Desenvolvimento de controles de processo para a produção de conjugado de anticorpo anti-IgG canina com peroxidase de raiz forte utilizado no kit para detecção de leishmaniose canina
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Data de Publicação: | 2013 |
Tipo de documento: | Dissertação |
Idioma: | por |
Título da fonte: | Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
Texto Completo: | https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/35997 |
Resumo: | Leishmaniose é uma doença endêmica presente em mais de 80 países no mundo incluindo o Brasil, tornando-se um grave problema de saúde pública no mundo. A leishmaniose visceral (LV) causada pelo parasito Leishmania chagasi é uma doença que ocorre em seres humanos sendo cães um dos reservatórios do parasito. Dessa forma, o diagnóstico canino é essencial para os programas de vigilância da LV. No Brasil, o controle da LV é realizado pelo Ministério da Saúde, no qual preconiza a eutanásia de cães soropositivos, o controle do vetor, o diagnóstico precoce e o tratamento de casos humanos. No entanto, o impacto dessas medidas não tem surtido o efeito esperado na redução de casos humanos. Neste sentido, o correto diagnóstico é um importante passo para evitar a eutanásia desnecessária de cães e a transmissão da doença, pois assim evita-se que o cão infectado permaneça no ambiente como fonte de infecção. Bio-Manguinhos possui uma ampla linha de reativos para diagnóstico, dentre eles o Ensaio Imunoenzimático (Elisa) para diagnóstico da Leishmaniose Visceral Canina (EIE-LVC), o qual apresenta a possibilidade de diagnóstico em larga escala, melhor leitura e interpretação dos resultados quando comparado a outros testes sorológicos. Para competir com os demais produtos que atuam no mercado são necessários novos estudos que possam melhorar a eficiência e qualidade do kit (EIE-LVC). Nesta dissertação algumas estratégias foram estabelecidas e técnicas foram otimizadas para a produção de conjugados de anticorpos anti-IgG canina marcados com peroxidase (IgG-HRP) produzidos na Seção de Insumos, Conjugados e Apoio (SEICA)/Bio-Manguinhos. Neste estudo a obtenção da IgG foi realizada pelas etapas de precipitação com sulfato de amônio, dessalinização em cromatografia de exclusão e peneiração molecular (SEC) e purificação por cromatografia de troca aniônica em coluna Poros HQ. A imunoglobulina purificada foi analisada por SDS-PAGE, IEF-PAGE e quantificada pelo método de BCA. A conjugação da IgG purificada à HRP foi realizada através da metodologia de aminação redutiva, utilizando diferentes concentrações de metaperiodato de sódio e borohidreto de Sódio. Após a obtenção dos conjugados, estes foram avaliados quanto à conformação através de SEC, dicroísmo circular e espectrometria de fluorescência e caracterizados imunologicamente através de Elisa. A estabilidade dos conjugados foi avaliada através de curvas de desnaturação térmica e por testes de estabilidade acelerada. Os ensaios de monitoramento conformacional indicam que os conjugados apresentam uma grande estabilidade conformacional. Os ensaios de estabilidade acelerada ocorreram em três condições de temperatura a 4ºC, 37ºC e 50ºC, utilizando o estabilizante comercial Guardian™ em substituição ao estabilizante clássico do kit e placas preparadas para estocagem a 4ºC. A eficiência dos conjugados nestas condições foi avaliada por meio de Elisa frente a placas previamente sensibilizadas com antígeno de LV, contra soros positivos e negativos de painéis sorológicos padronizados utilizados no diagnóstico canino. Nossos dados de estabilidade acelerada indicam que os conjugados mantiveram a eficiência no reconhecimento dos anticorpos, mesmo em altas temperaturas, evidenciando que estes possuem estabilidade compatível para armazenamento a temperatura de 2ºC a 8ºC. Ao comparar os conjugados obtidos sob as novas condições com o conjugado clássico verificamos que ambos são capazes de distinguir as amostras positivas e negativas. Sendo assim, a implantação das novas estratégias demonstradas nesta dissertação podem ser utilizadas para aumentar a validade dos kits e facilitar o processo de produção. |
