Estudo de genes de Leishmania infantum chagasi expressos durante a infecção em Lutzomyia longipalpis, principal vetor da Leishmaniose Visceral no Brasil

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Silva, Thaís Lemos da
Data de Publicação: 2017
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
Texto Completo: https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/23792
Resumo: As leishmanioses são causadas por protozoários do gênero Leishmania e sua transmissão ocorre através da picada de fêmeas de flebotomíneos principalmente dos gêneros Phlebotomus no Velho Mundo, e Lutzomyia no Novo Mundo. Lutzomyia longipalpis é o principal vetor da leishmaniose visceral causada por Leishmania infantum chagasi nas Américas. As Leishmanias são organismos digenéticos, com um ciclo de desenvolvimento em hospedeiros vertebrado e invertebrado. Apesar de alguns trabalhos descreverem moléculas de Leishmania que participam da interação com o inseto vetor, pouco se sabe sobre os genes do parasita expressos dentro do tubo digestivo do inseto. Nosso objetivo foi caracterizar genes expressos por L. i. chagasi durante a infecção em L. longipalpis. Neste sentido, investigamos genes do parasita que são potencialmente importantes para sobrevivência e estabelecimento da infecção no inseto. Para avaliar a expressão dos genes de interesse utilizamos amostras de insetos coletados em diversos horários subsequentes à infecção artificial e parasitas em fases de crescimento exponencial e estacionário do parasita crescido em meio de cultura. Através de PCR quantitativo obtivemos resultados de expressão de alguns genes envolvidos com: interação com o tubo digestivo do inseto como os genes codificantes para proteína flagelar FLAG1/SMP1 e quitinase; diferenciação e proliferação do parasita, como genes de transportadores de glicose (GTs), poliubiquitina, proteína pequena hidrofílica associada ao retículo endoplasmático (SHERP), proteína de membrana dos kinetoplastídeos-11 (KMP-11), xantina fosforribosiltransferase (XPRT), aminoácido permease 3 (AAP3) e peroxirredoxina; e modulação da resposta imune do hospedeiro vertebrado, como os genes de caseína cinase 1 (CK1), fator de elongação1-alfa (EF1-alfa) e glicoproteína 63 (GP63) Uma hora pós-infecção a L. i. chagasi expressa abundantemente FLAG1/SMP1, GTs, AAP3 e GP63; em 6h apenas EF1-alfa tem expressão aumentada; 72h pós-infecção, os genes GTs, SHERP, AAP3 e EF1- alfa são mais expressos; em 144h há aumento da expressão de poliubiquitina, SHERP, GP63 e do receptor de LDL (LDL-R); em 168h observamos o aumento da expressão de EF1-alfa e diminuição de XPRT. Além disso, investigamos o papel da microbiota do inseto na expressão dos genes do parasita. Com intuito de reduzir ou eliminar a microbiota, insetos foram infectados e tratados com antibiótico. Resultados preliminares mostram modulação principalmente de genes envolvidos com diferenciação, metabolismo de açúcar e aminoácidos. Avaliamos também o papel do LDL-R na infecção do inseto utilizando parasitas transfectadas que superexpressam o gene e observamos que não houve diferença. Nossos dados revelam interessantes aspectos da adaptação do parasita ao microambiente do intestino e preparação para infecção no hospedeiro vertebrado ainda dentro do inseto
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Apesar de alguns trabalhos descreverem moléculas de Leishmania que participam da interação com o inseto vetor, pouco se sabe sobre os genes do parasita expressos dentro do tubo digestivo do inseto. Nosso objetivo foi caracterizar genes expressos por L. i. chagasi durante a infecção em L. longipalpis. Neste sentido, investigamos genes do parasita que são potencialmente importantes para sobrevivência e estabelecimento da infecção no inseto. Para avaliar a expressão dos genes de interesse utilizamos amostras de insetos coletados em diversos horários subsequentes à infecção artificial e parasitas em fases de crescimento exponencial e estacionário do parasita crescido em meio de cultura. Através de PCR quantitativo obtivemos resultados de expressão de alguns genes envolvidos com: interação com o tubo digestivo do inseto como os genes codificantes para proteína flagelar FLAG1/SMP1 e quitinase; diferenciação e proliferação do parasita, como genes de transportadores de glicose (GTs), poliubiquitina, proteína pequena hidrofílica associada ao retículo endoplasmático (SHERP), proteína de membrana dos kinetoplastídeos-11 (KMP-11), xantina fosforribosiltransferase (XPRT), aminoácido permease 3 (AAP3) e peroxirredoxina; e modulação da resposta imune do hospedeiro vertebrado, como os genes de caseína cinase 1 (CK1), fator de elongação1-alfa (EF1-alfa) e glicoproteína 63 (GP63) Uma hora pós-infecção a L. i. chagasi expressa abundantemente FLAG1/SMP1, GTs, AAP3 e GP63; em 6h apenas EF1-alfa tem expressão