Bionomia de Culicidae e investigação natural por Flavivirus em uma paisagem do bioma Mata Atlântica do Estado do Rio de Janeiro, Brasil

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Bastos, Amanda Queiroz
Data de Publicação: 2021
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9169
Resumo: Os mosquitos, família Culicidae, possuem 3588 espécies válidas divididas em duas subfamílias: Anophelinae e Culicinae. Ambas possuem espécies de importância epidemiológica. O inventário faunístico de mosquitos em áreas de ambiente natural é de considerável importância em estudos ecológicos. As populações naturais de animais em uma determinada área biogeográfica distribuem-se em comunidades sujeitas a constantes flutuações em resposta ao ambiente. Durante os processos de ação antrópica, seja nos possíveis períodos de recuperação da cobertura vegetal, o conhecimento da biodiversidade das comunidades de mosquitos em ambiente de Mata Atlântica é de relevante importância. Sendo que, esse conhecimento é útil para avaliar as possíveis mudanças de comportamentos e adaptações no padrão de atividades dos mosquitos considerados, até então, como de hábito preferencialmente silvestre. As amostragens foram provenientes de coletas realizadas em dois fragmentos de Mata Atlântica do estado do Rio de Janeiro no município de Nova Iguaçu na Associação de Taifeiros da Armada (ATA) e no sítio Boa Esperança, a duração das coletas em ambos locais foi de um ano. O presente estudo teve como propósito avaliar a riqueza, diversidade, equitabilidade e preferência dos imaturos e dos adultos em ambos fragmentos e a influência dos fatores climáticos (temperatura, umidade relativa do ar e pluviosidade) na abundância dos mosquitos. Nas duas áreas de estudos foram realizadas visitas mensais e quinzenais, amostragens sistemáticas e padronizadas utilizando sugador manual para coleta das larvas. Na ATA os criadouros naturais pesquisados foram os colmos de bambu, já no sítio Boa Esperança foram distribuídas aleatoriamente armadilhas de ovitrampas e monitorados os criadouros naturais bambu e bromeliáceas, sendo os espécimes adultos foram capturados com auxílio de armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2. Parte dos espécimes provenientes dos ovos coletados foram utilizados para realizar a análise de possível infecção natural por Flavivirus (Zika e Febre Amarela). Durante o período de amostragem na ATA foram coletadas 3170 larvas em bambu perfurado em oito colmos de cinco plantas, desse total 688 espécimes chegaram ao estágio adulto, distribuídos em 10 gêneros e 16 espécies. A riqueza dos imaturos coletados na ATA foi de 16 espécies, sendo que a diversidade registrada foi de 1,10 e a equitabilidade de Shannon de 0,57. Na área amostral do sítio Boa Esperança foram coletadas 5514 larvas e 1322 chegaram ao estágio adulto sendo: 949 no recipiente plástico, 80 na bromélia e 293 no bambu. Dos 5818 ovos coletados 3941 eclodiram, e 3807 chegaram à fase de pupa e 2370 chegaram à fase adulta. As espécies provenientes dos ovos com maior abundância foram Aedes albopictus com 61% e Haemagogus leucocelaenus com 34%. Na armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2, foram capturados 2621 espécimes de mosquitos destes os gêneros com a maior abundância foram: Culex (84,9%), Wyeomyia (5,3%), Aedes (3,5%) e Limatus (3,1%). Um total de 1229 espécimes de mosquitos: Ae. albopictus (651), Hg. leucocelaenus (565) e Hg. janthinomys (13) provenientes de ovos coletados no sítio Boa Esperança foram submetidos ao RT-PCR para detecção de Flavivirus. O criadouro bambu apresentou a maior diversidade e equitabilidade, enquanto o recipiente plástico apresentou os menores índices. No entanto, imaturos encontrados no recipiente plástico apresentaram maior riqueza e no bambu a menor. Os adultos capturados no ponto amostral 5 do sítio Boa Esperança apresentaram os maiores índices de diversidade, equitabilidade e riqueza. Foram encontradas evidências por meio da reação em cadeia da polimerase (RT-PCR) sequências parciais de vírus Zika em amostras de Hg. leucocelaenus, espécie importante no ponto de vista epidemiológico na transmissão do vírus amarílico.
