Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Soares, Bianca da Silva
Data de Publicação: 2013
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11987
Resumo: O Staphylococcus aureus é um importante agente causador de mastite bovina. Está espécie bacteriana possui heterogeneidade genética e uma população caracterizada por estirpes geneticamente diversas. A análise da variação genética é uma importante ferramenta para fins de estudos epidemiológicos. No presente estudo, foi avaliada a diversidade genética de 56 Staphylococcus aureus isolados de leite bovino mastítico em sete propriedades da região Sul- Fluminense do Rio de Janeiro através das técnicas de ERIC e (GTG)5-PCR. Foram testados 12 protocolos de ERIC-PCR, sendo selecionados três com maior poder discriminatório. Com o protocolo 01, obteve-se 6 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,863. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes dentro da mesma propriedade e em propriedades de municípios diferentes. O protocolo 02 foi gerado afim de melhorar a performance da técnica e propiciou a obtenção de15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,961, onde foi observada grande diversidade gênica e variabilidade entre os isolados. No entanto, o protocolo 02 não apresentou reprodutibilidade. Desse modo, foi testado um terceiro protocolo, obtendo-se 16 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,96. A partir deste, também observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Para a execução da técnica de (GTG)5- PCR foram testados oito protocolos,elegendo-se apenas um de maior poder discriminatório.Este protocolo gerou 15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,957. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Porém as tentativas subsequentes de execução da técnica não foram bem sucedidas o que indica a necessidade de ajustes em sua padronização em nosso laboratório de maneira a garantir que, uma vez otimizada, possa gerar resultados confiáveis e reprodutíveis. Os resultados obtidos foram comparados com uma tipagem molecular prévia através do PFGE que gerou 6 perfis genéticos distintos em 19 isolados testados. Apesar de produzirem um número elevado de perfis genéticos e um bom poder discriminatório, estas técnicas apresentaram pouca reprodutibilidade, especialmente quando comparadas com a técnica de PFGE.
id UFRRJ-1_7be503d374b7baa31b942cc6e4121ca0
oai_identifier_str oai:rima.ufrrj.br:20.500.14407/11987
network_acronym_str UFRRJ-1
network_name_str Repositório Institucional da UFRRJ
repository_id_str
spelling Soares, Bianca da SilvaSouza, Miliane Moreira Soares de010.761.987-32http://lattes.cnpq.br/0865211214618618Coelho, Shana de Mattos de OliveiraCoelho, Irene da SilvaPereira, Ingrid Annes060.162.377-01http://lattes.cnpq.br/75721156554659972023-12-22T02:00:08Z2023-12-22T02:00:08Z2013-02-27SOARES, Bianca da Silva. Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.. 2013. 46 f. Dissertação (Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11987O Staphylococcus aureus é um importante agente causador de mastite bovina. Está espécie bacteriana possui heterogeneidade genética e uma população caracterizada por estirpes geneticamente diversas. A análise da variação genética é uma importante ferramenta para fins de estudos epidemiológicos. No presente estudo, foi avaliada a diversidade genética de 56 Staphylococcus aureus isolados de leite bovino mastítico em sete propriedades da região Sul- Fluminense do Rio de Janeiro através das técnicas de ERIC e (GTG)5-PCR. Foram testados 12 protocolos de ERIC-PCR, sendo selecionados três com maior poder discriminatório. Com o protocolo 01, obteve-se 6 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,863. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes dentro da mesma propriedade e em propriedades de municípios diferentes. O protocolo 02 foi gerado afim de melhorar a performance da técnica e propiciou a obtenção de15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,961, onde foi observada grande diversidade gênica e variabilidade entre os isolados. No entanto, o protocolo 02 não apresentou reprodutibilidade. Desse modo, foi testado um terceiro protocolo, obtendo-se 16 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,96. A partir deste, também observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Para a execução da técnica de (GTG)5- PCR foram testados oito protocolos,elegendo-se apenas um de maior poder discriminatório.Este protocolo gerou 15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,957. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Porém as tentativas subsequentes de execução da técnica não foram bem sucedidas o que indica a necessidade de ajustes em sua padronização em nosso laboratório de maneira a garantir que, uma vez otimizada, possa gerar resultados confiáveis e reprodutíveis. Os resultados obtidos foram comparados com uma tipagem molecular prévia através do PFGE que gerou 6 perfis genéticos distintos em 19 isolados testados. Apesar de produzirem um número elevado de perfis genéticos e um bom poder discriminatório, estas técnicas apresentaram pouca reprodutibilidade, especialmente quando comparadas com a técnica de PFGE.Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.Staphylococcus aureus is the most important etiologic agent of bovine mastitis. This bacterial species presents genetic heterogeneity and has a characterized population by genetically diverse strains. The analysis of genetic variation is an important tool for epidemiological studies. In this study, we assessed the genetic diversity of 56 S.aureus isolated from bovine mastitic milk in seven properties in south region the state of Rio de Janeiro by ERICPCR and(GTG)5-PCR techniques. 12 protocols were tested by ERIC-PCR, selected three with higher discriminatory power. With protocol 01, was obtained 6 cluster with discriminatory power of 0,863. Observed the dispersion of isolates in different properties with genetic similarity and the presence of clonal strains circulating within the same state and properties indifferent cities. The protocol 02 was generated in order to improve the performance of the technique and provided to obtain 15 cluster with a discriminatory power of 0,961, where it was observed genetic diversity and variability between isolates. However, the protocol 02 showed no reproducibility. Thus, we tested a third protocol, obtained 16 cluster with a discriminatory power of 0,96. From this, also observe the dispersion of isolates in different properties with genetic similarity and the presence of clonal strains circulating in properties indifferent cities. To implement the technique (GTG)5-PCR were tested eight protocols, electing only one of higher discriminatory power. This protocol generated 15 clusters with a discriminatory power of 0.957.Observed the dispersion of isolates in different properties with genetic similarity and the presence of clonal strains circulating in properties indifferent cities. But subsequent attempts to apply the technique were not successful which indicates the need for adjustments in their standard in our laboratory in order to ensure that, once optimized, can generate reliable and reproducible results. The results were compared to prior a molecular typing by PFGE that generated six distinct genetic profiles in 19 isolates tested. Despite producing a high number of genetic profiles and good discriminatory power, these techniques showed low reproducibility, especially when compared with the PFGE technique.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Ciências VeterináriasUFRRJBrasilInstituto de VeterináriamastiteStaphylococcus aureustipagem molecularMastitis,Staphylococcus aureustyping molecularCiências AgráriasAplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.Use of REP-PCR for genetic diversity analyses of Staphylococcus aureus isolated from mastitis bovine.info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisAARESTRUP F. M. Antimicrobial Resistance in Bacteria of Animal Origin. ASM Press, Washington, D.C., 2006. AKINEDEN, O.; ANNEMULLER, C.; HASSAN, A.A.; LAMMLER, C.; WOLTER, W.; ZSCHOCK, M. Toxin genes and other characteristics of Staphylococcus aureus isolates from milk of cows with mastitis. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 8: 959–964, 2001. AIRES T.A.C.P. Mastites em Bovinos: caracterização etiológica, padrões de sensibilidade e implementação de programas de qualidade do leite em explorações do Entre-Douro e Minho. Dissertação de Mestrado Integrado em Medicina Veterinária, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Técnica de Lisboa, Lisboa, 2010. AIRES-DE-SOUSA, M. High interlaboratory reproducibility of DNA sequence-based typing of bacteriain a multicenter study. J. Clin. Microbiol. v.44, pp.619-21,2006. ANDERSON, K. L. & LYMAN, R. L. Long-term persistence of specific genetic types of mastitis-causing Staphylococcus aureus on three dairies. J. Dairy Sci., v.89, pp.4551-4556, 2006. BABOUEE, B.; FREI, R.; SCHULTHEISS, E.; WIDMER, A. F.; GOLDENBERGER, D. Comparison of the DiversiLab repetitive element PCR system with spa typing and pulsed-field gel electrophoresis for clonal characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.49, pp.1549–1555, 2011. BANNERMAN, T. L.; HANCOCK, D.; TENOVER, F.; Miller, J. M. Pulsed-field gel electrophoresis as a replacement for bacteriophage typing of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.33, pp.551-555, 1995. BENEDETTE, M. F.; SILVA, D.; ROCHA, F.P.C. Mastite bovina. Revista Científica Eletrônica de Medicina Veterinária, Garça, v.7, nº11, pp.1-5, 2008. BENS, C. C.; VOSS, A.; KLAASSEN, C. H. Presence of a novel DNA methylation enzyme in methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates associated with pig farming leads to uninterpretable results in standard pulsed-field gel electrophoresis analysis. J. Clin. Microbiol.v.44, pp.1875–1876, 2006. BOTREL M. A.; HAENNI, M.; MORIGNAT, E.; SULPICE, P.; MADEC, J.Y.; CALAVAS, D. Distribution and antimicrobial resistance of clinical and subclinical mastitis pathogens in dairy cows in Rhone-Alpes, France. Foodborne Pathog. Dis. v.7, pp.479–487, 2010. BRADLEY A. J., LEACH K. A., BREEN J. E., GREEN L. E., GREEN M. J. Survey of the incidence and a etiology of mastitis on dairy farms in England and Wales.Vet. Rec. v.160, pp.253–258, 2007. BRAEM, G.; DE VLIEGHER, S.; SUPRÉ, K.; HAESEBROUCK, F.; LEROY, F.; DE VUYST L. (GTG)5-PCR fingerprinting for the classification and identification of 32 coagulase-negative Staphylococcus species from bovine milk and teat apices: a comparison of type strains and field isolates. Vet. Microbiol. v.147, pp.67–74, 2011. CABRAL, K.G.; LÄMMLER, C.; ZSCHÖCK, M.; LANGONI, H.; DE SÁ, M.E.P.; VICTÓRIA, C.; DA SILVA, A.V. Pheno and genotyping of Staphylococcus aureus, isolated from bovine milk samples from São Paulo State, Brazil. Can. J. Microbiol. 50: 901–909, 2004. CASSOL, D.M.S.; SANDOVAL, G.A.F.; PERICOLE, J.J.; GIL,P.C.N.; MARSON, F.A. Introdução Agentes da Mastite Diagnóstico e Tratamento. A Hora Veterinária, v.29,nº175,2010. CASSONE M. & GIORDANO A. Resistance genes travelingthe microbial internet: down the drain, up the food chain? Expert Rev. Anti Infect. Ther. v.7, pp.637–639, 2009. CHIOU, C. S.; WEI, H. L.; YANG, L. C. Comparison of pulsed-field gel electrophoresis and coagulase gene restriction profile analysis techniques in the molecular typing of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol.v.38, pp.2186– 2190, 2000. CHUNG, M.; DE LENCASTRE, H.; MATTHEWS, P.; TOMASZ, A.; ADAMSSON, I.; AIRES DE SOUSA, M.; CAMOU, T.; COCUZZA, C.; CORSO, A.; COUTO, I.; DOMINGUEZ, A.; GNIADKOWSKI, M.; GOERING, R.; GOMES, A.; KIKUCHI, K.; MARCHESE, A.; MATO, R.; MELTER, O.; OLIVEIRA, D.; PALACIO, R.; SA-LEAO, R.; SANTOS SANCHES, I.; SONG, J. H.; TASSIOS, P. T.; VILLARI P. Molecular typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by pulsed-field gel electrophoresis: comparison of results obtained in a multi laboratory effort using identical protocols and MRSA strains. Microb. Drug. Resist. v.6, pp.189–198, 2000. COELHO, S. M. S., Caracterização fenotípica e genotípica de fatores de virulência e resistência à oxacilina em Staphylococcusspp. coagulase-positivos isolados de mastite bovina. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Tese de Doutorado, 2008. COOPER, J. E. & FEIL, E. J. The phylogeny of Staphylococcus aureus – which genes make the best intra-species markers? Microbiology v.152, pp.1297–1305, 2006. COSTA, E. O.; R AIA, M.R.; WATANABE, E.T.; G ARINO, F.; COELHO,V. Influência do tratamento intramamário de casos de mastite de bovinos em lactação em relação à presença de resíduos de antibióticos no leite de quartos sadios. Napgama, v.3, nº4, pp.14-17, 2000. CRUZ, C.D. Programa Genes: Diversidade genética.Viçosa, Editora UFV. 278p, 2008. CUNY C.; STROMMENGER B.; WITTE W.; STANEK C. Groups of infections in horses with MRSA ST1, ST254, and ST398 in a veterinary hospital. Microb. Drug Resist.,v.14, pp.307–310, 2008. DE BRUIJN, F.J Use of repetitive (repetitive extragenic palindromic and enterobacterial repetitive intergenic consensus) sequences and the polymerase chain reaction to fingerprint the genomes of Rhizobium meliloti isolates and other soil bacteria. Appl. Environ. Microbiol. v.58, pp.2180-2187, 1992. 33 DE BRUIJN, F.J.; RADEMAKER, J.; SCHNEIDER, M.; ROSSBACH, U.; LOUWS, F.J. Rep-PCR genomic fingerprinting of plant-associated bacteria and computer-assisted phylogenetic analyses.In: Stacey G, Mullin B, Gresshoff P. (eds), Biology of plant-microbe interaction; Proceedings of the 8th International Congress of Molecular Plant- Microbe Interactions. USA, APS Press, pp.497-502, 1996. DE VUYST, L.; CAMU, N., DE WINTER, T.; VANDEMEULEBROECKE, K.; VAN DE PERRE, V.; VANCANNEYT, M.; DE VOS, P.; CLEENWERCK, I. Validation of the (GTG)5-rep- PCR fingerprinting technique for rapid classification and identification of acetic acid bacteria, with a focus on isolates from Ghanaian fermented cocoa beans. Int. J. Food Microbiol.v.125, pp.79–90, 2008. DEPLANO, A.; SCHUERMANS, A.; VAN ELDERE, J.; WITTE, W.; MEUGNIER, H.; ETIENNE, J.; GRUNDMANN, H.; JONAS, D.; NOORDHOEK G. T.; DIJKSTRA, J.; VAN BELKUM, A.; VAN LEEUWEN, W.; TASSIOS, P. T.; LEGAKIS, N. J.; VAN DER ZEE, A.; BERGMANS, A.; BLANC, D. S.; TENOVER, F. C.; COOKSON, B. C.; O’NEIL, G.; STRUELENS, M. J. AND THE EUROPEAN STUDY GROUP ON EPIDEMIOLOGICAL MARKERS OF THE ESCMID. Multicenter evaluation of epidemiological typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains by repetitive-element PCR analysis. J. Clin. Microbiol. v.38, pp.3527–3533, 2000. DIARIO DO VALE, Rio Leite Sul Reúne Pecuaristas no dia 13 em Resende. Reportagem online.http://diariodovale.uol.com.br/noticias/0,43091,Rio-Leite-Sul-reune-pecuaristas-dia-13-em-Resende.html#ixzz2HQDzvwDq acessada 29 de dezembro de 2011 às 19hrs. ENRIGHT, M. C. & SPRATT, B. G. Multilocus sequence typing. Trends Microbiol. v.7, pp.482-487, 1999. EUZÉBY, J. List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature,2007. FARBER, J. M. ; GENDEL, S. M.;TYLER, K. D.; BOERLIN, P.; LANDRY, W. L.; FRITSCHEL, S. J.; BARRET, T. J. Molecular typing and differentiation. In: DOWNES, F.P.; ITO, H. (Ed.). Compendium of methods for the microbiological examination of foods. 4th ed. Washington D. C.: American Public Health Association chap. 11,pp.127-156, 2001. FEIL, E. J.; COOPER, J. E.; GRUNDMANN, H.; ROBINSON, D. A.; ENRIGHT, M. C.; BERENDT, T. PEACOCK, S. J.; SMITH, J. M.; MURPHY, M.; SPRATT, B. G.; MOORE, C. E.; DAY, N. P. How clonal is Staphylococcus aureus? J. Bacteriol. v.185, pp.3307-3316, 2003. FERREIRA, L. M. Epidemiologia molecular aplicada ao monitoramento de estirpes de Staphylococcus aureus envolvidas nos casos de mastite bovina. Dissertação de Mestrado. Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias. UNESP Jaboticabal, 2008. FERREIRA, L. M.; NADER FILHO, A.; OLIVEIRA, E.; ZAFALON, L. F.; SOUZA, V. Variabilidades fenotípica e genotípica de estirpes de Staphylococcus aureus isoladas em casos de mastite subclínica bovina. Cienc.Rural, Santa Maria,v.36, nº4,2006. 34 FITZGERALD, J. R. & MUSSER, J. M. Evolutionary genomics of pathogenic bacteria.Trends Microbiol. v.9, pp.547-553, 2001. FITZGERALD, J. R.; STURDEVANT, D. E.; MACKIE, S. M.; GILL, S. R.; MUSSER, J. M. Evolutionary genomics of Staphylococcus aureus: insights into the origin of methicillin-resistant strains and the toxic shock syndrome epidemic. Proc. Natl. Acad. Sci. USA v.98, pp.8821-8826, 2001. GEVERS, D.; HUYS, G.; SWINGS, J. Applicability of rep-PCR fingerprinting for identification of Lactobacillus species. FEMS Microbiol.Lett., v.205, pp.31–36, 2001. GILLINGS, M. & HOLLEY, M. Repetitive element PCR fingerprinting (rep-PCR) using enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC) primers is not necessarily directed at ERIC elements. Letters Appl. Microbiol., Bedford, v.25, pp.17-21, 1997. GANDRA, E. A.;GANDRA,T.V.K.; MELLO, W.S.; GODOI, H.S. Técnicas moleculares aplicadas à microbiologia de alimentos. Acta .Sci. Technol., Maringá, v.30, nº1,pp.109-118, 2008. HAENNI, M.; GALOFARO, L.; PONSIN, C.; BES, M.; LAURENT, F.; MADEC, J.Y. Staphylococcal bovine mastitis in France: enterotoxins, resistance and the human Geraldine methicillin-resistant Staphylococcus aureus clone. J. Antimicrob. Chemother.,v.66, pp. 216–218, 2011. HALLIN, M.; DENIS, O.; DEPLANO, A.; DE MENDONCA, R.; DE RYCK, R.; ROTTIERS, S.; STRUELENS, M. J. Genetic relatedness between methicillin-susceptible and methicillin-resistant Staphylococcus aureus: results of a national survey. J. Antimicrob. Chemother.v.59, pp.465–472, 2007. HASMAN H., MOODLEY, A.; GUARDABASSI, L.; STEGGER, M.; SKOV, R. L.; AARESTRUP, F. M. Spa type distribution in Staphylococcus aureus originating from pigs, cattle and poultry. Vet. Microbiol.v.141, pp.326–331, 2010. HATA, E. ; KATSUDA, K.; KOBAYASHI, H.; UCHIDA, I.; TANAKA, K.; EGUCHI, M. Genetic variation among Staphylococcus aureus strains from bovine milk and their relevance to methicillin-resistant isolates from humans. J. Clin. Microbiol. v.48, pp.2130–2139, 2010. HOOKEY, J.V.; RICHARDSON, J.F.; COOKSON, B.D. Molecular typing of Staphylococcus aureus based in PCR restriction fragment length polymorphism and DNA sequence analysis of the coagulase gene. J ClinMicrobiol, Washington, v.36, nº4, pp.1083-1089, 1998. HUBER, H.; KOLLER,S.; GIEZENDANNER, N.; STEPHAN, R.; ZWEIFEL, C. Prevalence and characteristics of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in humans in contact with farm animals, in livestock, and in food of animal origin, Switzerland, 2009. Euro Surveill., v.15, pp.19542, 2010. 