Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika
Autor(a) principal: | |
---|---|
Data de Publicação: | 2019 |
Tipo de documento: | Dissertação |
Idioma: | por |
Título da fonte: | Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
Texto Completo: | https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/36125 |
Resumo: | A rápida disseminação do vírus Zika (ZIKV) representa um problema de saúde pública global, especialmente em países onde circulam várias espécies de mosquitos vetores e apresentam condições favoráveis para a transmissão de vírus, como o Brasil. Nessas áreas, a melhoria no controle do mosquito precisa ser uma prioridade, mas a vigilância do vírus nos mosquitos ocorre de maneira ineficiente. Atualmente, a reação de transcriptase reversa seguida da reação em cadeia da polimerase quantitativa (qRT-PCR) é o método padrão-ouro para o diagnóstico molecular do ZIKV em amostras humanas e amostras de mosquitos. Porém, essa técnica apresenta elevado custo e inúmeras limitações para o diagnóstico Pointof- care (POC), o que dificulta sua aplicação e utilização para um grande número de amostras e em regiões com infraestrutura laboratorial limitada. Diante desse cenário, permanece a necessidade do desenvolvimento de novas plataformas que sejam capazes de detectar o ZIKV de forma simples e prática no campo. Neste trabalho, foi desenvolvida e validada uma plataforma de transcriptase reversa seguida de amplificação isotérmica mediada por alça (RTLAMP) para a detecção de ZIKV em amostras de mosquitos. Quanto aos resultados, o ensaio RT-LAMP foi altamente específico para detecção do ZIKV e se mostrou até 10.000 vezes mais sensível que a qRT-PCR para a detecção do ZIKV em amostras de mosquito. A validação do ensaio foi realizada com 60 amostras de mosquitos Aedes aegypti e Culex quinquefasciatus, incluindo mosquitos artificialmente e naturalmente infectados. O RTLAMP apresentou sensibilidade de 100%, especificidade de 91,18% e acurácia geral de 95,24%. Quanto ao custo de cada reação (teste) do RT-LAMP, o valor foi um real (R$ 1,00), 40 vezes mais barato do que o qRT-PCR. A disponibilização dessas ferramentas tem grande potencial de contribuir para prevenir a propagação da doença na população e estabelecer melhores estratégias de controle para combater esse patógeno devastador. |
id |
CRUZ_a6d2d19c19a66038761461067f31323d |
---|---|
oai_identifier_str |
oai:www.arca.fiocruz.br:icict/36125 |
network_acronym_str |
CRUZ |
network_name_str |
Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
repository_id_str |
2135 |
spelling |
Silva, Severino Jefferson Ribeiro daPardee, KeithPaiva, Marcelo Henrique SantosPena, Lindomar JoséVasconcelos, Luydson Richardson SilvaFreitas, Antônio Carlos dePena, Lindomar José2019-10-03T13:43:53Z2019-10-03T13:43:53Z2019SILVA, Severino Jefferson Ribeiro da. Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika. 2019. 119f. Dissertação (Mestrado Acadêmico em Biociências e Biotecnologia em Saúde) - Instituto Aggeu Magalhães, Fundação Oswaldo Cruz, Recife, 2019.https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/36125A rápida disseminação do vírus Zika (ZIKV) representa um problema de saúde pública global, especialmente em países onde circulam várias espécies de mosquitos vetores e apresentam condições favoráveis para a transmissão de vírus, como o Brasil. Nessas áreas, a melhoria no controle do mosquito precisa ser uma prioridade, mas a vigilância do vírus nos mosquitos ocorre de maneira ineficiente. Atualmente, a reação de transcriptase reversa seguida da reação em cadeia da polimerase quantitativa (qRT-PCR) é o método padrão-ouro para o diagnóstico molecular do ZIKV em amostras humanas e amostras de mosquitos. Porém, essa técnica apresenta elevado custo e inúmeras limitações para o diagnóstico Pointof- care (POC), o que dificulta sua aplicação e utilização para um grande número de amostras e em regiões com infraestrutura laboratorial limitada. Diante desse cenário, permanece a necessidade do desenvolvimento de novas plataformas que sejam capazes de detectar o ZIKV de forma simples e prática no campo. Neste trabalho, foi desenvolvida e validada uma plataforma de transcriptase reversa seguida de amplificação isotérmica mediada por alça (RTLAMP) para a detecção de ZIKV em amostras de mosquitos. Quanto aos resultados, o ensaio RT-LAMP foi altamente específico para detecção do ZIKV e se mostrou até 10.000 vezes mais sensível que a qRT-PCR para a detecção do ZIKV em amostras de mosquito. A validação do ensaio foi realizada com 60 amostras de mosquitos Aedes aegypti e Culex quinquefasciatus, incluindo mosquitos artificialmente e naturalmente infectados. O RTLAMP apresentou sensibilidade de 100%, especificidade de 91,18% e acurácia geral de 95,24%. Quanto ao custo de cada reação (teste) do RT-LAMP, o valor foi um real (R$ 1,00), 40 vezes mais barato do que o qRT-PCR. A disponibilização dessas ferramentas tem grande potencial de contribuir para prevenir a propagação da doença na população e estabelecer melhores estratégias de controle para combater esse patógeno devastador.The rapid spread