aumentada; 72h pós-infecção, os genes GTs, SHERP, AAP3 e EF1- alfa são mais expressos; em 144h há aumento da expressão de poliubiquitina, SHERP, GP63 e do receptor de LDL (LDL-R); em 168h observamos o aumento da expressão de EF1-alfa e diminuição de XPRT. Além disso, investigamos o papel da microbiota do inseto na expressão dos genes do parasita. Com intuito de reduzir ou eliminar a microbiota, insetos foram infectados e tratados com antibiótico. Resultados preliminares mostram modulação principalmente de genes envolvidos com diferenciação, metabolismo de açúcar e aminoácidos. Avaliamos também o papel do LDL-R na infecção do inseto utilizando parasitas transfectadas que superexpressam o gene e observamos que não houve diferença. Nossos dados revelam interessantes aspectos da adaptação do parasita ao microambiente do intestino e preparação para infecção no hospedeiro vertebrado ainda dentro do insetoLeishmaniasis is caused by protozoa of the genus Leishmania and transmission occurs through the bite of female sand flies, mainly from the genus Phlebotomus in the Old World, and Lutzomyia in the New World. Lutzomyia longipalpis is the main vector of visceral Leishmaniasis caused by Leishmania infantum chagasi in the Americas. Leishmania are digenetic organisms, with a life cycle in vertebrate and invertebrate hosts. Although there is some information on Leishmania molecules that participate in the interaction with the insect vector, little is known about parasite genes expressed inside the insect gut. Our objective was to characterize genes expressed by L. i. chagasi during infection of L. longipalpis. In this sense, we investigated parasite genes that are potentially important for survival and establishment of insect infection. To evaluate the expression of the genes of interest, we used samples of insects collected at different times subsequent to artificial infection and culture medium grown parasites in exponential and stationary growth phases. Through quantitative PCR we obtained results on the expression of some genes involved with: interaction with the insect gut, as the genes coding for FLAG1 / SMP1 and chitinase; differentiation and proliferation of the parasite, as glucose transporter (GTs), polyubiquitin, small endoplasmic reticulum-associated hydrophilic protein (SHERP), kinetoplastídeo-11 membrane protein (KMP-11), xanthine phosphoribosyltransferase (XPRT), amino acid permease 3 (AAP3) and peroxiredoxin; and modulation of the vertebrate host immune response such as casein kinase 1 (CK1), elongation-1-alpha (EF1-alpha) and glycoprotein 63 (GP63) At 1h post-infection L. i. chagasi abundantly expresses FLAG1 / SMP1, GTs, AAP3 and GP63; In 6h only EF1-alpha has increased expression; 72h post-infection, the GTs, SHERP, AAP3 and EF1-a genes are more expressed; In 144h there is increased expression of polyubiquitin, SHERP, GP63 and the LDL receptor (LDL-R); In 168h we observed increased EF1-alpha and decreased XPRT expression. In addition, we investigated the role of the insect microbiota in the expression of parasite genes. In order to reduce or eliminate the microbiota, insects were infected and treated with antibiotics. Preliminary results indicate modulation mainly of genes involved with differentiation, sugar metabolism and amino acids. We also investigate the role of LDL-R in insect infection using mutant parasites that overexpress the gene and found no difference. Our data reveal interesting aspects of the adaptation of the parasite to the microenvironment of the vector intestine and preparation for infection in the vertebrate host still inside the insectFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porLeishmania infantumPsychodidaeInterações Hospedeiro-ParasitaEstudo de genes de Leishmania infantum chagasi expressos durante a infecção em Lutzomyia longipalpis, principal vetor da Leishmaniose Visceral no Brasilinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2017Instituto Oswaldo CruzFundação Oswaldo CruzRio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Biologia Celular e Molecularinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/23792/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51ORIGINALthais_silva_ioc_mest_2017.pdfapplication/pdf2132519https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/23792/2/thais_silva_ioc_mest_2017.pdf489f484fa7cfdfae402715355eee170dMD52TEXTthais_silva_ioc_mest_2017.pdf.txtthais_silva_ioc_mest_2017.pdf.txtExtracted texttext/plain122028https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/23792/3/thais_silva_ioc_mest_2017.pdf.txt9e0a059860056813691a9cd644618227MD53icict/237922023-02-23 10:29:43.924oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352023-02-23T13:29:43Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false
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