35 HULTON, C.S.J.; HIGGINS, C.F.; SHARP, P.M. ERIC sequences: a novel family of repetitive elements in the genomes of Escherichia coli, Salmonella typhimurium and other enterobacteria. Molecular Microbiology 5: 825-834, 1991. IKAWATY, R.; BROUWER, E.C.; JANSEN, M.D.; VAN DUIJKEREN, E.; MEVIUS, D.; VERHOEF, J.; FLUIT, A.C. Characterization of Dutch Staphylococcus aureus from bovine mastitis using a Multiple Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis. Vet. Microbiol. v.136, pp.277–284, 2009. ISHII, S. & SADOWSKY, M.J. Applications of the rep-PCR DNA fingerprinting technique to study microbial diversity, ecology and evolution. Environ. Microbiol.v.11, pp. 733–740, 2009. JOO, Y. S.; FOX, L. K.; DAVIS, W. C.; BOHACH, G. A.; PARK, Y. H. Staphylococcus aureus associated with mammary glands of cows: genotyping to distinguish different strains among herds.Vet. Microbiol. v.80, pp.131-138, 2001. JØRGENSEN, H. J.; MØRK, T.; CAUGANT, D. A.; KEARNS, A.;RØRVIK, L. M. Genetic variation among Staphylococcus aureus strains from Norwegian bulk milk. Appl. Environ. Microbiol. v.71, pp.8352-8361, 2005. JUHÁSZ-KASZANYITZKY, É.; JÁNOSI, S.; SOMOGYI, P.; DÁN, Á.; VAN DER GRAAF-VAN BLOOIS, L.; VAN DUIJKEREN, E.; WAGENAAR, J. A. MRSA Transmission between cows and humans. Emerg. Infect. Dis. v.13, pp.630-632, 2007. KAPUR, V.; SISCHO, W. M.; GREER, R. S.; WHITTAM, T. S.; MUSSER, J. M. Molecular population genetic analysis of Staphylococcus aureus recovered from cows. J. Clin. Microbiol. v.33, pp.376-380, 1995. KARAHAN M ; CETINKAYA B. Coagulase gene polymorphisms detected by PCR in Staphylococcus aureus isolated from subclinical bovine mastitis in Turkey. Vet J.,v.174, nº2, pp.428-431, 2007. KONEMAN, E.W.; ALLEN, S.D.; JANDA, W.M; SCHRECKENBERGER, P.C.; WINN, J.R. Diagn.Microbiol.6ªed. Rio de Janeiro: Editora MEDS, 2008. KOREˇNOVÁ, J.; LOPAˇSOVSKÁ, J.; KUCHTA, T. Biofilm forming bacterial contaminants in small and medium-sized ewes’ milk and meat processing enterprise in Slovakia. J. Food Nutr. Res. v.48, pp.115–120, 2009. KOREEN, L., RAMASWAMY S. V., GRAVISS E. A., NAIDICH S., MUSSER J. M.spa typing method for discriminating among Staphylococcus aureus isolates: implications for use of a single marker to detect genetic micro- and macrovariation. J. Clin. Microbiol., v.42, pp.792-9,2004. LANOOT, B.; VANCANNEYT, M.; DAWYNDT, P.; CNOCKAERT, M.; ZHANG, J.L.; HUANG, Y.; LIU, Z.H.; SWINGS, J. BOX-PCR fingerprinting as a powerful tool to reveal synonymous names in the genus Streptomyces. Emendeddescriptions are proposed for the species Streptomyces cinereorectus, S. fradiae, S. tricolor, S. 36 colombiensis, S. filamentosus, S. vinaceus and S. phaeopurpureus. Syst. Appl. Microbiol, v.27, pp.84–92, 2004. LIECKFELDT, E.; MEYER, W.; BORNER, T. Rapid identification and differentiation of yeast by DNA and PCR fingerprinting. J. Basic Microbiol., v.33, pp.413-426, 1993. LOEFFLER, A. & LLOYD, D. H. Companion animals: a reservoir for methicillin-resistant Staphylococcus aureus in the community? Epidemiol. Infect. v.138, pp.595–605, 2010. MALORNY, B.; HOORFAR, J.; BUNGE, C.; HELMUTH, R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard. Appl.Environ. Microbiol. v.69, pp.290–296, 2003. MARAFON, G. J. Industrialização da agricultura e formação do Complexo Agroindustrial no Brasil. Geo UERJ Revista do Departamento de Geografia, Rio de Janeiro, v.3,pp.7-21, 2004. MARQUES, V. F. Caracterização Fenogenotípica Dos Fatores De Virulência Em Staphylococcus spp. Isolados De Mastite Bovina. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Dissertação de Mestrado, 2012. MASLOW, J. & MULLIGAN, M. E. Epidemiologic Typing Systems. Infec.Control and Hosp. Epidem., v.17, nº9, pp.595-604, 1996. MCDOUGAL, L. K.; STEWARD, C. D.; KILLGORE, G. E.; CHAITRAM, J. M.; MCALLISTER, S. K., TENOVER, F. C. Pulsed-field gel electrophoresis typing of oxacillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from the United States: establishing a national database. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.5113–5120, 2003. MEACHAM, K.J.; ZHANG, L.; FOXMAN, B.; BAUER, R.J.; MARRS, C.F. Evaluation of genotyping large numbers of Escherichia coli isolates by enterobacterial repetitive intergenic consensus-PCR. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.5224–5226, 2003. MEINTANIS, C.; CHALKOU, K.I.; KORMAS, K.A.; LYMPEROPOULOU, D.S.; KATSIFAS, E.A.; HATZINIKOLAOU, D.G.; KARAGOUNI, A.D Application of rpoB sequence similarity analysis, REP-PCR and BOX-PCR for the differentiation of species within the genus Geobacillus. Lett. Appl. Microbiol. v.46, pp.395–401, 2008. MENDOÇA, E. L. C. Caracterização fenogenotípica da resistência antimicrobiana em Staphylococcus spp. isolados de mastites clínicas e subclínicas em unidades leiteiras de municípios do rio de janeiro como subsídio para implementação de medidas de controle. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Dissertação de Mestrado, 2012. MIDDLETON, J.; FOX, L.; GAY, J.; TYLER, J.; BESSER T. Use of pulsed-field gel electrophoresis for detecting differences in Staphylococcus aureus strain populations between dairy herds with different cattle importation practices.Epidemiol. Infect. v.129, pp.387- 395, 2002. 37 MONECKE, S.; COOMBS, G.; SHORE, A. C.; COLEMAN, D. C.; AKPAKA, P.; BORG, M.; CHOW, H.; JATZWAUK, L.; JONAS, D.; KADLEC, K.; KEARNS, A.; LAURENT, F.; O’BRIEN, F. G.; PEARSON, J.; RUPPELT, A.; SCHWARZ, S.; SCICLUNA, E.; SLICKERS, P.; TAN, H. L.; WEBER, S.; EHRICHT, R. A field guide to pandemic, epidemic and sporadic clones of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. PLoS ONE v.6, e17936., 2011. MONTESINOS, I.; SALIDO, E.; DELGADO, T.; CUERVO, M.; SIERRA, A. Epidemiologic genotyping of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by pulsed field gel electrophoresis at a University Hospital and comparison with antibiotyping and protein A and coagulase gene polymorphisms. J. Clin. Microbiol. v.40,pp.2119-2125, 2002. MORET-STALDER, S.; FOURNIER, C.; MISEREZ, R.; ALBINI, S.; DOHERR, M.G.; REIST, M.; SCHAEREN, W.; KIRCHHOFER, M.; GRABER, H.U.; STEINER, A.; KAUFMANN, T. Prevalence study of Staphylococcus aureus in quarter milk samples of dairy cows in the Canton of Bern, Switzerland. Prev. Vet. Med. v.88, pp.72–76, 2009. MØRK, T., TOLLERSRUD, T.; KVITLE, B.; JØRGENSEN, H. J.; WAAGE, S. Comparison of Staphylococcus aureus genotypes recovered from cases of bovine, ovine, and caprine mastitis. J. Clin. Microbiol. v.43, pp.3979–3984, 2005. MURCHAN, S., KAUFFMANN, M. E.; DEPLANO, A. ; DE RYCK, R.; STRUELENS, M.; OLSSON-LILJEQUIST, B.; RAMSJÖ, U.; COOMBES, G.; COOKSON, B. Harmonization of pulsed field gel electrophoresis protocols for epidemiological typing of Staphylococcus aureus: a single approach developed by consensus in 10 European laboratories and its application for tracing the spread of related strains. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.1574-1585, 2003. OLIVE, D. M. & BEAN, P. Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms. J. Clin. Microbiol. v.37, pp.1661–1669, 1999. PANTOSTI, A. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Associated with Animals and Its Relevance to Human Health. Front Microbiol.,v.3, pp.127, 2012. PAPALEXANDRATOU, Z.; CLEENWERCK, I. DE VOS, P.; DE VUYST, L. (GTG)5-PCR reference framework for acetic acid bacteria. FEMS Microbiol. Lett., v.301,pp.44–49, 2009. PELES, F.; WAGNER, M.; VARGA, L.; HEIN, I.; RIECK, I. P.; GUTSER,K.; KERESZTÚRI, P.; KARDOS, G.; TURCSÁNYI, I.; BÉRI, B.; SZABÓ, A. Characterization of Staphylococcus aureus strains isolated from bovine milk in Hungary. Int. J. Food Microbiol.,v.118, pp.186-193, 1997. PRESTES D.S.; FILAPPI A. & CECIM M. Susceptibilidade à Mastite, fatores que a influenciam: uma revisão.Revista FZVA, Uruguaiana, v.9, nº1, pp.118-132, 2002. RABELLO, R. F.; MOREIRA, B. M.; LOPES, R. M. M.; TEIXEIRA, L. M.; RILEY, L. W.; CASTRO, A. C. D. Multilocus sequence typing of Staphylococcus aureus isolates recovered from cows with mastitis in Brazilian dairy herds. J. Med. Microbiol. v.56, pp.1505-1511, 2007. 38 RIBEIRO M.E.R., PETRINE L.A., AITA M.F., BALBINOTTI M., STUMPF JR W., GOMES J.F., SCHRAMM R.C., MARTINS P.R. & BARBOSA R.S. Relação entre mastite clínica, subclínica infecciosa e não infecciosa em unidades de produção leiteiras na região sul do Rio Grande do Sul. Rev. Bras. Agrociênc. v.9, nº3, pp.287-290, 2003. ROBINSON, D. A. & ENRIGHT, M. C. Multilocus sequence typing and the evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Clin. Microbiol. Infect., v.10, pp. 92–97, 2004. RODRÍGUEZ-LÁZARO, D.; LOMBARD, B.; SMITH, H.; RZEZUTKA, A., D’AGOSTINO, M.; HELMUTH, R. Trends in analytical methodology in food safety and quality: monitoring microorganisms and genetically modified organisms. Trends in Food Science & Technology, v.18, nº6, pp.306-319, 2007. ROESCH M., DOHERR M. G., SCHAREN W., SCHALLIBAUM M., BLUM J. W. Subclinical mastitis in dairy cows in Swiss organic and conventional production systems. J. Dairy Res. v.74, pp.86–92, 2007. SCHWARTZ, D. C.; CANTOR, C. R. Separation of yeast chromosome-sized DNAs by pulsed field gradient gel electrophoresis. Cell, v.37, nº1, pp.67-75, 1984. SILVA, N. Doença da glândula mamária: mamite/mastite. In: MARQUES, D. C. Criação de bovinos. 