Formação de micro e minijardim clonal de videira

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Nascimento, Daniele Camargo
Data de Publicação: 2018
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca
Texto Completo: http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/4214
Resumo: A obtenção de mudas de qualidade é o primeiro passo para a garantia de um vinhedo duradouro e com bom potencial de produção. Para isso, é necessário a aplicação de técnicas e o desenvolvimento de sistemas que otimizem o processo de produção de mudas. Neste sentido, os objetivos deste estudo foram: desenvolver um protocolo de micropropagação de videira (incluindo as etapas de multiplicação, enraizamento e aclimatização), a formação de um micro e um minijardim clonal e a avaliação destes em sistema de cultivo convencional e cultivo sem solo. O estudo foi desenvolvido por meio de cinco experimentos conduzidos no Laboratório de Botânica e no viveiro de mudas pertencentes à Universidade Federal do Pampa, Campus Dom Pedrito, RS. Primeiramente, foram realizados experimentos de multiplicação e enraizamento in vitro, em laboratório. Nestes experimentos foram testados o meio de cultura MS (Murashige & Skoog) com a concentração completa de sais (MS) e com a metade da concentração de sais (MS/2), concentrações de BAP (0, 5 e 10μM) para a multiplicação e concentrações de AIB (0; 0,1; 0,2; 0,3mg L1) para o enraizamento in vitro de explantes de videira Chardonnay. Logo, estas plântulas produzidas por micropropagação foram aclimatizadas no viveiro de mudas, testando-se as seguintes composições de substratos: HDecker®; HDecker® + vermiculita; HDecker® + fibra de coco; HDecker® + Humosolo ES®; vermiculita + Humosolo ES®; vermiculita + fibra de coco; Humosolo ES® + fibra de coco. Todas as combinações de substratos foram formuladas na proporção 1:1. Paralelamente, foram produzidas mudas por meio da técnica de miniestaquia, sendo avaliado o enraizamento de miniestacas herbáceas de videira Chardonnay e SO4 sem o uso de AIB e com as concentrações de 500, 1000 e 1500mg L-1. Após a obtenção de mudas produzidas por micropropagação e por miniestaquia, as mudas de Chardonnay foram utilizadas para a formação dos jardins clonais, sendo avaliado o crescimento dessas mudas nos sistemas de cultivo convencional e cultivo sem solo. Nas etapas de multiplicação e enraizamento in vitro, as concentrações do meio de MS não tiveram efeito significativo para a maioria das variáveis, podendo ser utilizado completo ou com a metade da concentração dos sais. Para multiplicação, recomenda-se o uso 10μM de BAP e, para o enraizamento, é indicado o uso de 0,1 mg L-1 de AIB. Já na etapa de aclimatização, os substratos que continham vermiculita na composição, apresentaram melhores resultados. Na miniestaquia, as miniestacas herbáceas de Chardonnay e SO4 enraizaram mesmo sem o uso de regulador de crescimento. Para a formação de jardins clonais, tanto as mudas micropropagadas, quanto as obtidas por miniestaquia podem ser utilizadas. O sistema de cultivo sem solo mostrou-se eficiente para o crescimento de mudas de Chardonnay, sendo superior ao sistema convencional de cultivo.
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Neste sentido, os objetivos deste estudo foram: desenvolver um protocolo de micropropagação de videira (incluindo as etapas de multiplicação, enraizamento e aclimatização), a formação de um micro e um minijardim clonal e a avaliação destes em sistema de cultivo convencional e cultivo sem solo. O estudo foi desenvolvido por meio de cinco experimentos conduzidos no Laboratório de Botânica e no viveiro de mudas pertencentes à Universidade Federal do Pampa, Campus Dom Pedrito, RS. Primeiramente, foram realizados experimentos de multiplicação e enraizamento in vitro, em laboratório. Nestes experimentos foram testados o meio de cultura MS (Murashige & Skoog) com a concentração completa de sais (MS) e com a metade da concentração de sais (MS/2), concentrações de BAP (0, 5 e 10μM) para a multiplicação e concentrações de AIB (0; 0,1; 0,2; 0,3mg L1) para o enraizamento in vitro de explantes de videira Chardonnay. Logo, estas plântulas produzidas por micropropagação foram aclimatizadas no viveiro de mudas, testando-se as seguintes composições de substratos: HDecker®; HDecker® + vermiculita; HDecker® + fibra de coco; HDecker® + Humosolo ES®; vermiculita + Humosolo ES®; vermiculita + fibra de coco; Humosolo ES® + fibra de coco. Todas as combinações de substratos foram formuladas na proporção 1:1. Paralelamente, foram produzidas mudas por meio da técnica de miniestaquia, sendo avaliado o enraizamento de miniestacas herbáceas de videira Chardonnay e SO4 sem o uso de AIB e com as concentrações de 500, 1000 e 1500mg L-1. Após a obtenção de mudas produzidas por micropropagação e por miniestaquia, as mudas de Chardonnay foram utilizadas para a formação dos jardins clonais, sendo avaliado o crescimento dessas mudas nos sistemas de cultivo convencional e cultivo sem solo. Nas etapas de multiplicação e enraizamento in vitro, as concentrações do meio de MS não tiveram efeito significativo para a maioria das variáveis, podendo ser utilizado completo ou com a metade da concentração dos sais. Para multiplicação, recomenda-se o uso 10μM de BAP e, para o enraizamento, é indicado o uso de 0,1 mg L-1 de AIB. Já na etapa de aclimatização, os substratos que continham vermiculita na composição, apresentaram melhores resultados. Na miniestaquia, as miniestacas herbáceas de Chardonnay e SO4 enraizaram mesmo sem o uso de regulador