Desenvolvimento e Validação de metodologias moleculares para a detecção e quantificação de formas viáveis de Trypanosoma cruzi

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Autor(a) principal: Araujo, Paula Finamore
Data de Publicação: 2021
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
Texto Completo: https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/55383
Resumo: O Trypanosoma cruzi possui um ciclo de vida complexo, se desenvolvendo entre hospedeiros vertebrados e insetos vetores. Além disso, a infecção por T. cruzi por via oral tem se tornado um dos principais mecanismos de transmissão do ponto de vista da saúde pública, principalmente no Brasil. O açaí (Euterpe oleracea e Euterpe precatoria) é atualmente uma das frutas amazônicas mais comercializadas no mercado brasileiro e internacional. Métodos moleculares têm sido desenvolvidos para detecção e quantificação rápida do DNA de T. cruzi, apresentando vantagens em relação à microscopia óptica, considerada o método clássico de diagnóstico em diversas amostras biológicas. No entanto, uma questão recorrente em relação à detecção/quantificação do DNA do T. cruzi está relacionada ao fato de que a amplificação do DNA, em si, não diferencia parasitas viáveis ou mortos. Neste trabalho, padronizamos, a partir do sobrenadante da polpa do açaí estabilizado em um tampão de lise à base de guanidina-EDTA, uma metodologia molecular simples e de alto desempenho, desde a extração de DNA de T. cruzi por colunas de sílica, até a quantificação por qPCR multiplex, com alvo no satDNA de T. cruzi e em um controle interno exógeno. Validamos a metodologia, usando cepas de referência de todas as DTUs de T. cruzi e amostras de polpas de açaí comercializadas no município de Coari/AM, que possui histórico prévio de surto oral da doença de Chagas. A qPCR detectou até 0,01 equivalentes de parasita/mL em açaí e, das 45 amostras comerciais analisadas, 9 (20%) foram positivas para T. cruzi. Visando avaliar o RNA como um marcador de viabilidade de T. cruzi em diferentes tipos de amostras, desenvolvemos uma qPCR com transcrição reversa (RT-qPCR) para quantificar a viabilidade de T. cruzi, em comparação à qPCR com alvo em DNA. Em amostras de intestino do vetor triatomíneo Rhodnius prolixus, a RT-qPCR apresentou linearidades variando de 107 a 102 equivalentes de parasito e de 3 a 0,003 equivalentes de intestino, com eficiências de 100,3% e 102,8% para ambos os alvos, respectivamente. Em relação a R. prolixus infectado experimentalmente observamos uma diminuição da carga parasitária por meio da detecção de mRNA, que não é acompanhada pela quantificação por DNA, principalmente no 15º dia pós-alimentação. Ao avaliar diferentes porções do trato digestivo, por RT-qPCR, detectamos uma redução significativa da carga parasitária no intestino médio anterior de R. prolixus no dia 29 pós-alimentação. Contrariamente, observamos um aumento significativo da carga parasitária no intestino posterior. Além disso, comparando RT-qPCR e qPCR em ensaios de infecção in vitro de carbiomioblastos de rato (linhagem H9C2), confirmamos que o RNA é rapidamente degradado após o tratamento das células infectadas com benznidazol, não sendo mais detectado no dia 1 pós-tratamento. Paralelamente, a detecção de DNA do parasita não apresentou diminuição significativa até 4 dias pós-tratamento (dia 5 pós infecção). No geral, o RNA demonstrou ser um potencial marcador molecular de viabilidade de T. cruzi, e sua avaliação poderá contribuir para o entendimento da dinâmica da infecção, para explorar novas possibilidades de drogas tripanocidas, e em investigações epidemiológicas
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Métodos moleculares têm sido desenvolvidos para detecção e quantificação rápida do DNA de T. cruzi, apresentando vantagens em relação à microscopia óptica, considerada o método clássico de diagnóstico em diversas amostras biológicas. No entanto, uma questão recorrente em relação à detecção/quantificação do DNA do T. cruzi está relacionada ao fato de que a amplificação do DNA, em si, não diferencia parasitas viáveis ou mortos. Neste trabalho, padronizamos, a partir do sobrenadante da polpa do açaí estabilizado em um tampão de lise à base de guanidina-EDTA, uma metodologia molecular simples e de alto desempenho, desde a extração de DNA de T. cruzi por colunas de sílica, até a quantificação por qPCR multiplex, com alvo no satDNA de T. cruzi e em um controle interno exógeno. Validamos a metodologia, usando cepas de referência de todas as DTUs de T. cruzi e amostras de polpas de açaí comercializadas no município de Coari/AM, que possui histórico prévio de surto oral da doença de Chagas. A qPCR detectou até 0,01 equivalentes de parasita/mL em açaí e, das 45 amostras comerciais analisadas, 9 (20%) foram positivas para T. cruzi. Visando avaliar o RNA como um marcador de viabilidade de T. cruzi em diferentes tipos de amostras, desenvolvemos uma qPCR com transcrição reversa (RT-qPCR) para quantificar a viabilidade de T. cruzi, em comparação à qPCR com alvo em DNA. Em amostras de intestino do vetor triatomíneo Rhodnius prolixus, a RT-qPCR apresentou linearidades variando de 107 a 102 equivalentes de parasito e de 3 a 0,003 equivalentes de intestino, com eficiências de 100,3% e 102,8% para ambos os alvos, respectivamente. Em relação a R. prolixus infectado experimentalmente observamos uma diminuição da carga parasitária por meio da detecção de mRNA, que não é acompanhada