7 ed. Belo Horizonte: Consultoria Veterinária e Publicações, pp.435 - 451, 2003. SMITH, E. M.;GREEN, L. E.; MEDLEY, G. F.; BIRD, H. E.; DOWSON, C. G. Multilocus sequence typing of Staphylococcus aureus isolated from high-somatic-cell-count cows and the environment of an organic dairy farm in the United Kingdom. J. Clin. Microbiol. v.43, pp.4731-4736, 2005. SMYTH D. S.; FEIL, E. J.; MEANEY ,W. J.; HARTIGAN, P. J.; TOLLERSRUD, T.; FITZGERALD, J.R.; ENRIGHT, M. C.; SMYTH, C. J. Molecular genetic typing reveals further insights into the diversity of animal-associated Staphylococcus aureus. J. Med. Microbiol. v.58, pp.1343–1353, 2009 SOMMERHÄUSER, J.; KLOPPERT, B.; WOLTER, W.; ZSCHÖCK, M.; SOBIRAJ, A.; FAILING, K.The epidemiology of Staphylococcus aureus infections from subclinical mastitis in dairy cows during a control programme. Vet. Microbiol. v.96, pp.91-102, 2003. SON, R.; MICKY, V.; KASING, A.; RAHA, A.R.; PATRICK, G.B.; GULAM, R. Molecular characterization of Vibrio cholerae O1 outbreak strains in Miri, Sarawak (Malaysia). Acta Tropica v.83,pp.169-176, 2002. SOUSA, M.R.P., RISTOW, A.M., NOGUEIRA, E.B., FILHO, R.A.T. CORTEZ, M.A.S. Caracterização de Pequenas Unidades Produtoras de Leite na região Centro e Noroeste do estado do Rio de Janeiro. Ciência Veterinária v.18, nº2/3, pp.79-89,2011. SOUZA, V.; NADER FILHO, A.; MELO, P. C.; FERRAUDO, G. M.; FERRAUDO, A. S.; CONDE, S. O.; FOGAÇA JUNIOR, F. A. Molecular epidemiology of Staphylococcus 39 aureus isolates at different sites in the milk producing dairy farms.Brazilian Journal of Microbiology, 43(4): 1646-1650, 2012. SPIGAGLIA, P. & MASTRANTONIO, P. Evaluation of repetitive element sequence-based PCR as a molecular typing method for Clostridium difficile. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.2454–2457, 2003. STRAUB, J.A.; HERTEL, C.; HAMMES, W.P. A 23S RNAr-targeted polymerase chain reaction-based system for detection of Staphylococcus aureus in meat started cultures and dairy products. J. Food Prot., v.62, pp.1150-1156, 1999. SVEC, P.; VANCANNEYT, M.; SEMAN, M.; SNAUWAERT, C.; LEFEBVRE, K.; SEDLÁˇCEK, I.; SWINGS, J. Evaluation of (GTG)5-PCR for identification of Enterococcus spp. FEMS Microbiol. Lett.v.247, pp.59–63, 2005. TENOVER, F. C.; ARBEIT, G.; ARCHER, J.; BIDDLE, S.; BYRNE, R.; GOERING, G.; HANCOCK, G. A.; HÉBERT, B.; HILL, R. Comparison of traditional and molecular methods of typing isolates of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.32, pp.407–415,1994. TOZZETTI, D. S.; BATAIER, M. N.; ALMEIDA, L. R. Prevenção, controle e tratamento das mastites bovinas: revisão de literatura. Revista Científica Eletrônica de Medicina Veterinária, Garça, v.7.nº10, pp.1-7, 2008. TYLER, K. D.; WANG. G.; TYLER, S. D.; JOHNSON, W. M. Factors affecting reliability and reproducibility of amplification- based DNA fingerprint of representative bacterial pathogens. Journal of Clinical Microbiology, v.35,nº2,pp.199-214, 1997. VAN BELKUM, A.; BAX, R.; PEERBOOMS, P.; GOESSENS, W. H. F.; VAN LEEUWEN, N.; QUINT, W. G. V. Comparison of phage typing and DNA fingerprinting by polymerase chain reaction for discrimination of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains. J. Clin. Microbiol.v.31,pp.798±803, 1992. VAN BELKUM, A.; VAN LEEUWEN, W.; KAUFMANN, M. E.; COOKSON, B.; FOREY, F.; ETIENNE, J.; GOERING, R.; TENOVER, F.; STEWARD, C.; O’BRIEN, F. Assessment of resolution and intercenter reproducibility of results of genotyping Staphylococcus aureus by pulsed-field gel electrophoresis of SmaI macrorestriction fragments: a multicenter study. J. Clin. Microbiol. v.36, pp.1653–1659, 1998. VAN DER ZEE, A; VERBAKEL, H.; VAN ZON, J.C. Molecular genotyping of Staphylococcus aureus strains: Comparison of repetitive element sequence based PCR with various typing methods and isolation of a novel epidemicity marker. J. Clin. Microbiol. v.37, pp.342-349, 1999. VAN LEEUWEN, W.; MELLES, D. C.; ALAIDAN, A.; AL-AHDAL, M.; BOELENS, H. A. M.; SNIJDERS, S. V.; WERTHEIM, H.; VAN DUIJKEREN, E.; PEETERS, J. K.; VAN DER SPEK, P. J.; GORKINK, R.; SIMONS, G.; VERBRUGH, H. A.; VAN BELKUM, A. Host- and tissue-specific pathogenic traits of Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. V.187, pp.4584-459, 2005. 40 VANDERHAEGHEN, W.; HERMANS, K.; HAESEBROUCK, F.; BUTAYE, P. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in food production animals. Epidemiol. Infect. v.138, pp.606–625, 2010. VERSALOVIC, J. & LUPSKI, J.R. Interspersed repetitive sequences in bacterial genomes. In: De Bruijn, F.J., Lupski, J.R., Weinstock, G.M. (Eds.), Bacterial Genomes: Physical Structure and Analysis, 2nd ed., Kluwer Academic Publishers, Norwell, MA, pp.38–48, 1999. VERSALOVIC, J.; SCHNEIDER, M.; DE BRUIJN, F.J.; LUPSKI, J.R. Genomic fingerprinting of bacteria using repetitive sequence-based polymerase chain reaction. Methods Mol. Cell.Biol. v.5, pp. 25–40, 1994. VERSALOVIC, J.; KOUETH, T.; LUPSKI, J.R. Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and application to fingerprinting of bacterial genomes. Nucleic Acid Research v.19, pp.6823-6831, 1991. WHIST A.C., OSTERAS O. & SOLVEROD L. Clinical mastitis in Norwegian herds after a combined selective dry-cow therapy and teat-dipping trial. Dairy Sci. v.89, pp.4649-4659, 2006. WIESER, M., BUSSE, H.J. Rapid identification of Staphylococcus epidermidis. Int. J. Syst. Evol. Microbiol.v.50, pp.1087–1093, 2000. WILSON, L.A. & SHARP, P.M. Enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC) sequences in Escherichia coli: evolution and implications for ERIC-PCR. Mol. Biol. Evol.v.23, pp.1156–1168, 2006. WOODS C. R.; VERSALOVIC, J., KOEUTH, T. & LUPSKI, J. R. Analysis of relationships among isolates of Citrobacterdiversus by using DNA fingerprints generated by repetitive sequence based primers in the polymerase chain reaction. J. Clin. Microbiol.v.30,pp.2921±2929, 1992. ZADOKS, R. N.; VAN LEEUWEN, W. B.; KREFT, D.; FOX, L. K.; BARKEMA, H. W.; SCHUKKEN, Y. H.; VAN BELKUM, A. Comparison of Staphylococcus aureus isolates from bovine and human skin, milking-equipment, and bovine milk by phage typing, pulsed-field gel electrophoresis, and binary typing. J. Clin. Microbiol. v.40, pp.3894-3902, 2002. ZADOKS, R.; VAN LEEUWEN, W.; BARKEMA, H.; SAMPIMON, O.; VERBRUGH, H.; SCHUKKEN, Y. H.; VAN BELKUM, A. Application of pulsed-field gel electrophoresis and binary typing as tools in veterinary clinical microbiology and molecular epidemiologic analysis of bovine and human Staphylococcus aureus isolates. J. Clin. Microbiol. v.38, pp.1931-1939, 2000. ZAFALON, L. F.; LANGONI, H.; BENVENUTTO, F.; CASTELANI, L.; BROCCOLO, C. R. Aspectos epidemiológicos da mastite bovina causada por Staphylococcus aureus.Veterinária e Zootecnia, v.15, nº1, 56-65, 2008. 41 ZAFALON, L.F.; NADER FILHO, A.; OLIVEIRA, J.V. Subclinical mastitis caused by Staphylococcus aureus: cost benefit analysis of antibiotic therapy in lactating cows. Arq.Bras. Med. Vet. Zootec., v.59, pp.577-585, 2007. ZHANG, K.; SPARLING, J.; CHOW, B.L.; ELSAYED, S.; HUSSAIN, Z.; CHURCH, D.L.; GREGSON, D.B.; LOUIE, T.; CONLY, J.M. New Quadriplex PCR Assay for Detection of Methicillin and Mupirocin Resistance and Simultaneous Discrimination of Staphylococcus aureus from Coagulase-Negative Staphylococci. Journal of clinical microbiology, v.42,nº11,pp.4947–4955, 2004. ZSCHÖCK, M.; RISSE, K.; SOMMERHÄUSER, J. Occurrence and clonal relatedness of sec/tst-gene positive Staphylococcus aureus isolates of quartermilk samples of cows suffering from mastitis.Lett. Appl. Microbiol. v.38, pp.493-498, 2004.https://tede.ufrrj.br/retrieve/14486/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/17500/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/23820/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/30204/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/36500/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/42868/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/49326/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/55742/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/3470Submitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2020-04-29T14:31:06Z No. of bitstreams: 1 2013 - Bianca da Silva Soares.pdf: 964225 bytes, checksum: f4b16ad54dce12d47503fa9161391eff (MD5)Made available in DSpace on 2020-04-29T14:31:06Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2013 - Bianca da Silva Soares.pdf: 964225 bytes, checksum: f4b16ad54dce12d47503fa9161391eff (MD5) Previous issue date: 2013-02-27info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJinstname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)instacron:UFRRJTHUMBNAIL2013 - Bianca da Silva Soares.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1943https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/1/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpgcc73c4c239a4c332d642ba1e7c7a9fb2MD51TEXT2013 - Bianca da Silva Soares.pdf.txtExtracted Texttext/plain119681https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/2/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.txt59b8d8a0edfa3c51a5e8e801b472e28eMD52ORIGINAL2013 - Bianca da Silva Soares.pdf2013 - Bianca da Silva Soaresapplication/pdf964225https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/3/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdff4b16ad54dce12d47503fa9161391effMD53LICENSElicense.txttext/plain2089https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/4/license.txt7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7MD5420.500.14407/119872023-12-21 23:00:08.717oai:rima.ufrrj.br:20.500.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Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttps://tede.ufrrj.br/PUBhttps://tede.ufrrj.br/oai/requestbibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.bropendoar:2023-12-22T02:00:08Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)false
dc.title.por.fl_str_mv Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
dc.title.alternative.eng.fl_str_mv Use of REP-PCR for genetic diversity analyses of Staphylococcus aureus isolated from mastitis bovine.
title Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
spellingShingle Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
Soares, Bianca da Silva
mastite
Staphylococcus aureus
tipagem molecular
Mastitis,
Staphylococcus aureus
typing molecular
Ciências Agrárias
title_short Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
title_full Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
title_fullStr Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
title_full_unstemmed Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
title_sort Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.
author Soares, Bianca da Silva
author_facet Soares, Bianca da Silva
author_role author
dc.contributor.author.fl_str_mv Soares, Bianca da Silva
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Souza, Miliane Moreira Soares de
dc.contributor.advisor1ID.fl_str_mv 010.761.987-32
dc.contributor.advisor1Lattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/0865211214618618
dc.contributor.advisor-co1.fl_str_mv Coelho, Shana de Mattos de Oliveira
dc.contributor.referee1.fl_str_mv Coelho, Irene da Silva
dc.contributor.referee2.fl_str_mv Pereira, Ingrid Annes
dc.contributor.authorID.fl_str_mv 060.162.377-01
dc.contributor.authorLattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/7572115655465997
contributor_str_mv Souza, Miliane Moreira Soares de
Coelho, Shana de Mattos de Oliveira
Coelho, Irene da Silva
Pereira, Ingrid Annes
dc.subject.por.fl_str_mv mastite
Staphylococcus aureus
tipagem molecular
topic mastite
Staphylococcus aureus
tipagem molecular
Mastitis,
Staphylococcus aureus
typing molecular
Ciências Agrárias
dc.subject.eng.fl_str_mv Mastitis,
Staphylococcus aureus
typing molecular
dc.subject.cnpq.fl_str_mv Ciências Agrárias
description O Staphylococcus aureus é um importante agente causador de mastite bovina. Está espécie bacteriana possui heterogeneidade genética e uma população caracterizada por estirpes geneticamente diversas. A análise da variação genética é uma importante ferramenta para fins de estudos epidemiológicos. No presente estudo, foi avaliada a diversidade genética de 56 Staphylococcus aureus isolados de leite bovino mastítico em sete propriedades da região Sul- Fluminense do Rio de Janeiro através das técnicas de ERIC e (GTG)5-PCR. Foram testados 12 protocolos de ERIC-PCR, sendo selecionados três com maior poder discriminatório. Com o protocolo 01, obteve-se 6 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,863. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes dentro da mesma propriedade e em propriedades de municípios diferentes. O protocolo 02 foi gerado afim de melhorar a performance da técnica e propiciou a obtenção de15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,961, onde foi observada grande diversidade gênica e variabilidade entre os isolados. No entanto, o protocolo 02 não apresentou reprodutibilidade. Desse modo, foi testado um terceiro protocolo, obtendo-se 16 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,96. A partir deste, também observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Para a execução da técnica de (GTG)5- PCR foram testados oito protocolos,elegendo-se apenas um de maior poder discriminatório.Este protocolo gerou 15 agrupamentos com um poder discriminatório de 0,957. Observou-se a dispersão de isolados com similaridade genética em diferentes propriedades e presença de cepas clonais circulantes em propriedades de municípios diferentes. Porém as tentativas subsequentes de execução da técnica não foram bem sucedidas o que indica a necessidade de ajustes em sua padronização em nosso laboratório de maneira a garantir que, uma vez otimizada, possa gerar resultados confiáveis e reprodutíveis. Os resultados obtidos foram comparados com uma tipagem molecular prévia através do PFGE que gerou 6 perfis genéticos distintos em 19 isolados testados. Apesar de produzirem um número elevado de perfis genéticos e um bom poder discriminatório, estas técnicas apresentaram pouca reprodutibilidade, especialmente quando comparadas com a técnica de PFGE.
publishDate 2013
dc.date.issued.fl_str_mv 2013-02-27
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2023-12-22T02:00:08Z
dc.date.available.fl_str_mv 2023-12-22T02:00:08Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/masterThesis
format masterThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv SOARES, Bianca da Silva. Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.. 2013. 46 f. Dissertação (Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11987
identifier_str_mv SOARES, Bianca da Silva. Aplicação de Técnicas de REP-PCR na Análise de Isolados de Staphylococcus aureus em amostras de Mastite Bovina.. 2013. 46 f. Dissertação (Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica.
url https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11987
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.relation.references.por.fl_str_mv AARESTRUP F. M. Antimicrobial Resistance in Bacteria of Animal Origin. ASM Press, Washington, D.C., 2006. AKINEDEN, O.; ANNEMULLER, C.; HASSAN, A.A.; LAMMLER, C.; WOLTER, W.; ZSCHOCK, M. Toxin genes and other characteristics of Staphylococcus aureus isolates from milk of cows with mastitis. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 8: 959–964, 2001. AIRES T.A.C.P. Mastites em Bovinos: caracterização etiológica, padrões de sensibilidade e implementação de programas de qualidade do leite em explorações do Entre-Douro e Minho. Dissertação de Mestrado Integrado em Medicina Veterinária, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Técnica de Lisboa, Lisboa, 2010. AIRES-DE-SOUSA, M. High interlaboratory reproducibility of DNA sequence-based typing of bacteriain a multicenter study. J. Clin. Microbiol. v.44, pp.619-21,2006. ANDERSON, K. L. & LYMAN, R. L. Long-term persistence of specific genetic types of mastitis-causing Staphylococcus aureus on three dairies. J. Dairy Sci., v.89, pp.4551-4556, 2006. BABOUEE, B.; FREI, R.; SCHULTHEISS, E.; WIDMER, A. F.; GOLDENBERGER, D. Comparison of the DiversiLab repetitive element PCR system with spa typing and pulsed-field gel electrophoresis for clonal characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.49, pp.1549–1555, 2011. BANNERMAN, T. L.; HANCOCK, D.; TENOVER, F.; Miller, J. M. Pulsed-field gel electrophoresis as a replacement for bacteriophage typing of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.33, pp.551-555, 1995. BENEDETTE, M. F.; SILVA, D.; ROCHA, F.P.C. Mastite bovina. Revista Científica Eletrônica de Medicina Veterinária, Garça, v.7, nº11, pp.1-5, 2008. BENS, C. C.; VOSS, A.; KLAASSEN, C. H. Presence of a novel DNA methylation enzyme in methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates associated with pig farming leads to uninterpretable results in standard pulsed-field gel electrophoresis analysis. J. Clin. Microbiol.v.44, pp.1875–1876, 2006. BOTREL M. A.; HAENNI, M.; MORIGNAT, E.; SULPICE, P.; MADEC, J.Y.; CALAVAS, D. Distribution and antimicrobial resistance of clinical and subclinical mastitis pathogens in dairy cows in Rhone-Alpes, France. Foodborne Pathog. Dis. v.7, pp.479–487, 2010. BRADLEY A. J., LEACH K. A., BREEN J. E., GREEN L. E., GREEN M. J. Survey of the incidence and a etiology of mastitis on dairy farms in England and Wales.Vet. Rec. v.160, pp.253–258, 2007. BRAEM, G.; DE VLIEGHER, S.; SUPRÉ, K.; HAESEBROUCK, F.; LEROY, F.; DE VUYST L. (GTG)5-PCR fingerprinting for the classification and identification of 32 coagulase-negative Staphylococcus species from bovine milk and teat apices: a comparison of type strains and field isolates. Vet. Microbiol. v.147, pp.67–74, 2011. CABRAL, K.G.; LÄMMLER, C.; ZSCHÖCK, M.; LANGONI, H.; DE SÁ, M.E.P.; VICTÓRIA, C.; DA SILVA, A.V. Pheno and genotyping of Staphylococcus aureus, isolated from bovine milk samples from São Paulo State, Brazil. Can. J. Microbiol. 