DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu
Autor(a) principal: | |
---|---|
Data de Publicação: | 2017 |
Tipo de documento: | Dissertação |
Idioma: | por |
Título da fonte: | Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca |
Texto Completo: | http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/4632 |
Resumo: | A técnica de criopreservação espermática é simples e possibilita a criação de bancos de germoplasma, permitindo a conservação da diversidade genética e reposição de espécies ameaçadas de extinção. No entanto, durante o processo de criopreservação as células congeladas podem ser danificadas pela toxicidade de crioprotetores, pelos cristais de gelo, resultando em danos ao DNA, mitocôndria, membrana e interferindo na cinética dos espermatozoides. O objetivo do trabalho é avaliar o efeito da associação de DMSO 10% aos açucares trealose, rafinose, sacarose e lactose nas concentrações de 50 mM, 100 mM e 150 mM, sobre as células espermáticas de Piaractus mesopotamicus. Foi coletado esperma dos animais, através de massagem abdominal, sendo induzidos hormonalmente com extrato de hipófise de carpa 12h antes da extrusão. Em seguida, as amostras coletadas foram diluídas em Beltsville Thawing Solution (BTS), contendo o crioprotetor penetrante dimetilsulfóxido (DSMO) a concentração de 10% (controle) e nos demais tratamentos foram adicionados as diferentes concentrações dos açúcares. Após 60 dias, foram feitas análises de movimentação celular (motilidade total e progressiva, período de motilidade, DAP, DCL, DSL, VAP, VCL, VSL, STR, LIN, WOB, ALH e BCF) pelo Computer Assisted Semen Analysis (CASA) e análise das estruturas celulares: integridade de DNA, de membrana, funcionalidade mitocondrial, fluidez de membrana e espécies reativas de oxigênio (ROS), através de citometria de fluxo. Foi realizado o teste de normalidade de Shapiro – Wilk, com posterior analise de variância através do teste de Kruskal Wallis, devido os dados não se comportarem de forma paramétrica. As avaliações de motilidade total e período de motilidade se mostraram melhores quando associado 100 mM de rafinose ao DMSO 10% (P < 0.05). O deslocamento lateral da cabeça (ALH) obteve bom resultado quando utilizado a associação de DMSO 10% com 100 mM de lactose, 150 Mm de sacarose e 150 mM de rafinose, mostrando-se melhor (P < 0,05) que o tratamento sem adição de lactose (0 mM). Em conclusão, considerando os parâmetros cinéticos essenciais na criopreservação espermática, os resultados das avaliações de período de motilidade e motilidade total apresentaram suas melhores taxas no tratamento contendo rafinose 100 mM associado ao DMSO 10%. |
id |
UFPL_f39eb1e3486b63847c5e5e7cbdcc8c88 |
---|---|
oai_identifier_str |
oai:guaiaca.ufpel.edu.br:prefix/4632 |
network_acronym_str |
UFPL |
network_name_str |
Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca |
repository_id_str |
|
spelling |
http://lattes.cnpq.br/7999462492853863http://lattes.cnpq.br/8041711996066835Corcini, Carine Dahlhttp://lattes.cnpq.br/7340307576119827Varela Junior, Antonio SergioPires, Diego Martins2019-07-29T17:39:07Z2019-07-29T17:39:07Z2017-02-16PIRES, Diego Martins. DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu. 2017. 44f. Dissertação (Mestrado) - Programa de Pós-Graduação em Veterinária, Faculdade de Veterinária, Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, 2017.http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/4632A técnica de criopreservação espermática é simples e possibilita a criação de bancos de germoplasma, permitindo a conservação da diversidade genética e reposição de espécies ameaçadas de extinção. No entanto, durante o processo de criopreservação as células congeladas podem ser danificadas pela toxicidade de crioprotetores, pelos cristais de gelo, resultando em danos ao DNA, mitocôndria, membrana e interferindo na cinética dos espermatozoides. O objetivo do trabalho é avaliar o efeito da associação de DMSO 10% aos açucares trealose, rafinose, sacarose e lactose nas concentrações de 50 mM, 100 mM e 150 mM, sobre as células espermáticas de Piaractus mesopotamicus. Foi coletado esperma dos animais, através de massagem abdominal, sendo induzidos hormonalmente com extrato de hipófise de carpa 12h antes da extrusão. Em seguida, as amostras coletadas foram diluídas em Beltsville Thawing Solution (BTS), contendo o crioprotetor penetrante dimetilsulfóxido (DSMO) a concentração de 