F. and MANIATIS, T. Molecular Cloning: a laboratory manual. 2nd ed. N.Y., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1659 p.,1989. SAMESHIMA-SAITO, R.; CHIBA, K.; HIRAYAMA, J.; ITAKURA, M.; MITSUI, H.; EDA, S.; MINAMISAWA, K. Symbiotic Bradyrhizobium japonicum reduces N2O surrounding the soybean root system via nitrous oxide reductase, Applied and Environmental Microbiology, v. 72, p. 2526–2532, 2006b. SAMESHIMA-SAITO, R.; CHIBA, K.; MINAMISAWA, K. Correlation of denitrifying capability with the existence of nap, nir, nor e nos genes in diverse strains of soybean Bradyrhizobia. Microbes and Environments, v.21, p. 174-184, 2006a. SANTOS, C.E.R.S.; STAMFORD, N.P.; FREITAS, A.D.S.; VIEIRA, I.M.M.B.SOUTO, S.M.; NEVES, M.C.P. e RUMJANECK, N.G. Efetividade de rizóbios isolados de solos da região Nordeste do Brasil na fixação de N2 em amendoim (Arachis hypogea L.). Acta Scientiarum, Agronomy, v.27, p.301-307, 2005. SANTOS, V. A. F.; NEVES, M. C. P.; RUMJANECK, N. G. Differential symbiotic efficiency by shadyng of soybean nodulated by B. Japonicum and B. Elkanii strains. Soil Biology e Biochemistry, v. 29, n. 5/6, p. 1015-1018, 1997. 61 SCHEINERT, P.; BEHRENS, B.; KAHLE, D. Optimizing DNA Amplification Protocols using the Eppendorf ® Mastercycler ® . Eppendorf North America, Apr. 8. 2003. Disponível em: http://www.eppendorfna.com/applications/PCR_appl_protocolsMC.asp acesso em: 3 de março 2010. SCHNEIDER, M., DE BRUIJN, F.J. Rep-PCR mediated genomic fingerprinting of rhizobia and computer-assisted phylogenetic patterns analysis.World Journal Microbiol. Biotechnol. p.12, v. 163-174, 1996 SHAPLEIGH, J. P., The denitrifying prokaryotes, p. 769-792. In M. Dworkin (ed.), The Prokaryotes:A Handbook on the Biology of Bacteria: Volume 2: Ecophysiology and Biochemistry, Springer-Verlag, 2007. SITAULA, B.K. et al. Rapid analysis of climate gases by wide bore capillary gas chromatography. Journal of Environmental Quality, v.21, p.493-496, 1992. SMITH, G. B., SMITH, M. S., Symbiotic and free-living denitrification by Bradyrhizobium japonicum, Soil Scienty Society American, v. 50, p. 349–354, 1986. SMITH, J. L. & MYUNG, H. U. Rapid procedures for preparing soil and KCL extracts for 15N analysis, Community Soil Science and Plant Analyses, v. 21, p. 2173-2179, 1990. SPRENT, J.I. Legume trees and shrubs in the tropics: N2 fixation in perspective, Soil Biology Biochemist, v. 27, p. 401–407, 1995. TAYLOR, C. et al., Determination of the order of substrate addition to MspI DNA methyltransferase using a novel mechanism-based inhibitor, The Biochemical Journal, v. 291, p. 493–504, 1993. THOMSEN, J.; GEEST, T.; and COX, R. Mass-spectrometric Studies of the Effect of pH on the Accumulation of Intermediates in Denitrification by Paracoccus denitrificans. Applied and Environmental Microbiology, v. 60, p. 536-541,1994. TIEDJE, J.M., Methods of Soil Analysis, Denitrifiers, Microbiological and Biochemical Properties, Soil Science Society of American, Part 2, p. 245-267, 1994. UEDA, T.; SUGA, Y.; YAHIRO, N.; MATSUGUCHI,T. Phylogeny of sym plasmids of rhizobia by PCR-based sequencing of a nodC segment. Journal Bacteriology, v. 177, p. 468-472, 1995. VAN BERKUM P, KEYSER H.H., Anaerobic growth and denitrification among different serogroups of soybean rhizobia, Applied Environmental Microbiology, v. 49, p. 772–777, 1985. VAN BERKUN, P. Evidence for a third uptake hydrogenase phenotype among the soybean bradyrhizobia, Applied and Environmental Microbiology, v. 56, p. 3835-3841, 1990. VAN SPANNING, R.; RICHARDSON, D., FERGUSON, S. Introduction to the biochemistry and molecular biology of denitrification. In: Bothe, H., et al. (Eds.) Biology of the nitrogen cycle. p. 3-20. Amsterdam: Elsevier. 2007. 62 VARGAS, M. A. T.; MENDES, I. C.;SUHET, A. R.; PERES,J. R. Duas novas esitirpes para inoculação da soja. Planaltina, EMBRAPA-CPAC, (EMBRAPA CPAC. Comunicado técnico), 3p, 1992. VARGAS, M. A. T.; SUHET, A. R.; MENDES, I. C.; PERES, J. R. R. Fixação biológica de nitrogênio em solos do cerrado. Brasília: EMBRAPA-SPI, 83p, 1994. VELASCO, L., S. MESA, C. X. U., M. J. DELGADO AND E. J. BEDMAR, Molecular characterization of nosRZDFYLX genes coding for denitrifying nitrous oxide reductase of Bradyrhizobium japonicum. Antonie van Leeuwenhoek, v. 85, p. 229–235, 2004 WATSON, R.J., HAITAS-CROCKETT, C., MARTIN, T., HEYS, R. Detection of Rhizobium meliloti cells in field soil and nodules by polymerase chain reaction, Canadian Journal Microbiology, v. 41, p. 815-825, 1995. WEBER, D. F.; KEYSER, H. H.; URATSU, S. L. Serological distribution of Bradyrhizobium japonicum from U.S. soybean production areas, Agronomical Journal, v.81, p. 786-789, 1989. XAVIER, G. R. Estudo da ocupação nodular de rizóbio em genótipos de caupi (Vigna unguiculata L. Walp) agrupados pela técnica de RAPD. Dissertação (Mestrado) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 123 p, 2000. YANG, L., CAI, Z. The effect of growing soybean (Glycine max L.) on N2O emission from soil, Soil Biology and Biochemistry, v. 37, p. 1205-1209, 2005. YE, R. W.; THOMASm S. M. Microbial nitrogen cycles: phys
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.none.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.publisher.program.fl_str_mv Programa de Pós-Graduação em Fitotecnia
dc.publisher.initials.fl_str_mv UFRRJ
dc.publisher.country.fl_str_mv Brasil
dc.publisher.department.fl_str_mv Instituto de Agronomia
publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
instname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron:UFRRJ
instname_str Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron_str UFRRJ
institution UFRRJ
reponame_str Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
collection Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
bitstream.url.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/1/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf.jpg
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/2/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf.txt
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/3/2011%20-%20Elisamara%20Caldeira%20do%20Nascimento.pdf
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/13656/4/license.txt
bitstream.checksum.fl_str_mv 3dc5d72889275717023e7b5445e035a3
f865344781a844c9a5ab6eb32046b00f
6d6f5bde520118b7eec482ee19fb9abc
7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
repository.mail.fl_str_mv bibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.br
_version_ 1810108083347652608