50: 901–909, 2004. CASSOL, D.M.S.; SANDOVAL, G.A.F.; PERICOLE, J.J.; GIL,P.C.N.; MARSON, F.A. Introdução Agentes da Mastite Diagnóstico e Tratamento. A Hora Veterinária, v.29,nº175,2010. CASSONE M. & GIORDANO A. Resistance genes travelingthe microbial internet: down the drain, up the food chain? Expert Rev. Anti Infect. Ther. v.7, pp.637–639, 2009. CHIOU, C. S.; WEI, H. L.; YANG, L. C. Comparison of pulsed-field gel electrophoresis and coagulase gene restriction profile analysis techniques in the molecular typing of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol.v.38, pp.2186– 2190, 2000. CHUNG, M.; DE LENCASTRE, H.; MATTHEWS, P.; TOMASZ, A.; ADAMSSON, I.; AIRES DE SOUSA, M.; CAMOU, T.; COCUZZA, C.; CORSO, A.; COUTO, I.; DOMINGUEZ, A.; GNIADKOWSKI, M.; GOERING, R.; GOMES, A.; KIKUCHI, K.; MARCHESE, A.; MATO, R.; MELTER, O.; OLIVEIRA, D.; PALACIO, R.; SA-LEAO, R.; SANTOS SANCHES, I.; SONG, J. H.; TASSIOS, P. T.; VILLARI P. Molecular typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by pulsed-field gel electrophoresis: comparison of results obtained in a multi laboratory effort using identical protocols and MRSA strains. Microb. Drug. Resist. v.6, pp.189–198, 2000. COELHO, S. M. S., Caracterização fenotípica e genotípica de fatores de virulência e resistência à oxacilina em Staphylococcusspp. coagulase-positivos isolados de mastite bovina. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Tese de Doutorado, 2008. COOPER, J. E. & FEIL, E. J. The phylogeny of Staphylococcus aureus – which genes make the best intra-species markers? Microbiology v.152, pp.1297–1305, 2006. COSTA, E. O.; R AIA, M.R.; WATANABE, E.T.; G ARINO, F.; COELHO,V. Influência do tratamento intramamário de casos de mastite de bovinos em lactação em relação à presença de resíduos de antibióticos no leite de quartos sadios. Napgama, v.3, nº4, pp.14-17, 2000. CRUZ, C.D. Programa Genes: Diversidade genética.Viçosa, Editora UFV. 278p, 2008. CUNY C.; STROMMENGER B.; WITTE W.; STANEK C. Groups of infections in horses with MRSA ST1, ST254, and ST398 in a veterinary hospital. Microb. Drug Resist.,v.14, pp.307–310, 2008. DE BRUIJN, F.J Use of repetitive (repetitive extragenic palindromic and enterobacterial repetitive intergenic consensus) sequences and the polymerase chain reaction to fingerprint the genomes of Rhizobium meliloti isolates and other soil bacteria. Appl. Environ. Microbiol. v.58, pp.2180-2187, 1992. 33 DE BRUIJN, F.J.; RADEMAKER, J.; SCHNEIDER, M.; ROSSBACH, U.; LOUWS, F.J. Rep-PCR genomic fingerprinting of plant-associated bacteria and computer-assisted phylogenetic analyses.In: Stacey G, Mullin B, Gresshoff P. (eds), Biology of plant-microbe interaction; Proceedings of the 8th International Congress of Molecular Plant- Microbe Interactions. USA, APS Press, pp.497-502, 1996. DE VUYST, L.; CAMU, N., DE WINTER, T.; VANDEMEULEBROECKE, K.; VAN DE PERRE, V.; VANCANNEYT, M.; DE VOS, P.; CLEENWERCK, I. Validation of the (GTG)5-rep- PCR fingerprinting technique for rapid classification and identification of acetic acid bacteria, with a focus on isolates from Ghanaian fermented cocoa beans. Int. J. Food Microbiol.v.125, pp.79–90, 2008. DEPLANO, A.; SCHUERMANS, A.; VAN ELDERE, J.; WITTE, W.; MEUGNIER, H.; ETIENNE, J.; GRUNDMANN, H.; JONAS, D.; NOORDHOEK G. T.; DIJKSTRA, J.; VAN BELKUM, A.; VAN LEEUWEN, W.; TASSIOS, P. T.; LEGAKIS, N. J.; VAN DER ZEE, A.; BERGMANS, A.; BLANC, D. S.; TENOVER, F. C.; COOKSON, B. C.; O’NEIL, G.; STRUELENS, M. J. AND THE EUROPEAN STUDY GROUP ON EPIDEMIOLOGICAL MARKERS OF THE ESCMID. Multicenter evaluation of epidemiological typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains by repetitive-element PCR analysis. J. Clin. Microbiol. v.38, pp.3527–3533, 2000. DIARIO DO VALE, Rio Leite Sul Reúne Pecuaristas no dia 13 em Resende. Reportagem online.http://diariodovale.uol.com.br/noticias/0,43091,Rio-Leite-Sul-reune-pecuaristas-dia-13-em-Resende.html#ixzz2HQDzvwDq acessada 29 de dezembro de 2011 às 19hrs. ENRIGHT, M. C. & SPRATT, B. G. Multilocus sequence typing. Trends Microbiol. v.7, pp.482-487, 1999. EUZÉBY, J. List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature,2007. FARBER, J. M. ; GENDEL, S. M.;TYLER, K. D.; BOERLIN, P.; LANDRY, W. L.; FRITSCHEL, S. J.; BARRET, T. J. Molecular typing and differentiation. In: DOWNES, F.P.; ITO, H. (Ed.). Compendium of methods for the microbiological examination of foods. 4th ed. Washington D. C.: American Public Health Association chap. 11,pp.127-156, 2001. FEIL, E. J.; COOPER, J. E.; GRUNDMANN, H.; ROBINSON, D. A.; ENRIGHT, M. C.; BERENDT, T. PEACOCK, S. J.; SMITH, J. M.; MURPHY, M.; SPRATT, B. G.; MOORE, C. E.; DAY, N. P. How clonal is Staphylococcus aureus? J. Bacteriol. v.185, pp.3307-3316, 2003. FERREIRA, L. M. Epidemiologia molecular aplicada ao monitoramento de estirpes de Staphylococcus aureus envolvidas nos casos de mastite bovina. Dissertação de Mestrado. Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias. UNESP Jaboticabal, 2008. FERREIRA, L. M.; NADER FILHO, A.; OLIVEIRA, E.; ZAFALON, L. F.; SOUZA, V. Variabilidades fenotípica e genotípica de estirpes de Staphylococcus aureus isoladas em casos de mastite subclínica bovina. Cienc.Rural, Santa Maria,v.36, nº4,2006. 34 FITZGERALD, J. R. & MUSSER, J. M. Evolutionary genomics of pathogenic bacteria.Trends Microbiol. v.9, pp.547-553, 2001. FITZGERALD, J. R.; STURDEVANT, D. E.; MACKIE, S. M.; GILL, S. R.; MUSSER, J. M. Evolutionary genomics of Staphylococcus aureus: insights into the origin of methicillin-resistant strains and the toxic shock syndrome epidemic. Proc. Natl. Acad. Sci. USA v.98, pp.8821-8826, 2001. GEVERS, D.; HUYS, G.; SWINGS, J. Applicability of rep-PCR fingerprinting for identification of Lactobacillus species. FEMS Microbiol.Lett., v.205, pp.31–36, 2001. GILLINGS, M. & HOLLEY, M. Repetitive element PCR fingerprinting (rep-PCR) using enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC) primers is not necessarily directed at ERIC elements. Letters Appl. Microbiol., Bedford, v.25, pp.17-21, 1997. GANDRA, E. A.;GANDRA,T.V.K.; MELLO, W.S.; GODOI, H.S. Técnicas moleculares aplicadas à microbiologia de alimentos. Acta .Sci. Technol., Maringá, v.30, nº1,pp.109-118, 2008. HAENNI, M.; GALOFARO, L.; PONSIN, C.; BES, M.; LAURENT, F.; MADEC, J.Y. Staphylococcal bovine mastitis in France: enterotoxins, resistance and the human Geraldine methicillin-resistant Staphylococcus aureus clone. J. Antimicrob. Chemother.,v.66, pp. 216–218, 2011. HALLIN, M.; DENIS, O.; DEPLANO, A.; DE MENDONCA, R.; DE RYCK, R.; ROTTIERS, S.; STRUELENS, M. J. Genetic relatedness between methicillin-susceptible and methicillin-resistant Staphylococcus aureus: results of a national survey. J. Antimicrob. Chemother.v.59, pp.465–472, 2007. HASMAN H., MOODLEY, A.; GUARDABASSI, L.; STEGGER, M.; SKOV, R. L.; AARESTRUP, F. M. Spa type distribution in Staphylococcus aureus originating from pigs, cattle and poultry. Vet. Microbiol.v.141, pp.326–331, 2010. HATA, E. ; KATSUDA, K.; KOBAYASHI, H.; UCHIDA, I.; TANAKA, K.; EGUCHI, M. Genetic variation among Staphylococcus aureus strains from bovine milk and their relevance to methicillin-resistant isolates from humans. J. Clin. Microbiol. v.48, pp.2130–2139, 2010. HOOKEY, J.V.; RICHARDSON, J.F.; COOKSON, B.D. Molecular typing of Staphylococcus aureus based in PCR restriction fragment length polymorphism and DNA sequence analysis of the coagulase gene. J ClinMicrobiol, Washington, v.36, nº4, pp.1083-1089, 1998. HUBER, H.; KOLLER,S.; GIEZENDANNER, N.; STEPHAN, R.; ZWEIFEL, C. Prevalence and characteristics of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in humans in contact with farm animals, in livestock, and in food of animal origin, Switzerland, 2009. Euro Surveill., v.15, pp.19542, 2010. 