Filoxera-da-videira: biologia, resistência de genótipos, interação com o fungo Dactylonectria macrodidyma e controle químico

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Andzeiewski, Simone
Data de Publicação: 2021
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca
Texto Completo: http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/8151
Resumo: A filoxera-da-videira Daktulosphaira vitifoliae (Fitch, 1856) é a praga mais importante da viticultura mundial. O inseto se desenvolve tanto na parte aérea (forma galícola) quanto nas raízes (forma radícola) podendo provocar um declínio gradual e aumento da suscetibilidade a fungos de solo culminando com a morte das plantas. Uma das principais estratégias para o controle da praga é o emprego de porta-enxertos resistentes. Este trabalho teve como objetivos: a) avaliar a ocorrência de ovos de inverno da filoxera em mudas de ‘Paulsen 1103’ a campo; b) conhecer a biologia em raízes de cultivares e calcular a tabela de vida de fertilidade do inseto; c) avaliar a resistência de genótipos de Vitis spp. a filoxera utilizando o método de raízes extirpadas em laboratório; d) estudar a interação de D. vitifoliae com o fungo Dactylonectria macrodidyma e, e) avaliar o efeito de inseticidas químicos na supressão de populações da forma galícola e radícola da filoxera-da-videira. A presença de ovos de inverno da filoxera-da-videira foi registrada em 78% das plantas do porta-enxerto ‘Paulsen 1103’ amostradas. Nas plantas com a presença de ovos de inverno foi encontrada uma média de 31 ± 6,31 (X±EP) ovos/planta. A filoxera completa o ciclo biológico (ovo a adulto) em raízes lignificadas de ‘BRS Lorena’, ‘Bordô’ e ‘Cabernet Sauvignon’, com maior viabilidade do período (90,2%) em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’. As ninfas não completaram o desenvolvimento em raízes lignificadas de ‘Paulsen 1103’ e ‘Magnólia’. Cultivares com origem ou com cruzamentos com V. vinifera apresentaram maior número de tuberosidades, enquanto que as de origem americana (V. labrusca, V. berlandieri, V. rotundifolia, V. rupestris, V. riparia) apresentaram nodosidades. Dentre as cultivares copa, a maior quantidade de insetos sobreviventes foi registrada em ‘Cabernet Sauvignon’. Em contraste, os genótipos ‘548-15’, ‘Magnólia’ e ‘1111-21’ apresentaram reduzida infestação e sobrevivência de ninfas nas raízes, sendo considerados resistentes à praga. Raízes infestadas com a filoxera e inoculadas com o fungo D. macrodydima resultaram numa maior porcentagem de reisolamento do fungo. No ensaio de controle químico da fase galícola, uma aplicação do inseticida flupiradifurona (Sivanto®Prime 200 SL, 75mL p.c/100L-1 ) proporcionou uma redução de danos de 90% aos 28 DAA, enquanto que para o thiamethoxam (Actara 250 WG®, 40g p.c/100L-1 ), e sulfoxaflor (Closer®SC, 40mL p.c/100L-1 ) foram necessárias 3 e 2 aplicações para obter o mesmo nível de controle, respectivamente. Para a fase radícola, os inseticidas sulfoxaflor 8 (0,3mL/planta) e imidacloprido (Provado 200 SC, 0,7mL/planta) apresentaram os melhores resultados, com 96 e 89% de controle de ninfas + adultos respectivamente, seguidos pela flupiradifurona (0,8mL/planta) com 76%. Conclui-se que a presença de ovos de inverno no tronco de plantas de videira pode ser uma fonte de dispersão da praga. O melhor desempenho biológico do inseto é verificado em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’ enquanto que os genótipos ‘548-15’ (V. labrusca x V. rotundifolia), ‘Magnólia’ (V. rotundifolia) e ‘1111-21’ (V. labrusca x V. rotundifolia) apresentam reduzida infestação da filoxera. Há interação entre a filoxera-da-videira e o fungo D. macrodydima em raízes de ‘Cabernet Sauvignon” em laboratório. Os inseticidas flupiradifurona e sulfoxaflor são alternativas aos neonicotinoides para o controle químico da filoxera na cultura da videira.
