Identificação da microbiota bacteriana e análise proteômica de trato digestivo de triatomíneos aspectos da infecção por tripanosomatídeos

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Rocha, Marcia Ximena Gumiel
Data de Publicação: 2016
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
Texto Completo: https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/22938
Resumo: A doença de Chagas continua sendo um problema importante de saúde nos países em vias de desenvolvimento do Continente Americano. Trypanosoma cruzi, é o agente causal da doença podendo ser naturalmente transmitido aos humanos através das fezes de insetos da família Triatominae. Dentre as principais espécies destacam-se o Rhodnius prolixus, Panstrongylus megistus e Triatoma infestans, sendo o primeiro também o vetor do Trypanosoma rangeli. O parasito ao ser ingerido pelo inseto sofre multiplicação e metaciclogênese, interagindo, portanto, com as diferentes bactérias da microbiota intestinal do inseto nos diferentes compartimentos do trato digestivo. Uma vez que esta interação pode ter um papel importante na epidemiologia da doença de Chagas através da competição com T. cruzi, é necessário caracterizar a microbiota bacteriana destes insetos. Neste contexto, a presente tese teve como objetivo caracterizar e comparar as comunidades bacterianas que compõem a microbiota do trato digestivo entre insetos coletados no peri-domicilio na localidade de Russas, Ceará, entre insetos procedentes de colônias de laboratório mantidos em diferentes tempos e entre R. prolixus infectados artificialmente com T. rangeli. Para isso, foram utilizadas técnicas independentes de cultivo baseadas na amplificação do gene que codifica para o 16S rRNA. O DNA metagenômico permitiu acesar a informação do gene da Citocromo Oxidase I para caracterizar a taxonomia dos insetos procedentes do peri-domicilio e também para identificar a presença de T. cruzi (TcI e TcII) através do gene do mini-exon. Os resultados indicaram que a microbiota bacteriana destes insetos coletados no campo estava constituída principalmete de Proteobacteria e Actinobacteria e em menor proporção por Firmicutes e Bacterioidetes, independente da infecção por T. cruzi. O gênero Serratia (Filo Proteobacteria família Enterobacteriaceae) foi encontrado em todas as amostras analisadas. A composição da microbiota bacteriana em insetos mantidos em colônias de laboratório em diferentes tempos mostrou que bactérias do gênero Serratia sp. e actinobacterias diminuem nos insetos que permanecem por um tempo maior a 3 meses e bactérias do gênero Arsenophonus aumentam nos insetos que permanecem por um tempo de 3 a 5 anos. R. prolixus infectado com T. rangeli mostrou um aumento de membros da família Burkholderiaceae e diminuição das Enterococcaceae. Os resultados indicam que a microbiota bacteriana identificada nos triatomíneos de campo tem maior diversidade em relação aos insetos mantidos em Laboratório, onde predominam as bactérias intracelulares. A porcentagem de infecção encontrada nos triatomíneos coletados no peri-domicilio foi de 80% para T. pseudomaculata e 90 % para T. brasiliensis O trato digestivo dos insetos vetores nos quais T. cruzi interage, constitue um ambiente dinâmico que poderia afetar o desenvolvimento do parasito. Assim, outro objetivo da tese foi de identificar as proteínas que caracterizam o trato digestivo de ninfas de quinto estádio de P. megistus, T. infestans e R. prolixus e Diptelogaster maxima procedentes de colônias de laboratório. Para isso foi utilizada a cromatografía liquida associada à espectrometria de massas MS/MS. A análise proteômica do trato digestivo dos triatomíneos revelou poucas proteínas em comum entre as quatro espécies, e muitas proteínas únicas para cada espécie, dentre as quais se encontravam proteínas de diversos componentes celulares e proteínas envolvidas nas diferentes atividades metabólicas, de digestão do sangue, estresse e detoxificação. Em conjunto os resultados desta tese comtribuem com o conhecimento da microbiota bacteriana em triatomíneos e com informação proteômica de espécies de importância epidemiológica na doença de Chagas.