10% (controle) e nos demais tratamentos foram adicionados as diferentes concentrações dos açúcares. Após 60 dias, foram feitas análises de movimentação celular (motilidade total e progressiva, período de motilidade, DAP, DCL, DSL, VAP, VCL, VSL, STR, LIN, WOB, ALH e BCF) pelo Computer Assisted Semen Analysis (CASA) e análise das estruturas celulares: integridade de DNA, de membrana, funcionalidade mitocondrial, fluidez de membrana e espécies reativas de oxigênio (ROS), através de citometria de fluxo. Foi realizado o teste de normalidade de Shapiro – Wilk, com posterior analise de variância através do teste de Kruskal Wallis, devido os dados não se comportarem de forma paramétrica. As avaliações de motilidade total e período de motilidade se mostraram melhores quando associado 100 mM de rafinose ao DMSO 10% (P < 0.05). O deslocamento lateral da cabeça (ALH) obteve bom resultado quando utilizado a associação de DMSO 10% com 100 mM de lactose, 150 Mm de sacarose e 150 mM de rafinose, mostrando-se melhor (P < 0,05) que o tratamento sem adição de lactose (0 mM). Em conclusão, considerando os parâmetros cinéticos essenciais na criopreservação espermática, os resultados das avaliações de período de motilidade e motilidade total apresentaram suas melhores taxas no tratamento contendo rafinose 100 mM associado ao DMSO 10%.The technique of sperm cryopreservation is simple and allows the creation of germplasm banks, allowing the conservation of genetic diversity and replacement of endangered species. However, during the cryopreservation process the frozen cells can be damaged by cryoprotectant toxicity by ice crystals, resulting in damage to DNA, mitochondria, membrane and interfering with sperm kinetics. The objective of this work was to evaluate the effect of the association of 10% DMSO on trehalose, raffinose, sucrose and lactose at 50 mM, 100 mM and 150 mM concentrations on the sperm cells of Piaractus mesopotamicus. Sperm were collected from the animals through abdominal massage, being hormonally induced with carp pituitary extract 12h before extrusion. Then the samples were diluted in Beltsville Thawing Solution (BTS) containing the penetrant cryoprotectant dimethylsulfoxide (DSMO) at 10% concentration (control) and in the other treatments were added the different concentrations of sugars. After 60 days, cell movement analysis (total and progressive motility, DAP, DCL, DSL, VAP, VCL, VSL, STR, LIN, WOB, ALH and BCF) were performed by Computer Assisted Semen Analysis (CASA) And analysis of cell structures: DNA integrity, membrane integrity, mitochondrial functionality, membrane fluidity and reactive oxygen species (ROS), through flow cytometry. The Shapiro - Wilk normality test was performed, with subsequent analysis of variance using the Kriskal Wallis test, because the data did not behave in a parametric manner. The evaluations of total motility and motility period were better when associated with 100 mM raffinose at 10% DMSO (P <0.05). The lateral displacement of the head (ALH) obtained a good result when using the association of 10% DMSO with 100 mM lactose, 150 mM sucrose and 150 mM raffinose, showing better (P <0.05) than the treatment without Addition of lactose (0 mM). In conclusion, considering the kinetic parameters essential for sperm cryopreservation, the results of the motility and total motility period evaluations presented their best rates in the treatment containing 100 mM raffinose associated with 10% DMSO.Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESporUniversidade Federal de PelotasPrograma de Pós-Graduação em VeterináriaUFPelBrasilFaculdade de VeterináriaCNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIAVeterináriaPacuPeixesCriopreservação espermáticaSperm cryopreservationDMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de PacuAssociation between DMSO and sugars in the sperm cryopreservation of Pacuinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da UFPel - Guaiacainstname:Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)instacron:UFPELTEXTdissertacao_diego_martins_pires.pdf.txtdissertacao_diego_martins_pires.pdf.txtExtracted texttext/plain86679http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/6/dissertacao_diego_martins_pires.pdf.txte1d714a0383b8c50c782b16a8f7fe216MD56open accessTHUMBNAILdissertacao_diego_martins_pires.pdf.jpgdissertacao_diego_martins_pires.