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spelling 2022-01-19T22:07:40Z2022-012022-01-19T22:07:40Z2021-05-31ANDZEIEWSKI, Simone. Filoxera-da-videira: biologia, resistência de genótipos, interação com o fungo Dactylonectria macrodidyma e controle químico. 2021. 130f. Tese (Doutorado) – Programa de Pós-Graduação em Fitossanidade. Universidade Federal de Pelotas, 2021.http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/8151A filoxera-da-videira Daktulosphaira vitifoliae (Fitch, 1856) é a praga mais importante da viticultura mundial. O inseto se desenvolve tanto na parte aérea (forma galícola) quanto nas raízes (forma radícola) podendo provocar um declínio gradual e aumento da suscetibilidade a fungos de solo culminando com a morte das plantas. Uma das principais estratégias para o controle da praga é o emprego de porta-enxertos resistentes. Este trabalho teve como objetivos: a) avaliar a ocorrência de ovos de inverno da filoxera em mudas de ‘Paulsen 1103’ a campo; b) conhecer a biologia em raízes de cultivares e calcular a tabela de vida de fertilidade do inseto; c) avaliar a resistência de genótipos de Vitis spp. a filoxera utilizando o método de raízes extirpadas em laboratório; d) estudar a interação de D. vitifoliae com o fungo Dactylonectria macrodidyma e, e) avaliar o efeito de inseticidas químicos na supressão de populações da forma galícola e radícola da filoxera-da-videira. A presença de ovos de inverno da filoxera-da-videira foi registrada em 78% das plantas do porta-enxerto ‘Paulsen 1103’ amostradas. Nas plantas com a presença de ovos de inverno foi encontrada uma média de 31 ± 6,31 (X±EP) ovos/planta. A filoxera completa o ciclo biológico (ovo a adulto) em raízes lignificadas de ‘BRS Lorena’, ‘Bordô’ e ‘Cabernet Sauvignon’, com maior viabilidade do período (90,2%) em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’. 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O melhor desempenho biológico do inseto é verificado em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’ enquanto que os genótipos ‘548-15’ (V. labrusca x V. rotundifolia), ‘Magnólia’ (V. rotundifolia) e ‘1111-21’ (V. labrusca x V. rotundifolia) apresentam reduzida infestação da filoxera. Há interação entre a filoxera-da-videira e o fungo D. macrodydima em raízes de ‘Cabernet Sauvignon” em laboratório. Os inseticidas flupiradifurona e sulfoxaflor são alternativas aos neonicotinoides para o controle químico da filoxera na cultura da videira.The grape phylloxera Daktulosphaira vitifoliae (Fitch, 1856) is the main grape pest. The insect develops on leaves (forming galls) and roots (root galls). Permanent feeding on the roots results gradual decline and increased susceptibility to soil fungi culminating in the death of plants. One of the main strategies for pest control is the use of resistant rootstocks. The objectives of this work were: a) to evaluate the occurrence of “winter eggs” in ‘Paulsen 1103’ seedlings in the field; b) study the biology in roots of different cultivars and calculate the insect's fertility life table; c) to evaluate the resistance of genotypes of Vitis spp. phylloxera using the root excised method in the laboratory; d) to study the interaction of D. vitifoliae with the fungus Dactylonectria macrodidyma; e) to evaluate the effect of chemical insecticides on suppression of phylloxera populations on grapevine leaf and roots. The presence of phylloxera winter eggs was registered in 78% of the plants of the ‘Paulsen 1103’ rootstock sampled. In plants with the presence of winter eggs, an average of 31 ± 6.31 (X ± EP) eggs / plant was found. The phylloxera completes the biological cycle (egg to adult) in lignified roots of 'BRS Lorena', 'Bordô' and 'Cabernet Sauvignon', with greater viability of the period (90,2%) in roots of 'Cabernet Sauvignon'. The nymphs did not complete their development in lignified roots of ‘Paulsen 1103’ and ‘Magnolia’. Cultivars of origin or crosses with V. vinifera showed a greater number of tuberosities, while those of American origin (V. labrusca, V. berlandieri, V. rotundifolia, V. rupestris, V. riparia) promoted nodosities. Among