de crescimento. Para a formação de jardins clonais, tanto as mudas micropropagadas, quanto as obtidas por miniestaquia podem ser utilizadas. O sistema de cultivo sem solo mostrou-se eficiente para o crescimento de mudas de Chardonnay, sendo superior ao sistema convencional de cultivo.Obtaining quality plantlets is the first step in ensure a lasting vineyard with good production potential. For this, it is necessary the application of techniques and the development of systems that optimize the process of plant production. In this sense, the objectives of this study were: to develop a micropropagation protocol for grapevine (including multiplication, rooting and acclimatization stages), the formation of a micro and minigarden clonal, and the evaluation of these in a conventional system of cultivation and cultivation soilless. The study was developed through five experiments conducted in the Botany Laboratory and in the nursery belonging to the Federal University of Pampa, Campus Dom Pedrito, RS. First, in vitro multiplication and rooting experiments were carried out in the laboratory. In these experiments we tested the MS culture media (Murashige & Skoog) with the full concentration of salts (MS), and with half the concentration of salts (MS/2), BAP concentrations (0, 5 and 10μM) to the multiplication and concentrations of IBA (0; 0.1; 0.2; 0.3mg L-1) for the in vitro rooting of Chardonnay grapevine explants. After, these plantlets produced by micropropagation were acclimatized in the nursery, testing the following compositions of substrates: HDecker®; HDecker® + vermiculite; HDecker® + coconut fiber; HDecker® + Humosol ES®; vermiculite + Humosol ES®; vermiculite + coconut fiber; Humosolo ES® + coconut fiber. All combinations of substrates were formulated in a 1:1 ratio. In parallel, plantlets were produced by minicutting technique, being evaluated the rooting of herbaceous minicuttings of Chardonnay and SO4 grapevine without the use of IBA and with concentrations of 500, 1000 and 1500mg L-1. After obtaining plantlets produced by micropropagation and minicutting, the Chardonnay plantlets were used for the formation of clonal gardens, where the growth of these plantlets was evaluated in the systems of conventional cultivation and soilless cultivation. In the in vitro multiplication and rooting stages, the concentrations of the MS culture media did not have a significant effect for most of the variables, being able to be used in whole or with half the concentration of salts. For multiplication, it is recommended to use 10μM of BAP and, for rooting, is indicated the use of 0.1 mg L-1 of IBA. Already in the acclimatization stage, the substrates that contained vermiculite in the composition, presented better results. In minicutting, the herbaceous minicuttings of Chardonnay and SO4 rooted even without the use of growth regulator. For the formation of clonal gardens, both micropropagated plantlets and minicutted plantlets can be used. The soilless cultivation system was efficient for the growth of Chardonnay plantlets, being superior to the conventional cultivation system.porUniversidade Federal de PelotasPrograma de Pós-Graduação em AgronomiaUFPelBrasilFaculdade de Agronomia Eliseu MacielCNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::AGRONOMIAVitis viniferaPropagação vegetativaMicropropagaçãoMiniestaquiaCultivo sem soloFormação de micro e minijardim clonal de videiraFormation of micro and miniclonal grapevine gardeninfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da UFPel - Guaiacainstname:Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)instacron:UFPELTEXTTese - Daniele Nascimento.pdf.txtTese - Daniele Nascimento.pdf.txtExtracted texttext/plain235618http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/6/Tese%20-%20Daniele%20Nascimento.pdf.txtece014402c8fffd6dc3316dc54d6d065MD56open accessTHUMBNAILTese - Daniele Nascimento.pdf.jpgTese - Daniele Nascimento.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1223http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/7/Tese%20-%20Daniele%20Nascimento.pdf.jpg11b89ae8e17ae62154f9ed142570d05aMD57open accessORIGINALTese - Daniele Nascimento.pdfTese - Daniele Nascimento.pdfapplication/pdf2307979http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/1/Tese%20-%20Daniele%20Nascimento.pdffae15660c3467f912386c461f7c5a2bbMD51open accessCC-LICENSElicense_urllicense_urltext/plain; charset=utf-849http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/2/license_url4afdbb8c545fd630ea7db775da747b2fMD52open accesslicense_textlicense_texttext/html; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/3/license_textd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD53open accesslicense_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/4/license_rdfd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD54open accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-867http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4214/5/license.txtfbd6c74465857056e3ca572d7586661bMD55open accessprefix/42142023-07-13 04:39:46.458open accessoai:guaiaca.ufpel.edu.br:prefix/4214VG9kb3Mgb3MgaXRlbnMgZGVzc2EgY29tdW5pZGFkZSBzZWd1ZW0gYSBsaWNlbsOnYSBDcmVhdGl2ZSBDb21tb25zLg==Repositório InstitucionalPUBhttp://repositorio.ufpel.edu.br/oai/requestrippel@ufpel.edu.br || repositorio@ufpel.edu.br || aline.batista@ufpel.edu.bropendoar:2023-07-13T07:39:46Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca - Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)false
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