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1199http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/7/dissertacao_diego_martins_pires.pdf.jpgab47fb1c193518ca9866c405f6e57880MD57open accessORIGINALdissertacao_diego_martins_pires.pdfdissertacao_diego_martins_pires.pdfapplication/pdf632121http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/1/dissertacao_diego_martins_pires.pdfc195746f8c704878737f019a045858f6MD51open accessCC-LICENSElicense_urllicense_urltext/plain; charset=utf-849http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/2/license_url4afdbb8c545fd630ea7db775da747b2fMD52open accesslicense_textlicense_texttext/html; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/3/license_textd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD53open accesslicense_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-80http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/4/license_rdfd41d8cd98f00b204e9800998ecf8427eMD54open accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-81866http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/5/license.txt43cd690d6a359e86c1fe3d5b7cba0c9bMD55open accessprefix/46322023-07-13 04:35:37.32open accessoai:guaiaca.ufpel.edu.br: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ório InstitucionalPUBhttp://repositorio.ufpel.edu.br/oai/requestrippel@ufpel.edu.br || repositorio@ufpel.edu.br || aline.batista@ufpel.edu.bropendoar:2023-07-13T07:35:37Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca - Universidade Federal de Pelotas (UFPEL)false |
dc.title.pt_BR.fl_str_mv |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
dc.title.alternative.pt_BR.fl_str_mv |
Association between DMSO and sugars in the sperm cryopreservation of Pacu |
title |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
spellingShingle |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu Pires, Diego Martins CNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIA Veterinária Pacu Peixes Criopreservação espermática Sperm cryopreservation |
title_short |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
title_full |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
title_fullStr |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
title_full_unstemmed |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
title_sort |
DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu |
author |
Pires, Diego Martins |
author_facet |
Pires, Diego Martins |
author_role |
author |
dc.contributor.authorLattes.pt_BR.fl_str_mv |
http://lattes.cnpq.br/7999462492853863 |
dc.contributor.advisorLattes.pt_BR.fl_str_mv |
http://lattes.cnpq.br/8041711996066835 |
dc.contributor.advisor-co1.fl_str_mv |
Corcini, Carine Dahl |
dc.contributor.advisor-co1Lattes.fl_str_mv |
http://lattes.cnpq.br/7340307576119827 |
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv |
Varela Junior, Antonio Sergio |
dc.contributor.author.fl_str_mv |
Pires, Diego Martins |
contributor_str_mv |
Corcini, Carine Dahl Varela Junior, Antonio Sergio |
dc.subject.cnpq.fl_str_mv |
CNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIA |
topic |
CNPQ::CIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIA Veterinária Pacu Peixes Criopreservação espermática Sperm cryopreservation |
dc.subject.por.fl_str_mv |
Veterinária Pacu Peixes Criopreservação espermática Sperm cryopreservation |
description |
A técnica de criopreservação espermática é simples e possibilita a criação de bancos de germoplasma, permitindo a conservação da diversidade genética e reposição de espécies ameaçadas de extinção. No entanto, durante o processo de criopreservação as células congeladas podem ser danificadas pela toxicidade de crioprotetores, pelos cristais de gelo, resultando em danos ao DNA, mitocôndria, membrana e interferindo na cinética dos espermatozoides. O objetivo do trabalho é avaliar o efeito da associação de DMSO 10% aos açucares trealose, rafinose, sacarose e lactose nas concentrações de 50 mM, 100 mM e 150 mM, sobre as células espermáticas de Piaractus mesopotamicus. Foi coletado esperma dos animais, através de massagem abdominal, sendo induzidos hormonalmente com extrato de hipófise de carpa 12h antes da extrusão. Em seguida, as amostras coletadas foram diluídas em Beltsville Thawing Solution (BTS), contendo o crioprotetor penetrante dimetilsulfóxido (DSMO) a concentração de 10% (controle) e nos demais tratamentos foram adicionados as diferentes concentrações dos açúcares. Após 60 dias, foram feitas análises de movimentação