the cultivars, the largest number of surviving insects was recorded in ‘Cabernet Sauvignon’. In contrast, the genotypes ‘548-15’, ‘Magnolia’ and ‘1111-21’ showed reduced infestation and survival of nymphs in the roots, being considered resistant to the pest. Roots infested with phylloxera and inoculated with the fungus D. macrodydima resulted in a higher percentage of reisolation of the fungus. In the chemical control test of phylloxera in the leaves, an application of the insecticide flupiradifurone (Sivanto®Prime 200 SL, 75mL pc / 100L-1 ) provided reduced foliar damage 90% at 28 DAA, while for thiamethoxam (Actara 250 WG ®, 40g pc / 100L-1 ), and sulfoxaflor (Closer®SC, 40mL pc / 100L-1 ) 3 and 2 applications were necessary to obtain the same level of control, respectively. For the root phylloxera, the insecticides sulfoxaflor (0,3mL / plant) and imidacloprid (Provado 200 SC, 0,7mL / plant) showed 10 the best results, with 96 and 89% control of nymphs + adults respectively, followed by flupiradifurone (0,8mL / plant) with 76%. In conclusion, the presence of winter eggs in the trunk of vine plants can be a source of dispersion of the pest for different producing regions of Brazil. The best biological performance of the insect is verified in 'Cabernet Sauvignon' roots. The genotypes '548-15' (V. labrusca x V. rotundifolia), 'Magnólia' (V. rotundifolia) and '1111-21' (V. labrusca x V. rotundifolia) have reduced pest infestation and can be used in selection new resistant rootstocks. There is an interaction between the grape phylloxera and the fungus D. macrodydima in roots of ‘Cabernet Sauvignon” in the laboratory. The insecticides flupiradifurone and sulfoxaflor are alternatives to neonicotinoids for the chemical control of phylloxera in the grape culture.Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESporUniversidade Federal de PelotasPrograma de Pós-Graduação em FitossanidadeUFPelBrasilFaculdade de Agronomia Eliseu MacielCNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::AGRONOMIA::FITOSSANIDADEDaktulosphaira vitifoliaeParâmetros biológicosResistência de plantasDeclínio e morte de plantasControle químicoBiological parametersPlant resistanceDecline and plant deathChemical controlFiloxera-da-videira: biologia, resistência de genótipos, interação com o fungo Dactylonectria macrodidyma e controle químicoFiloxera-da-videira: biologia, resistência de genótipos, interação com o fungo Dactylonectria macrodidyma e controle químicoinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesishttp://lattes.cnpq.br/1165039218641647http://lattes.cnpq.br/3111763074539772Bernardi, Danielhttp://lattes.cnpq.br/0133638982263969Botton, MarcosAndzeiewski, Simoneinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da UFPel - Guaiacainstname:Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)instacron:UFPELTEXTTese_Simone_Andzeiewski.pdf.txtTese_Simone_Andzeiewski.pdf.txtExtracted texttext/plain217417http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/6/Tese_Simone_Andzeiewski.pdf.txt93ca46ee3c540803f66441ddf5b7f5dfMD56open accessTHUMBNAILTese_Simone_Andzeiewski.pdf.jpgTese_Simone_Andzeiewski.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1222http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/7/Tese_Simone_Andzeiewski.pdf.jpg70326a6ae610759fecf0282133da5398MD57open accessORIGINALTese_Simone_Andzeiewski.pdfTese_Simone_Andzeiewski.pdfapplication/pdf1928842http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/1/Tese_Simone_Andzeiewski.pdfde41e86ad570a25ab90f757650064087MD51open accessCC-LICENSElicense_urllicense_urltext/plain; charset=utf-849http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/2/license_url4afdbb8c545fd630ea7db775da747b2fMD52open accesslicense_textlicense_texttext/html; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/3/license_textd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD53open accesslicense_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/4/license_rdfd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD54open accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-867http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/8151/5/license.txtfbd6c74465857056e3ca572d7586661bMD55open accessprefix/81512023-07-13 03:48:08.186open accessoai:guaiaca.ufpel.edu.br:prefix/8151VG9kb3Mgb3MgaXRlbnMgZGVzc2EgY29tdW5pZGFkZSBzZWd1ZW0gYSBsaWNlbsOnYSBDcmVhdGl2ZSBDb21tb25zLg==Repositório InstitucionalPUBhttp://repositorio.ufpel.edu.br/oai/requestrippel@ufpel.edu.br || repositorio@ufpel.edu.br || aline.batista@ufpel.edu.bropendoar:2023-07-13T06:48:08Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca - Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)false