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O parasito ao ser ingerido pelo inseto sofre multiplicação e metaciclogênese, interagindo, portanto, com as diferentes bactérias da microbiota intestinal do inseto nos diferentes compartimentos do trato digestivo. Uma vez que esta interação pode ter um papel importante na epidemiologia da doença de Chagas através da competição com T. cruzi, é necessário caracterizar a microbiota bacteriana destes insetos. Neste contexto, a presente tese teve como objetivo caracterizar e comparar as comunidades bacterianas que compõem a microbiota do trato digestivo entre insetos coletados no peri-domicilio na localidade de Russas, Ceará, entre insetos procedentes de colônias de laboratório mantidos em diferentes tempos e entre R. prolixus infectados artificialmente com T. rangeli. Para isso, foram utilizadas técnicas independentes de cultivo baseadas na amplificação do gene que codifica para o 16S rRNA. 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Within main species Rhodnius prolixus, Panstrongylus megistus and Triatoma infestans stand out as main vectors of this disease, being the former an important vector of Trypanosoma rangeli. Once T. cruzi is ingested by the insect, parasites multiply and begin the metaciclogenesis interacting with bacterial communities of insect intestinal microbiota in the different compartiments of digestive tract. Since these interactions may play a role in the epidemiology of Chagas disease by competing with T. cruzi, it is necessary to characterize the bacterial microbiota of these insects. One of the main goals in this thesis was to characterize and compare the bacterial communities comprising gut microbiota between insects collected from peridomicile location in Russas, a city of the Ceará state, insects reared in laboratory conditions at different times and R. prolixus infected with T. rangeli. For this, independent culture methods based on the amplification of the 16S rRNA coding gene were applied. Metagenomic DNA allowed us to characterize peridomicile insects through Cytochrome oxidase I gene and to identify the presence of T. cruzi through miniexon gene (TcI and TcII) DGGE results showed that bacterial microbiota in these insects was mainly comprised by Proteobacteria and Actinobacteria and in less proportion by Firmicutes and Bacterioidetes, independently from T.cruzi infection. Serratia (Proteobacteria: Enterococcaceae) was found in almost all samples analyzed. Bacterial microbiota in insects reared in laboratory conditions was composed mainly of Serratia sp., Arsenophonus and Actinobacteria varying in quantity along time of rearing. On the other hand, in T. rangeli artificially infected R. prolixus microbiota it was observed a high proportion of bacterial members belonging to the Burkholderiaceae family and less proportion of Enterococcaceae. These results show that bacterial microbiota identified in peridomicile triatomines have more diversity in relation to insects reared in laboratory, where intracellular bacteria predominates. The percentage of infection found in triatomines collected in peridomicile was 80% and 90 % for T. pseudomaculata and T. brasiliensis respectively. The digestive tract of the insect vectors in which T. cruzi interacts constitutes a dynamic environment that could affect the development of the parasite. In this sense, another goal of the thesis was to identify what proteins characterize the digestive tract of fifth instar of Diptelogaster maxima, P. megistus, T. infestans and R. prolixus insects reared in laboratory conditions. For this purpose it was applied a Liquid Chromatography \2013 Mass Spectrometry MS/MS-coupled proteomic approach that revealed few common proteins shared by the four species studied and many unique proteins for each one that comprised diverse cellular components and were involved in different metabolisms such as carbohydrates, lipids, energetic, blood digestion, stress and detoxification. Together the results of this thesis contribute to the knowledge of the bacterial microbiota and proteomic information in triatomine species of epidemiological importance of Chagas disease.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, RJ, BrasilporTriatominaeMicrobiotaTrypanosomatinaProteômicaDoença de chagasMicrobioma gastrointestinalEletroforese em gel de gradiente desnaturanteTrypanosomatinaProteômicaDoença de chagasIdentificação da microbiota bacteriana e análise proteômica de trato digestivo de triatomíneos aspectos da infecção por tripanosomatídeosinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesis2016Pós-Graduação em Biologia ParasitáriaFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo CruzRio de Janeiro/RJPrograma de Pós-Graduação em Biologia Parasitáriainfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/22938/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51ORIGINALmarcia_rocha_ioc_doc_2016.pdfmarcia_rocha_ioc_doc_2016.pdfapplication/pdf2080034https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/22938/2/marcia_rocha_ioc_doc_2016.pdfac2e045047e08b53d97cfa8b4e6f4ab0MD52TEXTmarcia_rocha_ioc_doc_2016.pdf.txtmarcia_rocha_ioc_doc_2016.pdf.txtExtracted texttext/plain285574https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/22938/3/marcia_rocha_ioc_doc_2016.pdf.txtc59106941e8848705c36ebc126701605MD53icict/229382019-09-09 16:38:45.024oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352019-09-09T19:38:45Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false
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