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spelling Bastos, Amanda QueirozAlencar, Jeronimo Augusto Fonseca005.893.247-05http://lattes.cnpq.br/6783152813274111Mallet, Jacenir Reis dos Santos710.008.957-34Pereira, Ronaldo Figueiró PortellaSantana, Hélcio Reinaldo GilSilva, Julia dos SantosMüller, Gerson AzulimSouza, Nataly Araújo094.479.3074-00http://lattes.cnpq.br/86750659100875762023-12-21T18:35:55Z2023-12-21T18:35:55Z2021-10-29BASTOS, Amanda Queiroz. Bionomia de Culicidae e investigação natural por Flavivirus em uma paisagem do bioma Mata Atlântica do Estado do Rio de Janeiro, Brasil. 2021. 122 f. Tese (Doutorado em Biologia Animal) - Instituto de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2021.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9169Os mosquitos, família Culicidae, possuem 3588 espécies válidas divididas em duas subfamílias: Anophelinae e Culicinae. Ambas possuem espécies de importância epidemiológica. O inventário faunístico de mosquitos em áreas de ambiente natural é de considerável importância em estudos ecológicos. As populações naturais de animais em uma determinada área biogeográfica distribuem-se em comunidades sujeitas a constantes flutuações em resposta ao ambiente. Durante os processos de ação antrópica, seja nos possíveis períodos de recuperação da cobertura vegetal, o conhecimento da biodiversidade das comunidades de mosquitos em ambiente de Mata Atlântica é de relevante importância. Sendo que, esse conhecimento é útil para avaliar as possíveis mudanças de comportamentos e adaptações no padrão de atividades dos mosquitos considerados, até então, como de hábito preferencialmente silvestre. As amostragens foram provenientes de coletas realizadas em dois fragmentos de Mata Atlântica do estado do Rio de Janeiro no município de Nova Iguaçu na Associação de Taifeiros da Armada (ATA) e no sítio Boa Esperança, a duração das coletas em ambos locais foi de um ano. O presente estudo teve como propósito avaliar a riqueza, diversidade, equitabilidade e preferência dos imaturos e dos adultos em ambos fragmentos e a influência dos fatores climáticos (temperatura, umidade relativa do ar e pluviosidade) na abundância dos mosquitos. Nas duas áreas de estudos foram realizadas visitas mensais e quinzenais, amostragens sistemáticas e padronizadas utilizando sugador manual para coleta das larvas. Na ATA os criadouros naturais pesquisados foram os colmos de bambu, já no sítio Boa Esperança foram distribuídas aleatoriamente armadilhas de ovitrampas e monitorados os criadouros naturais bambu e bromeliáceas, sendo os espécimes adultos foram capturados com auxílio de armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2. Parte dos espécimes provenientes dos ovos coletados foram utilizados para realizar a análise de possível infecção natural por Flavivirus (Zika e Febre Amarela). Durante o período de amostragem na ATA foram coletadas 3170 larvas em bambu perfurado em oito colmos de cinco plantas, desse total 688 espécimes chegaram ao estágio adulto, distribuídos em 10 gêneros e 16 espécies. A riqueza dos imaturos coletados na ATA foi de 16 espécies, sendo que a diversidade registrada foi de 1,10 e a equitabilidade de Shannon de 0,57. Na área amostral do sítio Boa Esperança foram coletadas 5514 larvas e 1322 chegaram ao estágio adulto sendo: 949 no recipiente plástico, 80 na bromélia e 293 no bambu. Dos 5818 ovos coletados 3941 eclodiram, e 3807 chegaram à fase de pupa e 2370 chegaram à fase adulta. As espécies provenientes dos ovos com maior abundância foram Aedes albopictus com 61% e Haemagogus leucocelaenus com 34%. Na armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2, foram capturados 2621 espécimes de mosquitos destes os gêneros com a maior abundância foram: Culex (84,9%), Wyeomyia (5,3%), Aedes (3,5%) e Limatus (3,1%). Um total de 1229 espécimes de mosquitos: Ae. albopictus (651), Hg. leucocelaenus (565) e Hg. janthinomys (13) provenientes de ovos coletados no sítio Boa Esperança foram submetidos ao RT-PCR para detecção de Flavivirus. O criadouro bambu apresentou a maior diversidade e equitabilidade, enquanto o recipiente plástico apresentou os menores índices. No entanto, imaturos encontrados no recipiente plástico apresentaram maior riqueza e no bambu a menor. Os adultos capturados no ponto amostral 5 do sítio Boa Esperança apresentaram os maiores índices de diversidade, equitabilidade e riqueza. Foram encontradas evidências por meio da reação em cadeia da polimerase (RT-PCR) sequências parciais de vírus Zika em amostras de Hg. leucocelaenus, espécie importante no ponto de vista epidemiológico na transmissão do vírus amarílico.CAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível SuperiorThe mosquitoes, family Culicidae, have 3,588 species classified in two subfamilies: Anophelinae and Culicinae. Both have species of epidemiological importance. The fauna inventory of mosquitoes in areas of natural environment is condiderably important in ecological studies. The natural populations of animals in a given biogeographic area distributed in communities subject to constant fluctuations in response to the environment. During the processes of anthropic action or in the possible periods of recovery of the vegetation cover, knowledge of the biodiversity of mosquito communities in na Atlantic Forest environment is of relevant importance. Since this knowledge is useful to evaluate possible changes in behavior and adaptations in the pattern of activities of mosquitoes considered to be, until then, of wild habit, preferably. The sampling resulted from collections made in two fragments of Atlantic Forest in the state of Rio de Janeiro in municipality of Nova Iguaçu in the Associação de Taifeiros da Armada (ATA) and in Boa Esperança site. The duration of collections in both locations was one year. The present study aimed to assess the richness, diversity, equitability and preference of immatures and adults in both fragments and the influence of climatic factors (temperature, relative humidity and rainfall) on the abundance of mosquitoes. In the two study areas, biweekly visits, sytematic and standardized sampling were performed using a manual sucker to collect the larvae. In ATA, the natural breeding sites surveyed were bamboo stalks, while in the Boa Esperança site, ovitraps were randomly distributed and the natural bamboo and bromeliad breeding sites were monitored. Adult spcimens were captured using CDC light traps with CO2 attractiveness, part of the specimens from the collected eggs were used to perform the analysis of possible natural infection by flavivirus (Zika, yellow fever). During the sampling period in the ATA, 3170 larvae were collected in perforated bamboo in eight stems of Five plants, of which 688 specimens reached the adult stage, distributed in 10 genera and 16 species. The richness of the immatures collected in the ATA was 16 species, with a recorded diversity of 1.10 and Shannon’s equitability of 0.57. In the sample area of the Boa Esperança site, 5514 larvae were collected and 1322 reached the adult stage: 949 in the plastic container, 80 in the bromeliad and 293 in the bamboo. Of the 5818 eggs collected, 3941 hatched, and 3807 reached the pupal stage and 2370 reached the adult stage. The species from the eggs with the greatest abundance were Aedes albopictus with 61% and Haemagogus leucocelaenus 34%. In the CDC light trap with CO2 attractiveness, 2621 specimens of mosquitoes of these genera were: Culex (84,9%), Wyeomyia (5,3%), Aedes (3,5%) and Limatus (3,1%). A total of 1,229 specimens of mosquitoes: Ae. albopictus (651), Hg. leucocelaenus (565) and Hg. janthinomys (13) from eggs collected at the Boa Esperança site were submitted to RT-PCR to detect Flavivirus. The bamboo breeding area showed the greatest diversity and fairness, however, the plastic container had the lowest indexes. Regarding the richness of the immatures found, it was showed greater richness in the bamboo. The adults captured at sample point 5 of the Boa Esperança site had the highest levels of diversity, equatability and richness. Evidence was found through the polymerase chain reaction (RT-PCR), partial sequences of Zika vírus in sample of Hg. leucocelaenus, an important species from the epidemiological point of view in the transmission of the yellow fever vírus.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Biologia AnimalUFRRJBrasilInstituto de Ciências Biológicas e da Saúdemosquitosdiversidadeinfecção naturalZikamosquitoesdiversitynatural infectionZoologiaParasitologiaBiologia GeralBionomia de Culicidae e investigação natural por Flavivirus em uma paisagem do bioma Mata Atlântica do Estado do Rio de Janeiro, BrasilBionomy of culicidae and natural investigation for Flavivirus in a landscape of the Atlantic Forest biome in the state of Rio de Janeiro, Brazilinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisABREU, F.V.S.; RIBEIRO, I.P.; FERREIRA-DE-BRITO, A.; SANTOS, A.A.C.D.; MIRANDA, R.M.; BONELY, I.S.; NEVES, M.S.A.S.; BERSOT, M.I., SANTOS, T.P.D.; GOMES, M.Q.; SILVA, J.L.D.; ROMANO, A.P.M.; CARVALHO, R.G.; DITO, R.F.D.C.; RIBEIRO, M.S.; LAPERRIÈRE, R.D.C.; FONSECA, E.O.L.; FALQUETO, A.; PAUPY, C.; FAILLOUX, A.B.; MOUTAILLER, S.; CASTRO, M.G.; GÓMEZ, M.M.; MOTTA, M.A.; BONALDO, M.C.