pela quantificação por DNA, principalmente no 15º dia pós-alimentação. Ao avaliar diferentes porções do trato digestivo, por RT-qPCR, detectamos uma redução significativa da carga parasitária no intestino médio anterior de R. prolixus no dia 29 pós-alimentação. Contrariamente, observamos um aumento significativo da carga parasitária no intestino posterior. Além disso, comparando RT-qPCR e qPCR em ensaios de infecção in vitro de carbiomioblastos de rato (linhagem H9C2), confirmamos que o RNA é rapidamente degradado após o tratamento das células infectadas com benznidazol, não sendo mais detectado no dia 1 pós-tratamento. Paralelamente, a detecção de DNA do parasita não apresentou diminuição significativa até 4 dias pós-tratamento (dia 5 pós infecção). No geral, o RNA demonstrou ser um potencial marcador molecular de viabilidade de T. cruzi, e sua avaliação poderá contribuir para o entendimento da dinâmica da infecção, para explorar novas possibilidades de drogas tripanocidas, e em investigações epidemiológicasTrypanosoma cruzi has a complex life cycle, as it develops between vertebrate hosts, and insect vectors. Besides that, orally acquired T. cruzi infection has become one of the most relevant transmission mechanisms from public health perspective, especially in Brazil. Açai (Euterpe oleracea and Euterpe precatoria) is currently one of the most commercialized Amazonian fruits in the Brazilian and international markets. Molecular methods have been developed for rapid detection and quantification of T. cruzi DNA, presenting various advantages over optical microscopy, considered the classical method of diagnosis in several biological samples. Nevertheless, a recurring question concerning T. cruzi DNA detection/quantification is related to the fact that DNA amplification, by itself, does not differentiate between viable or dead parasites. Herein, a simple and high-performance molecular methodology since DNA extraction based on silica-membrane spin columns, until quantification of T. cruzi DNA using a multiplex qPCR assay, targeting T. cruzi satDNA and an Exogenous Internal Positive Control, was standardized from the supernatant of açai berry pulp stabilized in a guanidine-EDTA lysis buffer. We validated the methodology, using reference strains from all T. cruzi DTUs and commercial samples of açai pulp from Coari/AM, a municipality with a previous history of oral Chagas Disease outbreak. The qPCR assay could detect up to 0.01 parasite equivalents/mL in açai, also of the 45 commercial samples analyzed, 9 (20%) showed positivity for T. cruzi. In order to evaluate RNA as a marker of T. cruzi viability in different samples, we developed a qPCR with reverse Transcription (RT qPCR) to quantify T. cruzi viability while comparing with the qPCR, targeting T. cruzi DNA. Analyzing the digestive tract of Rhodnius prolixus, the RT-qPCR presented linearities ranging from 107 to 102 parasites equivalents and 3 to 0.003 intestine unit equivalents, and efficiencies of 100.3% and 102.8% for both targets, respectively. Regarding R. prolixus experimentally infected, we observed a decrease in parasite load through mRNA detection, which is not followed by DNA quantification, especially on day 15 after feeding. Moreover, RT-qPCR could detect a statistically significant reduction of the parasite amount in R. prolixus anterior midgut on day 29 after feeding when assessing different portions of the digestive tract. Oppositely, we could observe a statistically significant increase of the parasite load in the hindgut on the same day. Moreover, comparing both RT-qPCR and qPCR in vitro infection assays with rat cardiomyoblasts (strain H9C2), we confirmed that RNA is shortly degraded after Benznidalzole treatment, no longer being detected at day 1 post-treatment. At the same time, parasite DNA detection presented no significant decrease up to 4 days after treatment (day 5 after infection). In general, RNA proved to be a potential molecular marker of T. cruzi viability, and its evaluation may contribute to a better understanding of the infection dynamics in vertebrate and invertebrate hosts, exploring new possibilities for trypanocidal drugs and in epidemiological investigations of Chagas diseaseFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porTrypanosoma cruziDoença de Chagas oralViabilidadeqPCRRT-qPCRTrypanosoma cruziChagas DiseaseqPCRRT-qPCRDoença de ChagasTrypanosoma CruziReação em Cadeia da Polimerase em Tempo RealReação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase ReversaDesenvolvimento e Validação de metodologias moleculares para a detecção e quantificação de formas viáveis de Trypanosoma cruziinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesis2021Instituto Oswaldo CruzFundação Oswaldo CruzRio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Biologia Parasitáriainfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZORIGINALpaula_araujo_ioc_dout_2021.pdf.pdfpaula_araujo_ioc_dout_2021.pdf.pdfapplication/pdf8632655https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/55383/2/paula_araujo_ioc_dout_2021.pdf.pdfd0cfb7674413ef69bc425679a4417a55MD52LICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/55383/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51icict/553832022-10-26 17:55:41.701oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352022-10-26T20:55:41Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false
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