35 HULTON, C.S.J.; HIGGINS, C.F.; SHARP, P.M. ERIC sequences: a novel family of repetitive elements in the genomes of Escherichia coli, Salmonella typhimurium and other enterobacteria. Molecular Microbiology 5: 825-834, 1991. IKAWATY, R.; BROUWER, E.C.; JANSEN, M.D.; VAN DUIJKEREN, E.; MEVIUS, D.; VERHOEF, J.; FLUIT, A.C. Characterization of Dutch Staphylococcus aureus from bovine mastitis using a Multiple Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis. Vet. Microbiol. v.136, pp.277–284, 2009. ISHII, S. & SADOWSKY, M.J. Applications of the rep-PCR DNA fingerprinting technique to study microbial diversity, ecology and evolution. Environ. Microbiol.v.11, pp. 733–740, 2009. JOO, Y. S.; FOX, L. K.; DAVIS, W. C.; BOHACH, G. A.; PARK, Y. H. Staphylococcus aureus associated with mammary glands of cows: genotyping to distinguish different strains among herds.Vet. Microbiol. v.80, pp.131-138, 2001. JØRGENSEN, H. J.; MØRK, T.; CAUGANT, D. A.; KEARNS, A.;RØRVIK, L. M. Genetic variation among Staphylococcus aureus strains from Norwegian bulk milk. Appl. Environ. Microbiol. v.71, pp.8352-8361, 2005. JUHÁSZ-KASZANYITZKY, É.; JÁNOSI, S.; SOMOGYI, P.; DÁN, Á.; VAN DER GRAAF-VAN BLOOIS, L.; VAN DUIJKEREN, E.; WAGENAAR, J. A. MRSA Transmission between cows and humans. Emerg. Infect. Dis. v.13, pp.630-632, 2007. KAPUR, V.; SISCHO, W. M.; GREER, R. S.; WHITTAM, T. S.; MUSSER, J. M. Molecular population genetic analysis of Staphylococcus aureus recovered from cows. J. Clin. Microbiol. v.33, pp.376-380, 1995. KARAHAN M ; CETINKAYA B. Coagulase gene polymorphisms detected by PCR in Staphylococcus aureus isolated from subclinical bovine mastitis in Turkey. Vet J.,v.174, nº2, pp.428-431, 2007. KONEMAN, E.W.; ALLEN, S.D.; JANDA, W.M; SCHRECKENBERGER, P.C.; WINN, J.R. Diagn.Microbiol.6ªed. Rio de Janeiro: Editora MEDS, 2008. KOREˇNOVÁ, J.; LOPAˇSOVSKÁ, J.; KUCHTA, T. Biofilm forming bacterial contaminants in small and medium-sized ewes’ milk and meat processing enterprise in Slovakia. J. Food Nutr. Res. v.48, pp.115–120, 2009. KOREEN, L., RAMASWAMY S. V., GRAVISS E. A., NAIDICH S., MUSSER J. M.spa typing method for discriminating among Staphylococcus aureus isolates: implications for use of a single marker to detect genetic micro- and macrovariation. J. Clin. Microbiol., v.42, pp.792-9,2004. LANOOT, B.; VANCANNEYT, M.; DAWYNDT, P.; CNOCKAERT, M.; ZHANG, J.L.; HUANG, Y.; LIU, Z.H.; SWINGS, J. BOX-PCR fingerprinting as a powerful tool to reveal synonymous names in the genus Streptomyces. Emendeddescriptions are proposed for the species Streptomyces cinereorectus, S. fradiae, S. tricolor, S. 36 colombiensis, S. filamentosus, S. vinaceus and S. phaeopurpureus. Syst. Appl. Microbiol, v.27, pp.84–92, 2004. LIECKFELDT, E.; MEYER, W.; BORNER, T. Rapid identification and differentiation of yeast by DNA and PCR fingerprinting. J. Basic Microbiol., v.33, pp.413-426, 1993. LOEFFLER, A. & LLOYD, D. H. Companion animals: a reservoir for methicillin-resistant Staphylococcus aureus in the community? Epidemiol. Infect. v.138, pp.595–605, 2010. MALORNY, B.; HOORFAR, J.; BUNGE, C.; HELMUTH, R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard. Appl.Environ. Microbiol. v.69, pp.290–296, 2003. MARAFON, G. J. Industrialização da agricultura e formação do Complexo Agroindustrial no Brasil. Geo UERJ Revista do Departamento de Geografia, Rio de Janeiro, v.3,pp.7-21, 2004. MARQUES, V. F. Caracterização Fenogenotípica Dos Fatores De Virulência Em Staphylococcus spp. Isolados De Mastite Bovina. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Dissertação de Mestrado, 2012. MASLOW, J. & MULLIGAN, M. E. Epidemiologic Typing Systems. Infec.Control and Hosp. Epidem., v.17, nº9, pp.595-604, 1996. MCDOUGAL, L. K.; STEWARD, C. D.; KILLGORE, G. E.; CHAITRAM, J. M.; MCALLISTER, S. K., TENOVER, F. C. Pulsed-field gel electrophoresis typing of oxacillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from the United States: establishing a national database. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.5113–5120, 2003. MEACHAM, K.J.; ZHANG, L.; FOXMAN, B.; BAUER, R.J.; MARRS, C.F. Evaluation of genotyping large numbers of Escherichia coli isolates by enterobacterial repetitive intergenic consensus-PCR. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.5224–5226, 2003. MEINTANIS, C.; CHALKOU, K.I.; KORMAS, K.A.; LYMPEROPOULOU, D.S.; KATSIFAS, E.A.; HATZINIKOLAOU, D.G.; KARAGOUNI, A.D Application of rpoB sequence similarity analysis, REP-PCR and BOX-PCR for the differentiation of species within the genus Geobacillus. Lett. Appl. Microbiol. v.46, pp.395–401, 2008. MENDOÇA, E. L. C. Caracterização fenogenotípica da resistência antimicrobiana em Staphylococcus spp. isolados de mastites clínicas e subclínicas em unidades leiteiras de municípios do rio de janeiro como subsídio para implementação de medidas de controle. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Dissertação de Mestrado, 2012. MIDDLETON, J.; FOX, L.; GAY, J.; TYLER, J.; BESSER T. Use of pulsed-field gel electrophoresis for detecting differences in Staphylococcus aureus strain populations between dairy herds with different cattle importation practices.Epidemiol. Infect. v.129, pp.387- 395, 2002. 37 MONECKE, S.; COOMBS, G.; SHORE, A. C.; COLEMAN, D. C.; AKPAKA, P.; BORG, M.; CHOW, H.; JATZWAUK, L.; JONAS, D.; KADLEC, K.; KEARNS, A.; LAURENT, F.; O’BRIEN, F. G.; PEARSON, J.; RUPPELT, A.; SCHWARZ, S.; SCICLUNA, E.; SLICKERS, P.; TAN, H. L.; WEBER, S.; EHRICHT, R. A field guide to pandemic, epidemic and sporadic clones of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. PLoS ONE v.6, e17936., 2011. MONTESINOS, I.; SALIDO, E.; DELGADO, T.; CUERVO, M.; SIERRA, A. Epidemiologic genotyping of methicillin-resistant Staphylococcus aureus by pulsed field gel electrophoresis at a University Hospital and comparison with antibiotyping and protein A and coagulase gene polymorphisms. J. Clin. Microbiol. v.40,pp.2119-2125, 2002. MORET-STALDER, S.; FOURNIER, C.; MISEREZ, R.; ALBINI, S.; DOHERR, M.G.; REIST, M.; SCHAEREN, W.; KIRCHHOFER, M.; GRABER, H.U.; STEINER, A.; KAUFMANN, T. Prevalence study of Staphylococcus aureus in quarter milk samples of dairy cows in the Canton of Bern, Switzerland. Prev. Vet. Med. v.88, pp.72–76, 2009. MØRK, T., TOLLERSRUD, T.; KVITLE, B.; JØRGENSEN, H. J.; WAAGE, S. Comparison of Staphylococcus aureus genotypes recovered from cases of bovine, ovine, and caprine mastitis. J. Clin. Microbiol. v.43, pp.3979–3984, 2005. MURCHAN, S., KAUFFMANN, M. E.; DEPLANO, A. ; DE RYCK, R.; STRUELENS, M.; OLSSON-LILJEQUIST, B.; RAMSJÖ, U.; COOMBES, G.; COOKSON, B. Harmonization of pulsed field gel electrophoresis protocols for epidemiological typing of Staphylococcus aureus: a single approach developed by consensus in 10 European laboratories and its application for tracing the spread of related strains. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.1574-1585, 2003. OLIVE, D. M. & BEAN, P. Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms. J. Clin. Microbiol. v.37, pp.1661–1669, 1999. PANTOSTI, A. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Associated with Animals and Its Relevance to Human Health. Front Microbiol.,v.3, pp.127, 2012. PAPALEXANDRATOU, Z.; CLEENWERCK, I. DE VOS, P.; DE VUYST, L. (GTG)5-PCR reference framework for acetic acid bacteria. FEMS Microbiol. Lett., v.301,pp.44–49, 2009. PELES, F.; WAGNER, M.; VARGA, L.; HEIN, I.; RIECK, I. P.; GUTSER,K.; KERESZTÚRI, P.; KARDOS, G.; TURCSÁNYI, I.; BÉRI, B.; SZABÓ, A. Characterization of Staphylococcus aureus strains isolated from bovine milk in Hungary. Int. J. Food Microbiol.,v.118, pp.186-193, 1997. PRESTES D.S.; FILAPPI A. & CECIM M. Susceptibilidade à Mastite, fatores que a influenciam: uma revisão.Revista FZVA, Uruguaiana, v.9, nº1, pp.118-132, 2002. RABELLO, R. F.; MOREIRA, B. M.; LOPES, R. M. M.; TEIXEIRA, L. M.; RILEY, L. W.; CASTRO, A. C. D. Multilocus sequence typing of Staphylococcus aureus isolates recovered from cows with mastitis in Brazilian dairy herds. J. Med. Microbiol. v.56, pp.1505-1511, 2007. 38 RIBEIRO M.E.R., PETRINE L.A., AITA M.F., BALBINOTTI M., STUMPF JR W., GOMES J.F., SCHRAMM R.C., MARTINS P.R. & BARBOSA R.S. Relação entre mastite clínica, subclínica infecciosa e não infecciosa em unidades de produção leiteiras na região sul do Rio Grande do Sul. Rev. Bras. Agrociênc. v.9, nº3, pp.287-290, 2003. ROBINSON, D. A. & ENRIGHT, M. C. Multilocus sequence typing and the evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Clin. Microbiol. Infect., v.10, pp. 92–97, 2004. RODRÍGUEZ-LÁZARO, D.; LOMBARD, B.; SMITH, H.; RZEZUTKA, A., D’AGOSTINO, M.; HELMUTH, R. Trends in analytical methodology in food safety and quality: monitoring microorganisms and genetically modified organisms. Trends in Food Science & Technology, v.18, nº6, pp.306-319, 2007. ROESCH M., DOHERR M. G., SCHAREN W., SCHALLIBAUM M., BLUM J. W. Subclinical mastitis in dairy cows in Swiss organic and conventional production systems. J. Dairy Res. v.74, pp.86–92, 2007. SCHWARTZ, D. C.; CANTOR, C. R. Separation of yeast chromosome-sized DNAs by pulsed field gradient gel electrophoresis. Cell, v.37, nº1, pp.67-75, 1984. SILVA, N. Doença da glândula mamária: mamite/mastite. In: MARQUES, D. C. Criação de bovinos. 