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Haemagogus leucocelaenus and Haemagogus janthinomys are the primaryv ectors in the major yellow fever outbreak in Brazil, 2016-2018. Emerging Microbes Infections, v. 8, p. 218–231, 2019. ALENCAR, J.; MARCONDES, C.B.; SERRA-FREIRE, N.M.; LOROSA, E.S.; PACHECO, J.B.; GUIMARÃES, A.É. Feeding patterns of Haemagogus capricornii and Hg. leucocelaenus (Diptera: Culicidae) in two Brazilian states (Rio de Janeiro and Goiás). J. Med. Entomol., v. 45, p. 873–876, 2008a. ALENCAR, J.; DE ALMEIDA, H.M.; MARCONDES, C.B.; GUIMARÃES, A.É. Effect of multiple immersions on eggs and development of immature forms of Haemagogus janthinomys from south-eastern Brazil (Diptera: Culicidae). Entomol. News, v. 119, p. 239–244, 2008b. ALENCAR, J.; DEMELLO, C.F.; GIL-SANTANA, H.R.; GUIMARÃES, A.É.; DE ALMEIDA, S.A.; GLEISER, R.M. Vertical oviposition activity of mosquitoes in the Atlantic Forest of Brazil with emphasis on the sylvan vector, Haemagogus leucocelaenus (Diptera: Culicidae). J. Vector Ecol., v. 41, p. 18–26, 2016. BALEOTTI, F.G.; MORELI, M.L.; FIGUEIREDO, L.T.M. Brazilian Flavivirus Phylogeny Based on NS5. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, v. 98, p. 379–382, 2003. BRASIL, M. DA S. Boletim Epidemiológico 13: Monitoramento dos casos de arboviroses urbanas transmitidas pelo Aedes (dengue, chikungunya e Zika) até a Semana Epidemiológica 12 de 2019; 2019; v. 50, pp. 1–18. Disponível em: https://portalarquivos2.saude.gov.br/images/pdf/2019/abril/30/2019-013-Monitoramentodos- casos-de-arboviroses-urbanas-transmitidas-pelo-Aedes-publicacao.pdf. Acesso em: 2021. BUENO, M.G.; MARTINEZ, N.; ABDALLA, L.; DUARTE DOS SANTOS, C.N.; CHAME, M. Animals in the Zika Virus Life Cycle: What to Expect from Megadiverse Latin American Countries. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 10, p. 1–13, 2016. CALVET, G.; AGUIAR, R.S.; MELO, A.S.O.; SAMPAIO, S.A.; DE FILIPPIS, I.; FABRI, A.; ARAUJO, E.S.M.; DE SEQUEIRA, P.C.; DE MENDONÇA, M.C.L.; DE OLIVEIRA, L.; et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in a case study. Lancet Infect. Dis., v. 16, p. 653–660, 2016. CATENACCI, L.S.; NUNES-NETO, J.; DEEM, S.L.; PALMER, J.L.; TRAVASSOS-DAROSA, E.S.; TELLO, J.S. Diversity patterns of hematophagous insects in Atlantic forest fragments and human-modified areas of southern Bahia, Brazil. J. Vector Ecol., v.43, p. 293–304, 2018. CAMPOS, G.S.; BANDEIRA, A.C.; SARDI, S.I. Zika Virus Outbreak, Bahia, Brazil. Emerg. Infect. Dis., v. 21, p. 1885–1886, 2015. CARDOSO, J.d.C; CORSEUIL, E.; BARATA, J.M.S. Culicinae (Diptera, Culicidae) ocorrentes no Estado do Rio Grande do Sul, Brasil. Rev. Bras. Entomol., 2005, v. 49, p. 275–287, 2005. CARDOSO, J.D.C.; DE ALMEIDA, M.A.B.; DOS SANTOS, E.; DA FONSECA, D.F.; SALLUM, M.A.M.; NOLL, C.A.; MONTEIRO, H.A.D.O.; CRUZ, A.C.R.; CARVALHO, V.L.; PINTO, E.V.; et al. Yellow Fever Virus in Haemagogus leucocelaenus and Aedes serratus Mosquitoes, Southern Brazil, 2008. Emerg. Infect. Dis., v. 16, p. 1918–1924, 2010. CHANG, G.J.; CROPP, B.C.; KINNEY, R.M.; TRENT, D.W.; GUBLER, D.J. Nucleotide sequence variation of the envelope protein gene identifies two distinct genotypes of yellow fever virus. J. Virol., v. 69, p. 5773–5780, 1995. CIOTA, A.T.; BIALOSUKNIA, S.M.; EHRBAR, D.J.; KRAMER, L.D. Vertical Transmission of Zika Virus by Aedes aegypti and Ae. Albopictus Mosquitoes. Emerg. Infect. Dis., v. 23, p. 880–882, 2017. CONSOLI, R.AG.B.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Principais mosquitos de importância sanitária no Brasil. 1st ed. Rio de Janeiro: Fiocruz; 1994. COSTA-DA-SILVA, A.L.; IOSHINO, R.S.; DE ARAÚJO, H.R.C.; KOJIN, B.B.; DE ANDRADE ZANOTTO, P.M.; OLIVEIRA, D.B.L.; MELO, S.R.; DURIGON, E.L.; CAPURRO, M.L. Laboratory strains of Aedes aegypti are competent to Brazilian Zika virus. PLoS One, v. 12, p. 1–13, 2017. CHOUIN-CARNEIRO, T.; VEGA-RUA, A.; VAZEILLE, M.; YEBAKIMA, A.; GIROD, R.; GOINDIN, D.; DUPONT-ROUZEYROL, M.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R.; FAILLOUX, A.B. Differential Susceptibilities of Aedes aegypti and Aedes albopictus from the Americas to Zika Virus. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 10, p. 1–11, 2016. DA COSTA, C.F.; DA SILVA, A.V.; NASCIMENTO, V.A.D.; DE SOUZA, V.C.; MONTEIRO, D.C.D.S.; TERRAZAS, W.C.M.; DOS PASSOS, R.A.; NASCIMENTO, S.; LIMA, J.B.P.; NAVECA, F.G. Evidence of vertical transmission of Zika virus in fieldcollected eggs of in the Brazilian Amazon. PLoS Negl.Trop. Dis., v. 12, p. 1–12, 2018. DI LUCA, M.; SEVERINI, F.; TOMA, L.; BOCCOLINI, D.; ROMI, R.; REMOLI, M.E.; SABBATUCCI, M.; RIZZO, C.; VENTURI, G.; REZZA, G.; et al. Experimental studies of susceptibility of Italian Aedes albopictus to Zika virus. Euro Surveill., v. 21, 2016. DU, S.; LIU, Y.; LIU, J.; ZHAO, J.; CHAMPAGNE, C.; TONG, L.; ZHANG, R.; ZHANG, F.; QIN, C.F.; MA, P.; et al. Aedes mosquitoes acquire and transmit Zika virus by breeding in contaminated aquatic environments. Nat. Commun., v. 10, p. 1–11, 2019. EPELBOIN, Y.; TALAGA, S.; EPELBOIN, L.; DUSFOUR, I. Zika virus: An updated review of competent or naturally infected mosquitoes. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 11, p.1–22, 2017. DOS SANTOS, B.M.C.; COELHO, F.C.; ARMSTRONG, M.; SARACENI, V.; LEMOS, C. Zika: an ongoing threat to women and infants. Cad. Saúde Pública, v. 34, 2018. FARAJI, A.; EGIZI, A.; FONSECA, D.M.; UNLU, I.; CREPEAU, T.; HEALY, S.P.; GAUGLER, R. Comparative Host Feeding Patterns of the Asian Tiger Mosquito, Aedes albopictus, in Urban and Suburban Northeastern USA and Implications for Disease Transmission. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 8, 2014. FAVORETTO, S.; ARAÚJO, D.; OLIVEIRA, D.; DUARTE, N.; MESQUITA, F.; ZANOTTO, P.; DURIGON, E. First detection of Zika virus in neotropical primates in Brazil: A possible new reservoir. BioRxiv, 2016. FERNANDES, R.S.; BERSOT, M.I.; CASTRO, M.G.; TELLERIA, E.L.; FERREIRA-DEBRITO, A.; RAPHAEL, L.M.; BONALDO, M.C.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Low vector competence in sylvatic mosquitoes limits Zika virus to initiate an enzootic cycle in South America. Sci. Rep., v. 9, p. 1–7, 2019. FERREIRA-DE-BRITO, A.; RIBEIRO, I.P.; MIRANDA, R.M.; FERNANDES, R.S.; CAMPOS, S.S.; DA SILVA, K.A.B.; DE CASTRO, M.G.; BONALDO, M.C.; BRASIL, P.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. First detection of natural infection of Aedes aegypti with Zika virus in Brazil and throughout South America. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, v. 111, p. 655–658, 2016. FIGUEIREDO, L.T.M. The Brazilian flaviviruses. Microbes Infect., v. 2, p. 1643–1649, 2000. FRANCO, O. História da Febre Amarela no Brasil. Ministério da Saúde, Dep. Nac. Endem. Rurais., v. 1, p.1–8. 1969. INSTITUTO NACIONAL DE METEOROLOGIA–INMET. Disponível em: https://portal.inmet.gov.br/ Acesso em: 2021. GRARD, G.; CARON, M.; MOMBO, I.M.; NKOGHE, D.; MBOUI ONDO, S.; JIOLLE, D.; FONTENILLE, D.; PAUPY, C.; LEROY, E.M. Zika Virus in Gabon (Central Africa) - 2007: A New Threat from Aedes albopictus? PLoSNegl. Trop. Dis., v. 8, p. 1–6, 2014. JOHNSON, B.K.; CHANAS, A.C.; SHOCKLEY, P.; SQUIRES, E.J.; GARDNER, P.; WALLACE, C.; SIMPSON, D.I.H.; BOWEN, E.T.W.; PLATT, G.S.; WAY, H.; et al. Arbovirus isolations from, and serological studies on, wild and domestic vertebrates from Kano Plain, kenya. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., v. 71, p. 512–517, 1977. JOHNSON, B.W.; CHAMBERS, T.V.; CRABTREE, M.B.; FILIPPIS, A.M.B.; VILARINHOS, P.T.R.; RESENDE, M.C.; MACORIS, M. de L.G.; MILLER, B.R. Vector competence of Brazilian Aedes aegypti and Ae. albopictus for a Brazilian yellow fever virus isolate. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., v. 96, p. 611–613, 2002. LEROY, E.M.; NKOGHE, D.; OLLOMO, B.; NZE-NKOGUE, C.; BECQUART, P.; GRARD, G.; POURRUT, X.; CHARREL, R.; MOUREAU, G.; NDJOYI-MBIGUINO, A.; et al. Concurrent chikungunya and dengue virus infections during simultaneous outbreaks, Gabon, 2007. Emerg. Infect. Dis., v. 15, p. 591–593, 2009. LIU, Z.; ZHANG, Z.; LAI, Z.; ZHOU, T.; JIA, Z.; GU, J.; WU, K.; CHEN, X.G. Temperature Increase Enhances Aedes albopictus Competence to Transmit Dengue Virus. Front. Microbiol., v. 8, p. 1–7, 2017. LOURENÇO DE OLIVEIRA, R.; VAZEILLE, M.; DE FILIPPIS, A.M.B.; FAILLOUX, A.B. Large genetic differentiation and low variation in vector competence for dengue and yellow fever viruses of Aedes albopictus from Brazil, the United States, and the Cayman Islands. Am. J. Trop. Med. Hyg., v. 69, p. 105–114, 2003. MACIEL-DE-FREITAS, R.; NETO, R.B.; GONÇALVES, J.M.; Codeço, C.T.