of Zika virus (ZIKV) represents a global public health problem, especially in countries that circulate several vector mosquito vectors and favorable conditions for virus transmission, such as Brazil. In these areas, improvement in mosquito control needs to be a top priority, but mosquito viral surveillance occurs inefficiently. Currently, the reverse transcriptase reaction followed by quantitative polymerase chain reaction (qRT-PCR) is the gold standard for molecular diagnostic of ZIKV in human samples and mosquito samples. However, the technique presents high cost and limitations for Point-of-care (POC) diagnostics, which makes it difficult to apply and use for a large number of samples and in regions with limited laboratory infrastructure. In view of this scenario, there remains the need to develop new platforms that are capable of detecting ZIKV in a simple and practical way in the field. In this work, we developed and validated a platform reverse transcription loopmediated isothermal amplification (RT-LAMP) for detection of ZIKV in mosquito samples. Regarding the results, the RT-LAMP assay was highly specific for detection of ZIKV and was up to 10,000 times more sensitive than qRT-PCR for the detection of ZIKV in mosquito samples. Assay validation was performed using 60 samples from Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus, including artificially and naturally infected mosquitoes. The RT-LAMP had a sensitivity of 100%, specificity of 91.18 %, and overall accuracy of 95.24%. The cost of each reaction (test) of the RT-LAMP was one Brazilian Real (R$ 1.00). The availability of these tools has great potential to contribute to prevent the spread of the disease in the population and establish better control strategies for this devastating pathogen.IDRC (Canadá) e FACEPE.2020-04-03Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Aggeu Magalhães. Recife, PE, Brasil.porDiagnósticoMosquitosZIKVDiagnosticMosquitosZIKVZika virus/isolamento & purificaçäoInfecção pelo Zika virus/diagnósticoReação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase Reversa/métodosTécnicas BiossensoriaisCulicidae/virologiaCustos e Análise de CustoEstudos de AvaliaçãoSensibilidade e EspecificidadeInsetos VetoresTécnicas e Procedimentos DiagnósticosDesenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus ZikaDevelopment of fast and low cost molecular tools for Zika virus diagnosisinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2019-02-27Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Aggeu Magalhães.Mestrado AcadêmicoRecife/PEPrograma de Pós-graduação em Biociências e Biotecnologia em Saúdeinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-83094https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/1/license.txtee3692f7b0b97d5638099ab94397d05fMD51ORIGINAL2019silva-sjr.pdf2019silva-sjr.pdfapplication/pdf6337384https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/2/2019silva-sjr.pdff8714cf3df1ce21e747f65940b0ac582MD52TEXT2019silva-sjr.pdf.txt2019silva-sjr.pdf.txtExtracted texttext/plain240492https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/3/2019silva-sjr.pdf.txtd867e07ede37168626adfe75c3f5e7ddMD53icict/361252021-03-24 16:32:30.329oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352021-03-24T19:32:30Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false |
dc.title.pt_BR.fl_str_mv |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
dc.title.alternative.pt_BR.fl_str_mv |
Development of fast and low cost molecular tools for Zika virus diagnosis |
title |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
spellingShingle |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika Silva, Severino Jefferson Ribeiro da Diagnóstico Mosquitos ZIKV Diagnostic Mosquitos ZIKV Zika virus/isolamento & purificaçäo Infecção pelo Zika virus/diagnóstico Reação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase Reversa/métodos Técnicas Biossensoriais Culicidae/virologia Custos e Análise de Custo Estudos de Avaliação Sensibilidade e Especificidade Insetos Vetores Técnicas e Procedimentos Diagnósticos |
title_short |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
title_full |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
title_fullStr |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
title_full_unstemmed |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
title_sort |
Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e de baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika |
author |
Silva, Severino Jefferson Ribeiro da |
author_facet |
Silva, Severino Jefferson Ribeiro da |
author_role |
author |
dc.contributor.advisorco.none.fl_str_mv |
Pardee, Keith Paiva, Marcelo Henrique Santos |
dc.contributor.member.none.fl_str_mv |
Pena, Lindomar José Vasconcelos, Luydson Richardson Silva Freitas, Antônio Carlos de |
dc.contributor.author.fl_str_mv |
Silva, Severino Jefferson Ribeiro da |
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv |
Pena, Lindomar José |
contributor_str_mv |
Pena, Lindomar José |
dc.subject.other.pt_BR.fl_str_mv |
Diagnóstico Mosquitos ZIKV |
topic |