7 ed. Belo Horizonte: Consultoria Veterinária e Publicações, pp.435 - 451, 2003. SMITH, E. M.;GREEN, L. E.; MEDLEY, G. F.; BIRD, H. E.; DOWSON, C. G. Multilocus sequence typing of Staphylococcus aureus isolated from high-somatic-cell-count cows and the environment of an organic dairy farm in the United Kingdom. J. Clin. Microbiol. v.43, pp.4731-4736, 2005. SMYTH D. S.; FEIL, E. J.; MEANEY ,W. J.; HARTIGAN, P. J.; TOLLERSRUD, T.; FITZGERALD, J.R.; ENRIGHT, M. C.; SMYTH, C. J. Molecular genetic typing reveals further insights into the diversity of animal-associated Staphylococcus aureus. J. Med. Microbiol. v.58, pp.1343–1353, 2009 SOMMERHÄUSER, J.; KLOPPERT, B.; WOLTER, W.; ZSCHÖCK, M.; SOBIRAJ, A.; FAILING, K.The epidemiology of Staphylococcus aureus infections from subclinical mastitis in dairy cows during a control programme. Vet. Microbiol. v.96, pp.91-102, 2003. SON, R.; MICKY, V.; KASING, A.; RAHA, A.R.; PATRICK, G.B.; GULAM, R. Molecular characterization of Vibrio cholerae O1 outbreak strains in Miri, Sarawak (Malaysia). Acta Tropica v.83,pp.169-176, 2002. SOUSA, M.R.P., RISTOW, A.M., NOGUEIRA, E.B., FILHO, R.A.T. CORTEZ, M.A.S. Caracterização de Pequenas Unidades Produtoras de Leite na região Centro e Noroeste do estado do Rio de Janeiro. Ciência Veterinária v.18, nº2/3, pp.79-89,2011. SOUZA, V.; NADER FILHO, A.; MELO, P. C.; FERRAUDO, G. M.; FERRAUDO, A. S.; CONDE, S. O.; FOGAÇA JUNIOR, F. A. Molecular epidemiology of Staphylococcus 39 aureus isolates at different sites in the milk producing dairy farms.Brazilian Journal of Microbiology, 43(4): 1646-1650, 2012. SPIGAGLIA, P. & MASTRANTONIO, P. Evaluation of repetitive element sequence-based PCR as a molecular typing method for Clostridium difficile. J. Clin. Microbiol. v.41, pp.2454–2457, 2003. STRAUB, J.A.; HERTEL, C.; HAMMES, W.P. A 23S RNAr-targeted polymerase chain reaction-based system for detection of Staphylococcus aureus in meat started cultures and dairy products. J. Food Prot., v.62, pp.1150-1156, 1999. SVEC, P.; VANCANNEYT, M.; SEMAN, M.; SNAUWAERT, C.; LEFEBVRE, K.; SEDLÁˇCEK, I.; SWINGS, J. Evaluation of (GTG)5-PCR for identification of Enterococcus spp. FEMS Microbiol. Lett.v.247, pp.59–63, 2005. TENOVER, F. C.; ARBEIT, G.; ARCHER, J.; BIDDLE, S.; BYRNE, R.; GOERING, G.; HANCOCK, G. A.; HÉBERT, B.; HILL, R. Comparison of traditional and molecular methods of typing isolates of Staphylococcus aureus. J. Clin. Microbiol. v.32, pp.407–415,1994. TOZZETTI, D. S.; BATAIER, M. N.; ALMEIDA, L. R. Prevenção, controle e tratamento das mastites bovinas: revisão de literatura. Revista Científica Eletrônica de Medicina Veterinária, Garça, v.7.nº10, pp.1-7, 2008. TYLER, K. D.; WANG. G.; TYLER, S. D.; JOHNSON, W. M. Factors affecting reliability and reproducibility of amplification- based DNA fingerprint of representative bacterial pathogens. Journal of Clinical Microbiology, v.35,nº2,pp.199-214, 1997. VAN BELKUM, A.; BAX, R.; PEERBOOMS, P.; GOESSENS, W. H. F.; VAN LEEUWEN, N.; QUINT, W. G. V. Comparison of phage typing and DNA fingerprinting by polymerase chain reaction for discrimination of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains. J. Clin. Microbiol.v.31,pp.798±803, 1992. VAN BELKUM, A.; VAN LEEUWEN, W.; KAUFMANN, M. E.; COOKSON, B.; FOREY, F.; ETIENNE, J.; GOERING, R.; TENOVER, F.; STEWARD, C.; O’BRIEN, F. Assessment of resolution and intercenter reproducibility of results of genotyping Staphylococcus aureus by pulsed-field gel electrophoresis of SmaI macrorestriction fragments: a multicenter study. J. Clin. Microbiol. v.36, pp.1653–1659, 1998. VAN DER ZEE, A; VERBAKEL, H.; VAN ZON, J.C. Molecular genotyping of Staphylococcus aureus strains: Comparison of repetitive element sequence based PCR with various typing methods and isolation of a novel epidemicity marker. J. Clin. Microbiol. v.37, pp.342-349, 1999. VAN LEEUWEN, W.; MELLES, D. C.; ALAIDAN, A.; AL-AHDAL, M.; BOELENS, H. A. M.; SNIJDERS, S. V.; WERTHEIM, H.; VAN DUIJKEREN, E.; PEETERS, J. K.; VAN DER SPEK, P. J.; GORKINK, R.; SIMONS, G.; VERBRUGH, H. A.; VAN BELKUM, A. Host- and tissue-specific pathogenic traits of Staphylococcus aureus. J. Bacteriol. V.187, pp.4584-459, 2005. 40 VANDERHAEGHEN, W.; HERMANS, K.; HAESEBROUCK, F.; BUTAYE, P. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in food production animals. Epidemiol. Infect. v.138, pp.606–625, 2010. VERSALOVIC, J. & LUPSKI, J.R. Interspersed repetitive sequences in bacterial genomes. In: De Bruijn, F.J., Lupski, J.R., Weinstock, G.M. (Eds.), Bacterial Genomes: Physical Structure and Analysis, 2nd ed., Kluwer Academic Publishers, Norwell, MA, pp.38–48, 1999. VERSALOVIC, J.; SCHNEIDER, M.; DE BRUIJN, F.J.; LUPSKI, J.R. Genomic fingerprinting of bacteria using repetitive sequence-based polymerase chain reaction. Methods Mol. Cell.Biol. v.5, pp. 25–40, 1994. VERSALOVIC, J.; KOUETH, T.; LUPSKI, J.R. Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and application to fingerprinting of bacterial genomes. Nucleic Acid Research v.19, pp.6823-6831, 1991. WHIST A.C., OSTERAS O. & SOLVEROD L. Clinical mastitis in Norwegian herds after a combined selective dry-cow therapy and teat-dipping trial. Dairy Sci. v.89, pp.4649-4659, 2006. WIESER, M., BUSSE, H.J. Rapid identification of Staphylococcus epidermidis. Int. J. Syst. Evol. Microbiol.v.50, pp.1087–1093, 2000. WILSON, L.A. & SHARP, P.M. Enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC) sequences in Escherichia coli: evolution and implications for ERIC-PCR. Mol. Biol. Evol.v.23, pp.1156–1168, 2006. WOODS C. R.; VERSALOVIC, J., KOEUTH, T. & LUPSKI, J. R. Analysis of relationships among isolates of Citrobacterdiversus by using DNA fingerprints generated by repetitive sequence based primers in the polymerase chain reaction. J. Clin. Microbiol.v.30,pp.2921±2929, 1992. ZADOKS, R. N.; VAN LEEUWEN, W. B.; KREFT, D.; FOX, L. K.; BARKEMA, H. W.; SCHUKKEN, Y. H.; VAN BELKUM, A. Comparison of Staphylococcus aureus isolates from bovine and human skin, milking-equipment, and bovine milk by phage typing, pulsed-field gel electrophoresis, and binary typing. J. Clin. Microbiol. v.40, pp.3894-3902, 2002. ZADOKS, R.; VAN LEEUWEN, W.; BARKEMA, H.; SAMPIMON, O.; VERBRUGH, H.; SCHUKKEN, Y. H.; VAN BELKUM, A. Application of pulsed-field gel electrophoresis and binary typing as tools in veterinary clinical microbiology and molecular epidemiologic analysis of bovine and human Staphylococcus aureus isolates. J. Clin. Microbiol. v.38, pp.1931-1939, 2000. ZAFALON, L. F.; LANGONI, H.; BENVENUTTO, F.; CASTELANI, L.; BROCCOLO, C. R. Aspectos epidemiológicos da mastite bovina causada por Staphylococcus aureus.Veterinária e Zootecnia, v.15, nº1, 56-65, 2008. 41 ZAFALON, L.F.; NADER FILHO, A.; OLIVEIRA, J.V. Subclinical mastitis caused by Staphylococcus aureus: cost benefit analysis of antibiotic therapy in lactating cows. Arq.Bras. Med. Vet. Zootec., v.59, pp.577-585, 2007. ZHANG, K.; SPARLING, J.; CHOW, B.L.; ELSAYED, S.; HUSSAIN, Z.; CHURCH, D.L.; GREGSON, D.B.; LOUIE, T.; CONLY, J.M. New Quadriplex PCR Assay for Detection of Methicillin and Mupirocin Resistance and Simultaneous Discrimination of Staphylococcus aureus from Coagulase-Negative Staphylococci. Journal of clinical microbiology, v.42,nº11,pp.4947–4955, 2004. ZSCHÖCK, M.; RISSE, K.; SOMMERHÄUSER, J. Occurrence and clonal relatedness of sec/tst-gene positive Staphylococcus aureus isolates of quartermilk samples of cows suffering from mastitis.Lett. Appl. Microbiol. v.38, pp.493-498, 2004.
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.none.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.publisher.program.fl_str_mv Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias
dc.publisher.initials.fl_str_mv UFRRJ
dc.publisher.country.fl_str_mv Brasil
dc.publisher.department.fl_str_mv Instituto de Veterinária
publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
instname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron:UFRRJ
instname_str Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron_str UFRRJ
institution UFRRJ
reponame_str Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
collection Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
bitstream.url.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/1/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.jpg
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/2/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf.txt
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/3/2013%20-%20Bianca%20da%20Silva%20Soares.pdf
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11987/4/license.txt
bitstream.checksum.fl_str_mv cc73c4c239a4c332d642ba1e7c7a9fb2
59b8d8a0edfa3c51a5e8e801b472e28e
f4b16ad54dce12d47503fa9161391eff
7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
repository.mail.fl_str_mv bibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.br
_version_ 1810107837720821760