celular (motilidade total e progressiva, período de motilidade, DAP, DCL, DSL, VAP, VCL, VSL, STR, LIN, WOB, ALH e BCF) pelo Computer Assisted Semen Analysis (CASA) e análise das estruturas celulares: integridade de DNA, de membrana, funcionalidade mitocondrial, fluidez de membrana e espécies reativas de oxigênio (ROS), através de citometria de fluxo. Foi realizado o teste de normalidade de Shapiro – Wilk, com posterior analise de variância através do teste de Kruskal Wallis, devido os dados não se comportarem de forma paramétrica. As avaliações de motilidade total e período de motilidade se mostraram melhores quando associado 100 mM de rafinose ao DMSO 10% (P < 0.05). O deslocamento lateral da cabeça (ALH) obteve bom resultado quando utilizado a associação de DMSO 10% com 100 mM de lactose, 150 Mm de sacarose e 150 mM de rafinose, mostrando-se melhor (P < 0,05) que o tratamento sem adição de lactose (0 mM). Em conclusão, considerando os parâmetros cinéticos essenciais na criopreservação espermática, os resultados das avaliações de período de motilidade e motilidade total apresentaram suas melhores taxas no tratamento contendo rafinose 100 mM associado ao DMSO 10%. |
publishDate |
2017 |
dc.date.issued.fl_str_mv |
2017-02-16 |
dc.date.accessioned.fl_str_mv |
2019-07-29T17:39:07Z |
dc.date.available.fl_str_mv |
2019-07-29T17:39:07Z |
dc.type.status.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
dc.type.driver.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/masterThesis |
format |
masterThesis |
status_str |
publishedVersion |
dc.identifier.citation.fl_str_mv |
PIRES, Diego Martins. DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu. 2017. 44f. Dissertação (Mestrado) - Programa de Pós-Graduação em Veterinária, Faculdade de Veterinária, Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, 2017. |
dc.identifier.uri.fl_str_mv |
http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/4632 |
identifier_str_mv |
PIRES, Diego Martins. DMSO associado com açúcares na criopreservação espermática de Pacu. 2017. 44f. Dissertação (Mestrado) - Programa de Pós-Graduação em Veterinária, Faculdade de Veterinária, Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, 2017. |
url |
http://guaiaca.ufpel.edu.br/handle/prefix/4632 |
dc.language.iso.fl_str_mv |
por |
language |
por |
dc.rights.driver.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/openAccess |
eu_rights_str_mv |
openAccess |
dc.publisher.none.fl_str_mv |
Universidade Federal de Pelotas |
dc.publisher.program.fl_str_mv |
Programa de Pós-Graduação em Veterinária |
dc.publisher.initials.fl_str_mv |
UFPel |
dc.publisher.country.fl_str_mv |
Brasil |
dc.publisher.department.fl_str_mv |
Faculdade de Veterinária |
publisher.none.fl_str_mv |
Universidade Federal de Pelotas |
dc.source.none.fl_str_mv |
reponame:Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca instname:Universidade Federal de Pelotas (UFPEL) instacron:UFPEL |
instname_str |
Universidade Federal de Pelotas (UFPEL) |
instacron_str |
UFPEL |
institution |
UFPEL |
reponame_str |
Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca |
collection |
Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca |
bitstream.url.fl_str_mv |
http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/6/dissertacao_diego_martins_pires.pdf.txt http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/7/dissertacao_diego_martins_pires.pdf.jpg http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/1/dissertacao_diego_martins_pires.pdf http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/2/license_url http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/3/license_text http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/4/license_rdf http://guaiaca.ufpel.edu.br/xmlui/bitstream/prefix/4632/5/license.txt |
bitstream.checksum.fl_str_mv |
e1d714a0383b8c50c782b16a8f7fe216 ab47fb1c193518ca9866c405f6e57880 c195746f8c704878737f019a045858f6 4afdbb8c545fd630ea7db775da747b2f d41d8cd98f00b204e9800998ecf8427e d41d8cd98f00b204e9800998ecf8427e 43cd690d6a359e86c1fe3d5b7cba0c9b |
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv |
MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 |
repository.name.fl_str_mv |
Repositório Institucional da UFPel - Guaiaca - Universidade Federal de Pelotas (UFPEL) |
repository.mail.fl_str_mv |
rippel@ufpel.edu.br || repositorio@ufpel.edu.br || aline.batista@ufpel.edu.br |
_version_ |
1801846938512916480 |