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Movement of dengue vectors between the human modified environment and an urban forest in Rio de Janeiro. J. Med. Entomol., v. 43, p. 1112–1120, 2006. MARCONDES, C.B.; ALENCAR, J. Revisão de mosquitos Haemagogus Williston (Diptera: Culicidae) do Brasil. Rev. Biomed. v. 21, p. 221–238, 2010. MILLER, B.R.; MITCHELL, C.J.; BALLINGER, M.E. Replication, tissue tropisms and transmission of yellow fever virus in Aedes albopictus. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. v. 83, p. 252–255, 1989. MITCHELL, C.J.; MILLER, B.R.; GUBLER, D.J. Vector competence of Aedes albopictus from Houston, Texas, for dengue serotypes 1 to 4, yellow fever and Ross River viruses. J. Am. Mosq. Control Assoc., v. 3, p. 460–465, 1987. MLAKAR, J.; KORVA, M.; TUL, N.; POPOVIC, M.; POLJSAK-PRIJATELJ, M.; MRAZ, J.; KOLENC, M.; RESMAN RUS, K.; VESNAVER VIPOTNIK, T.; FABJAN, VODUSEK, V.; et al. Zika Virus Associated with Microcephaly. N. Engl. J. Med., v. 374, p. 951–958, 2016. MOREIRA-SOTO, A.; CARNEIRO, I. DE O.; FISCHER, C.; FELDMANN, M.; KÜMMERER, B.M.; SILVA, N.S.; SANTOS, U.G.; SOUZA, B.F. de C.D.; LIBORIO, F. de A.; VALENÇA-MONTENEGRO, M.M.; et al. Limited Evidence for Infection of Urban and Peri-urban Nonhuman Primates with Zika and Chikungunya Viruses in Brazil. MSphere, v. 3, p. 1–10, 2018. NIEBYLSKI, M.L.; CRAIG, G.B.Jr. Dispersal and survival of Aedes albopictus at a scrap tire yard in Missouri. J Am Mosq Control Assoc, v. 10, p. 339–343, 1994. OTTO, T.D.; VASCONCELLOS, E.A.; GOMES, L.H.F.; MOREIRA, A.S.; DEGRAVE, W.M.; MENDONÇA-LIMA, L.; ALVES-FERREIRA, M. ChromaPipe: a pipeline for analysis, quality control and management for a DNA sequencing facility. Genet. Mol. Res., v. 7, p. 861–871, 2008. PATEL, P.; LANDT, O.; KAISER, M.; FAYE, O.; KOPPE, T.; LASS, U.; SALL, A.A.; NIEDRIG, M. Development of one-step quantitative reverse transcription PCR for the rapid detection of flaviviruses. Virol. J., v. 10, 2013. PAUVOLID-CORRÊA, A.; KENNEY, J.L.; COUTO-LIMA, D.; CAMPOS, Z.M.S.; SCHATZMAYR, H.G.; NOGUEIRA, R.M.R.; BRAULT, A.C.; KOMAR, N. Ilheus Virus Isolation in the Pantanal, West-Central Brazil. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 7, 2013. PAUVOLID-CORRÊA, A.; CAMPOS, Z.; JULIANO, R.; VELEZ, J.; NOGUEIRA, R.M.R.; KOMAR, N. Serological Evidence of Widespread Circulation of West Nile Virus and Other Flaviviruses in Equines of the Pantanal, Brazil. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 8, 2014. REINERT, J.F. List of abbreviations for currently valid generic-level taxa in family Culicidae (Diptera). J. Eur. Mosq. Control Assoc., v. 27, p. 68–76, 2009. RICHARDS, S.L.; PONNUSAMY, L.; UNNASCH, T.R.; HASSAN, H.K.; APPERSON, C.S. Host-feeding patterns of Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) in relation to availability of human and domestic animals in suburban landscapes of central North Carolina. J. Med. Entomol., v. 43, p. 543–551, 2006. SES Informe Epidemiológico 001/2018: Monitoramento das Emergências em Saúde Pública (Febre Amarela) 04 de janeiro de 2018; pp. 1-6. Disponível em: http://www.riocomsaude.rj.gov.br/Publico/MostrarArquivo.aspx?C=%2Bp77vqe5mOs%3 D. Acesso em: 2021. SILVA, N.I.O.; SACCHETTO, L.; DE REZENDE, I.M.; TRINDADE, G.S.; LABEAUD, A.D.; DE THOISY, B.; DRUMOND, B.P. Recent sylvatic yellow fever virus transmission in Brazil: the news from an old disease. Virol. J., v. 17, p. 1–12, 2020. SILVER, J.B. Mosquito ecology: field sampling methods. 3rd ed. New York: Springer, 2008. SOPER, F.L.; PENNA, H.; CARDOSO, E.; SERAFIM, J.; FROBISHER, M.Jr.; PINHEIRO, J. Yellow fever without Aedes aegypti. Study of a rural epidemic in the Valle do Chanaan, Espirito Santo, Brazil, 1932. Am. J. Epidemiol., v. 18, p. 555–587, 1933. SCHULER-FACCINI, L.; RIBEIRO, E.M.; FEITOSA, I.M.L.; HOROVITZ, D.D.G.; CAVALCANTI, D.P.; PESSOA, A.; DORIQUI, M.J.R.; NERI, J.I.; DE PINA NETO, J.M.; WANDERLEY, H.Y.C.; et al. Possible Association Between Zika Virus Infection and Microcephaly — Brazil, 2015. MMWR. Morb. Mortal. Wkly. Rep., p. 59–62, 2016. TERZIAN, A.C.B.; AUGUSTE, A.J.; VEDOVELLO, D.; FERREIRA, M.U.; DA SILVANUNES, M.; SPERANÇA, M.A.; SUZUKI, R.B.; JUNCANSEN, C.; ARAÚJO, J.P.JR., WEAVER, S.C.; et al. Isolation and characterization of Mayaro virus from a human in Acre, Brazil. Am. J. Trop. Med. Hyg., v. 92, p. 401–404, 2015. TERZIAN, A.C.B.; ZINI, N.; SACCHETTO, L.; ROCHA, R.F.; PARRA, M.C.P.; DEL SARTO, J.L.; DIAS, A.C.F.; COUTINHO, F.; RAYRA, J.; DA SILVA, R.A.; et al. Evidence of natural Zika virus infection in neotropical non-human primates in Brazil. Sci. Rep., v. 8, p. 1–15, 2018. WHO | Yellowfever – Brazil. Disponível em: http://www.who.int/csr/don/11-february-2019- yellow-fever-brazil/en/ Acesso em: 2021.https://tede.ufrrj.br/retrieve/70309/2021%20-%20Amanda%20Queiroz%20Bastos.