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Mendes, Edinéa PastroVillas Bôas, Maria Helena SimõesDelgado, Isabella FernandesSouza, Theo Luiz Ferraz deNascimento, Hilton JorgeAno Bom, Ana Paula DinisVillas Bôas, Maria Helena SimõesAno bom, Ana Paula Dinis2019-09-30T13:36:16Z2019-09-30T13:36:16Z2013MENDES, E. P. Desenvolvimento de controles de processo para a produção de conjugado de anticorpo anti-IgG canina com peroxidase de raiz forte utilizado no kit para detecção de leishmaniose canina. 2013. 107 f. Dissertação (Mestrado em Vigilância Sanitária)-Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde, Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 2013.https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/35997Leishmaniose é uma doença endêmica presente em mais de 80 países no mundo incluindo o Brasil, tornando-se um grave problema de saúde pública no mundo. A leishmaniose visceral (LV) causada pelo parasito Leishmania chagasi é uma doença que ocorre em seres humanos sendo cães um dos reservatórios do parasito. Dessa forma, o diagnóstico canino é essencial para os programas de vigilância da LV. No Brasil, o controle da LV é realizado pelo Ministério da Saúde, no qual preconiza a eutanásia de cães soropositivos, o controle do vetor, o diagnóstico precoce e o tratamento de casos humanos. No entanto, o impacto dessas medidas não tem surtido o efeito esperado na redução de casos humanos. Neste sentido, o correto diagnóstico é um importante passo para evitar a eutanásia desnecessária de cães e a transmissão da doença, pois assim evita-se que o cão infectado permaneça no ambiente como fonte de infecção. Bio-Manguinhos possui uma ampla linha de reativos para diagnóstico, dentre eles o Ensaio Imunoenzimático (Elisa) para diagnóstico da Leishmaniose Visceral Canina (EIE-LVC), o qual apresenta a possibilidade de diagnóstico em larga escala, melhor leitura e interpretação dos resultados quando comparado a outros testes sorológicos. Para competir com os demais produtos que atuam no mercado são necessários novos estudos que possam melhorar a eficiência e qualidade do kit (EIE-LVC). Nesta dissertação algumas estratégias foram estabelecidas e técnicas foram otimizadas para a produção de conjugados de anticorpos anti-IgG canina marcados com peroxidase (IgG-HRP) produzidos na Seção de Insumos, Conjugados e Apoio (SEICA)/Bio-Manguinhos. Neste estudo a obtenção da IgG foi realizada pelas etapas de precipitação com sulfato de amônio, dessalinização em cromatografia de exclusão e peneiração molecular (SEC) e purificação por cromatografia de troca aniônica em coluna Poros HQ. A imunoglobulina purificada foi analisada por SDS-PAGE, IEF-PAGE e quantificada pelo método de BCA. A conjugação da IgG purificada à HRP foi realizada através da metodologia de aminação redutiva, utilizando diferentes concentrações de metaperiodato de sódio e borohidreto de Sódio. Após a obtenção dos conjugados, estes foram avaliados quanto à conformação através de SEC, dicroísmo circular e espectrometria de fluorescência e caracterizados imunologicamente através de Elisa. A estabilidade dos conjugados foi avaliada através de curvas de desnaturação térmica e por testes de estabilidade acelerada. Os ensaios de monitoramento conformacional indicam que os conjugados apresentam uma grande estabilidade conformacional. Os ensaios de estabilidade acelerada ocorreram em três condições de temperatura a 4ºC, 37ºC e 50ºC, utilizando o estabilizante comercial Guardian™ em substituição ao estabilizante clássico do kit e placas preparadas para estocagem a 4ºC. A eficiência dos conjugados nestas condições foi avaliada por meio de Elisa frente a placas previamente sensibilizadas com antígeno de LV, contra soros positivos e negativos de painéis sorológicos padronizados utilizados no diagnóstico canino. Nossos dados de estabilidade acelerada indicam que os conjugados mantiveram a eficiência no reconhecimento dos anticorpos, mesmo em altas temperaturas, evidenciando que estes possuem estabilidade compatível para armazenamento a temperatura de 2ºC a 8ºC. Ao comparar os conjugados obtidos sob as novas condições com o conjugado clássico verificamos que ambos são capazes de distinguir as amostras positivas e negativas. Sendo assim, a implantação das novas estratégias demonstradas nesta dissertação podem ser utilizadas para aumentar a validade dos kits e facilitar o processo de produção.Leishmaniasis is an endemic disease in more than 80 countries in the world, including Brazil, and has now become a serious public health problem. Visceral leishmaniasis (VL) caused by the parasite Leishmania chagasi is a disease that occurs in humans with dogs being one of the hosts of the parasite. This way, the canine diagnosis is essential for the VL surveillance programs. In Brazil, the burden of control of the VL lies with the Health Ministry, and the recommendation