Diagnóstico Mosquitos ZIKV Diagnostic Mosquitos ZIKV Zika virus/isolamento & purificaçäo Infecção pelo Zika virus/diagnóstico Reação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase Reversa/métodos Técnicas Biossensoriais Culicidae/virologia Custos e Análise de Custo Estudos de Avaliação Sensibilidade e Especificidade Insetos Vetores Técnicas e Procedimentos Diagnósticos |
dc.subject.en.pt_BR.fl_str_mv |
Diagnostic Mosquitos ZIKV |
dc.subject.decs.pt_BR.fl_str_mv |
Zika virus/isolamento & purificaçäo Infecção pelo Zika virus/diagnóstico Reação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase Reversa/métodos Técnicas Biossensoriais Culicidae/virologia Custos e Análise de Custo Estudos de Avaliação Sensibilidade e Especificidade Insetos Vetores Técnicas e Procedimentos Diagnósticos |
description |
A rápida disseminação do vírus Zika (ZIKV) representa um problema de saúde pública global, especialmente em países onde circulam várias espécies de mosquitos vetores e apresentam condições favoráveis para a transmissão de vírus, como o Brasil. Nessas áreas, a melhoria no controle do mosquito precisa ser uma prioridade, mas a vigilância do vírus nos mosquitos ocorre de maneira ineficiente. Atualmente, a reação de transcriptase reversa seguida da reação em cadeia da polimerase quantitativa (qRT-PCR) é o método padrão-ouro para o diagnóstico molecular do ZIKV em amostras humanas e amostras de mosquitos. Porém, essa técnica apresenta elevado custo e inúmeras limitações para o diagnóstico Pointof- care (POC), o que dificulta sua aplicação e utilização para um grande número de amostras e em regiões com infraestrutura laboratorial limitada. Diante desse cenário, permanece a necessidade do desenvolvimento de novas plataformas que sejam capazes de detectar o ZIKV de forma simples e prática no campo. Neste trabalho, foi desenvolvida e validada uma plataforma de transcriptase reversa seguida de amplificação isotérmica mediada por alça (RTLAMP) para a detecção de ZIKV em amostras de mosquitos. Quanto aos resultados, o ensaio RT-LAMP foi altamente específico para detecção do ZIKV e se mostrou até 10.000 vezes mais sensível que a qRT-PCR para a detecção do ZIKV em amostras de mosquito. A validação do ensaio foi realizada com 60 amostras de mosquitos Aedes aegypti e Culex quinquefasciatus, incluindo mosquitos artificialmente e naturalmente infectados. O RTLAMP apresentou sensibilidade de 100%, especificidade de 91,18% e acurácia geral de 95,24%. Quanto ao custo de cada reação (teste) do RT-LAMP, o valor foi um real (R$ 1,00), 40 vezes mais barato do que o qRT-PCR. A disponibilização dessas ferramentas tem grande potencial de contribuir para prevenir a propagação da doença na população e estabelecer melhores estratégias de controle para combater esse patógeno devastador. |
publishDate |
2019 |
dc.date.accessioned.fl_str_mv |
2019-10-03T13:43:53Z |
dc.date.available.fl_str_mv |
2019-10-03T13:43:53Z |
dc.date.issued.fl_str_mv |
2019 |
dc.type.status.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
dc.type.driver.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/masterThesis |
format |
masterThesis |
status_str |
publishedVersion |
dc.identifier.citation.fl_str_mv |
SILVA, Severino Jefferson Ribeiro da. Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika. 2019. 119f. Dissertação (Mestrado Acadêmico em Biociências e Biotecnologia em Saúde) - Instituto Aggeu Magalhães, Fundação Oswaldo Cruz, Recife, 2019. |
dc.identifier.uri.fl_str_mv |
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/36125 |
identifier_str_mv |
SILVA, Severino Jefferson Ribeiro da. Desenvolvimento de ferramentas moleculares rápidas e baixo custo para o diagnóstico do vírus Zika. 2019. 119f. Dissertação (Mestrado Acadêmico em Biociências e Biotecnologia em Saúde) - Instituto Aggeu Magalhães, Fundação Oswaldo Cruz, Recife, 2019. |
url |
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/36125 |
dc.language.iso.fl_str_mv |
por |
language |
por |
dc.rights.driver.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/openAccess |
eu_rights_str_mv |
openAccess |
dc.source.none.fl_str_mv |
reponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ) instacron:FIOCRUZ |
instname_str |
Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ) |
instacron_str |
FIOCRUZ |
institution |
FIOCRUZ |
reponame_str |
Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
collection |
Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
bitstream.url.fl_str_mv |
https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/1/license.txt https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/2/2019silva-sjr.pdf https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/36125/3/2019silva-sjr.pdf.txt |
bitstream.checksum.fl_str_mv |
ee3692f7b0b97d5638099ab94397d05f f8714cf3df1ce21e747f65940b0ac582 d867e07ede37168626adfe75c3f5e7dd |
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv |
MD5 MD5 MD5 |
repository.name.fl_str_mv |
Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ) |
repository.mail.fl_str_mv |
repositorio.arca@fiocruz.br |
_version_ |
1822791507803897856 |