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/5888Submitted by Jorge Silva (jorgelmsilva@ufrrj.br) on 2022-08-16T19:40:42Z No. of bitstreams: 1 2021 - Amanda Queiroz Bastos.pdf: 3012328 bytes, checksum: 27c9491acf7f0d897512ab857cdbd4f1 (MD5)Made available in DSpace on 2022-08-16T19:40:42Z (GMT). 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description Os mosquitos, família Culicidae, possuem 3588 espécies válidas divididas em duas subfamílias: Anophelinae e Culicinae. Ambas possuem espécies de importância epidemiológica. O inventário faunístico de mosquitos em áreas de ambiente natural é de considerável importância em estudos ecológicos. As populações naturais de animais em uma determinada área biogeográfica distribuem-se em comunidades sujeitas a constantes flutuações em resposta ao ambiente. Durante os processos de ação antrópica, seja nos possíveis períodos de recuperação da cobertura vegetal, o conhecimento da biodiversidade das comunidades de mosquitos em ambiente de Mata Atlântica é de relevante importância. Sendo que, esse conhecimento é útil para avaliar as possíveis mudanças de comportamentos e adaptações no padrão de atividades dos mosquitos considerados, até então, como de hábito preferencialmente silvestre. As amostragens foram provenientes de coletas realizadas em dois fragmentos de Mata Atlântica do estado do Rio de Janeiro no município de Nova Iguaçu na Associação de Taifeiros da Armada (ATA) e no sítio Boa Esperança, a duração das coletas em ambos locais foi de um ano. O presente estudo teve como propósito avaliar a riqueza, diversidade, equitabilidade e preferência dos imaturos e dos adultos em ambos fragmentos e a influência dos fatores climáticos (temperatura, umidade relativa do ar e pluviosidade) na abundância dos mosquitos. Nas duas áreas de estudos foram realizadas visitas mensais e quinzenais, amostragens sistemáticas e padronizadas utilizando sugador manual para coleta das larvas. Na ATA os criadouros naturais pesquisados foram os colmos de bambu, já no sítio Boa Esperança foram distribuídas aleatoriamente armadilhas de ovitrampas e monitorados os criadouros naturais bambu e bromeliáceas, sendo os espécimes adultos foram capturados com auxílio de armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2. Parte dos espécimes provenientes dos ovos coletados foram utilizados para realizar a análise de possível infecção natural por Flavivirus (Zika e Febre Amarela). Durante o período de amostragem na ATA foram coletadas 3170 larvas em bambu perfurado em oito colmos de cinco plantas, desse total 688 espécimes chegaram ao estágio adulto, distribuídos em 10 gêneros e 16 espécies. A riqueza dos imaturos coletados na ATA foi de 16 espécies, sendo que a diversidade registrada foi de 1,10 e a equitabilidade de Shannon de 0,57. Na área amostral do sítio Boa Esperança foram coletadas 5514 larvas e 1322 chegaram ao estágio adulto sendo: 949 no recipiente plástico, 80 na bromélia e 293 no bambu. Dos 5818 ovos coletados 3941 eclodiram, e 3807 chegaram à fase de pupa e 2370 chegaram à fase adulta. As espécies provenientes dos ovos com maior abundância foram Aedes albopictus com 61% e Haemagogus leucocelaenus com 34%. Na armadilha luminosa de CDC com atrativo de CO2, foram capturados 2621 espécimes de mosquitos destes os gêneros com a maior abundância foram: Culex (84,9%), Wyeomyia (5,3%), Aedes (3,5%) e Limatus (3,1%). Um total de 1229 espécimes de mosquitos: Ae. albopictus (651), Hg. leucocelaenus (565) e Hg. janthinomys (13) provenientes de ovos coletados no sítio Boa Esperança foram submetidos ao RT-PCR para detecção de Flavivirus. O criadouro bambu apresentou a maior diversidade e equitabilidade, enquanto o recipiente plástico apresentou os menores índices. No entanto, imaturos encontrados no recipiente plástico apresentaram maior riqueza e no bambu a menor. Os adultos capturados no ponto amostral 5 do sítio Boa Esperança apresentaram os maiores índices de diversidade, equitabilidade e riqueza. Foram encontradas evidências por meio da reação em cadeia da polimerase (RT-PCR) sequências parciais de vírus Zika em amostras de Hg. leucocelaenus, espécie importante no ponto de vista epidemiológico na transmissão do vírus amarílico.