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description A filoxera-da-videira Daktulosphaira vitifoliae (Fitch, 1856) é a praga mais importante da viticultura mundial. O inseto se desenvolve tanto na parte aérea (forma galícola) quanto nas raízes (forma radícola) podendo provocar um declínio gradual e aumento da suscetibilidade a fungos de solo culminando com a morte das plantas. Uma das principais estratégias para o controle da praga é o emprego de porta-enxertos resistentes. Este trabalho teve como objetivos: a) avaliar a ocorrência de ovos de inverno da filoxera em mudas de ‘Paulsen 1103’ a campo; b) conhecer a biologia em raízes de cultivares e calcular a tabela de vida de fertilidade do inseto; c) avaliar a resistência de genótipos de Vitis spp. a filoxera utilizando o método de raízes extirpadas em laboratório; d) estudar a interação de D. vitifoliae com o fungo Dactylonectria macrodidyma e, e) avaliar o efeito de inseticidas químicos na supressão de populações da forma galícola e radícola da filoxera-da-videira. A presença de ovos de inverno da filoxera-da-videira foi registrada em 78% das plantas do porta-enxerto ‘Paulsen 1103’ amostradas. Nas plantas com a presença de ovos de inverno foi encontrada uma média de 31 ± 6,31 (X±EP) ovos/planta. A filoxera completa o ciclo biológico (ovo a adulto) em raízes lignificadas de ‘BRS Lorena’, ‘Bordô’ e ‘Cabernet Sauvignon’, com maior viabilidade do período (90,2%) em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’. As ninfas não completaram o desenvolvimento em raízes lignificadas de ‘Paulsen 1103’ e ‘Magnólia’. Cultivares com origem ou com cruzamentos com V. vinifera apresentaram maior número de tuberosidades, enquanto que as de origem americana (V. labrusca, V. berlandieri, V. rotundifolia, V. rupestris, V. riparia) apresentaram nodosidades. Dentre as cultivares copa, a maior quantidade de insetos sobreviventes foi registrada em ‘Cabernet Sauvignon’. Em contraste, os genótipos ‘548-15’, ‘Magnólia’ e ‘1111-21’ apresentaram reduzida infestação e sobrevivência de ninfas nas raízes, sendo considerados resistentes à praga. Raízes infestadas com a filoxera e inoculadas com o fungo D. macrodydima resultaram numa maior porcentagem de reisolamento do fungo. No ensaio de controle químico da fase galícola, uma aplicação do inseticida flupiradifurona (Sivanto®Prime 200 SL, 75mL p.c/100L-1 ) proporcionou uma redução de danos de 90% aos 28 DAA, enquanto que para o thiamethoxam (Actara 250 WG®, 40g p.c/100L-1 ), e sulfoxaflor (Closer®SC, 40mL p.c/100L-1 ) foram necessárias 3 e 2 aplicações para obter o mesmo nível de controle, respectivamente. Para a fase radícola, os inseticidas sulfoxaflor 8 (0,3mL/planta) e imidacloprido (Provado 200 SC, 0,7mL/planta) apresentaram os melhores resultados, com 96 e 89% de controle de ninfas + adultos respectivamente, seguidos pela flupiradifurona (0,8mL/planta) com 76%. Conclui-se que a presença de ovos de inverno no tronco de plantas de videira pode ser uma fonte de dispersão da praga. O melhor desempenho biológico do inseto é verificado em raízes de ‘Cabernet Sauvignon’ enquanto que os genótipos ‘548-15’ (V. labrusca x V. rotundifolia), ‘Magnólia’ (V. rotundifolia) e ‘1111-21’ (V. labrusca x V. rotundifolia) apresentam reduzida infestação da filoxera. Há interação entre a filoxera-da-videira e o fungo D. macrodydima em raízes de ‘Cabernet Sauvignon” em laboratório. Os inseticidas flupiradifurona e sulfoxaflor são alternativas aos neonicotinoides para o controle químico da filoxera na cultura da videira.
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