is euthanasia for serum positive dogs, vector control, early diagnosis and VL human cases treatment. However, the impact of these actions has not produced the expected effect in the reduction of cases in humans. Then, the correct diagnosis is very important to avoid the unnecessary dog’s euthanasia and disease transmission, because this prevents the infected dogs to remain in the domestic environment as a source of infection. BioManguinhos has a wide diagnosis reagents line, including enzyme-linked immunosorbent assay (Elisa) for diagnosis of Canine Visceral Leishmaniasis (EIE-CVL), which shows the possibility of large-scale diagnosis, with superior analysis and interpretation of the results when compared to other serological tests. In order to compete with other diagnosis products, further studies are necessary, which can improve the efficiency and quality of the kit (EIECVL). In this dissertation some strategies have been established and techniques have been optimized for the production of canine anti-IgG antibody with peroxidase (IgG-HRP) conjugated produced by Seção de Insumos Conjugados e Apoio (SEICA)/Bio-Manguinhos. In this study the IgG was obtained by the ammonium sulfate precipitation steps, desalinization at molecular sieving and exclusion chromatography (SEC) and purification by anion exchange chromatography on Poros HQ column. The purified IgG was analyzed by SDS-PAGE, IEFPAGE and quantified by BCA method. The conjugation of the purified IgG to HRP was performed by reductive amination methodology using different concentrations of NaBH4 and NaIO4. After obtaining conjugates, they were evaluated by the conformation analysis using SEC, circular dichroism and fluorescence spectrometry techniques and immunological characterized by Elisa. The conjugates stability was assessed through denaturation thermal curves and accelerated stability tests. The conformational monitoring tests indicate that conjugates exhibit a large conformational stability. Accelerated stability testing occurred in three temperature conditions at 4ºC, 37ºC and 50ºC, using commercial stabilizer Guardian™ replacing the kit stabilizer and plates prepared for storage at 4°C. The conjugates efficiency under these conditions was assessed by Elisa against plates previously sensitized with LV antigen against positive and negative sera derived from standard serum panel used in the canine diagnosis. Our accelerated stability data indicate that conjugates maintained the antibody recognition efficiency even at high temperatures, indicating that they have stability to storage at a temperature of 2 to 8°C. When comparing the conjugates obtained under the new conditions with the actual conjugate we find that both of them are able to distinguish between positive and negative samples. Therefore, the employment of new strategies demonstrated in this thesis can be used to increase the kit validity period and facilitate the production process.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porLeishmanioseConjugado IgG-HRPEnsaio imunoenzimáticoLeishmaniosisIgG-HRP ConjugatedImmunosorbent AssayLeishmanioseCãesImunoglobulina GTécnicas ImunoenzimáticasKit de Reagentes para DiagnósticoDesenvolvimento de controles de processo para a produção de conjugado de anticorpo anti-IgG canina com peroxidase de raiz forte utilizado no kit para detecção de leishmaniose caninainfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2013-05-28Coordenação de Pós GraduaçãoFundação Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Controle de Qualidade em SaúdeMestrado AcadêmicoRio de Janeiro/RJPrograma de Pós-Graduação em Vigilância Sanitáriainfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/35997/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51ORIGINALDISSERTAÇÃO_EDINÉA_PASTRO_MENDES.pdfDISSERTAÇÃO_EDINÉA_PASTRO_MENDES.pdfapplication/pdf2233066https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/35997/2/DISSERTA%c3%87%c3%83O_EDIN%c3%89A_PASTRO_MENDES.pdf9f407fb35d7f16a78d510dc4bf1db0ccMD52TEXTDISSERTAÇÃO_EDINÉA_PASTRO_MENDES.pdf.txtDISSERTAÇÃO_EDINÉA_PASTRO_MENDES.pdf.txtExtracted texttext/plain201203https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/35997/3/DISSERTA%c3%87%c3%83O_EDIN%c3%89A_PASTRO_MENDES.pdf.txt706b09c9763de0498b69fb6f6e2e6f02MD53icict/359972019-10-06 10:07:59.162oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352019-10-06T13:07:59Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false |
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