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Effect of multiple immersions on eggs and development of immature forms of Haemagogus janthinomys from south-eastern Brazil (Diptera: Culicidae). Entomol. News, v. 119, p. 239–244, 2008b. ALENCAR, J.; DEMELLO, C.F.; GIL-SANTANA, H.R.; GUIMARÃES, A.É.; DE ALMEIDA, S.A.; GLEISER, R.M. Vertical oviposition activity of mosquitoes in the Atlantic Forest of Brazil with emphasis on the sylvan vector, Haemagogus leucocelaenus (Diptera: Culicidae). J. Vector Ecol., v. 41, p. 18–26, 2016. BALEOTTI, F.G.; MORELI, M.L.; FIGUEIREDO, L.T.M. Brazilian Flavivirus Phylogeny Based on NS5. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, v. 98, p. 379–382, 2003. BRASIL, M. DA S. Boletim Epidemiológico 13: Monitoramento dos casos de arboviroses urbanas transmitidas pelo Aedes (dengue, chikungunya e Zika) até a Semana Epidemiológica 12 de 2019; 2019; v. 50, pp. 1–18. Disponível em: https://portalarquivos2.saude.gov.br/images/pdf/2019/abril/30/2019-013-Monitoramentodos- casos-de-arboviroses-urbanas-transmitidas-pelo-Aedes-publicacao.pdf. Acesso em: 2021. BUENO, M.G.; MARTINEZ, N.; ABDALLA, L.; DUARTE DOS SANTOS, C.N.; CHAME, M. Animals in the Zika Virus Life Cycle: What to Expect from Megadiverse Latin American Countries. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 10, p. 1–13, 2016. CALVET, G.; AGUIAR, R.S.; MELO, A.S.O.; SAMPAIO, S.A.; DE FILIPPIS, I.; FABRI, A.; ARAUJO, E.S.M.; DE SEQUEIRA, P.C.; DE MENDONÇA, M.C.L.; DE OLIVEIRA, L.; et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in a case study. Lancet Infect. Dis., v. 16, p. 653–660, 2016. CATENACCI, L.S.; NUNES-NETO, J.; DEEM, S.L.; PALMER, J.L.; TRAVASSOS-DAROSA, E.S.; TELLO, J.S. Diversity patterns of hematophagous insects in Atlantic forest fragments and human-modified areas of southern Bahia, Brazil. J. Vector Ecol., v.43, p. 293–304, 2018. CAMPOS, G.S.; BANDEIRA, A.C.; SARDI, S.I. Zika Virus Outbreak, Bahia, Brazil. Emerg. Infect. Dis., v. 21, p. 1885–1886, 2015. CARDOSO, J.d.C; CORSEUIL, E.; BARATA, J.M.S. Culicinae (Diptera, Culicidae) ocorrentes no Estado do Rio Grande do Sul, Brasil. Rev. Bras. Entomol., 2005, v. 49, p. 275–287, 2005. CARDOSO, J.D.C.; DE ALMEIDA, M.A.B.; DOS SANTOS, E.; DA FONSECA, D.F.; SALLUM, M.A.M.; NOLL, C.A.; MONTEIRO, H.A.D.O.; CRUZ, A.C.R.; CARVALHO, V.L.; PINTO, E.V.; et al. Yellow Fever Virus in Haemagogus leucocelaenus and Aedes serratus Mosquitoes, Southern Brazil, 2008. Emerg. Infect. Dis., v. 16, p. 1918–1924, 2010. CHANG, G.J.; CROPP, B.C.; KINNEY, R.M.; TRENT, D.W.; GUBLER, D.J. Nucleotide sequence variation of the envelope protein gene identifies two distinct genotypes of yellow fever virus. J. Virol., v. 69, p. 5773–5780, 1995. CIOTA, A.T.; BIALOSUKNIA, S.M.; EHRBAR, D.J.; KRAMER, L.D. Vertical Transmission of Zika Virus by Aedes aegypti and Ae. Albopictus Mosquitoes. Emerg. Infect. Dis., v. 23, p. 880–882, 2017. CONSOLI, R.AG.B.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Principais mosquitos de importância sanitária no Brasil. 1st ed. Rio de Janeiro: Fiocruz; 1994. COSTA-DA-SILVA, A.L.; IOSHINO, R.S.; DE ARAÚJO, H.R.C.; KOJIN, B.B.; DE ANDRADE ZANOTTO, P.M.; OLIVEIRA, D.B.L.; MELO, S.R.; DURIGON, E.L.; CAPURRO, M.L. Laboratory strains of Aedes aegypti are competent to Brazilian Zika virus. PLoS One, v. 12, p. 1–13, 2017. CHOUIN-CARNEIRO, T.; VEGA-RUA, A.; VAZEILLE, M.; YEBAKIMA, A.; GIROD, R.; GOINDIN, D.; DUPONT-ROUZEYROL, M.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R.; FAILLOUX, A.B. Differential Susceptibilities of Aedes aegypti and Aedes albopictus from the Americas to Zika Virus. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 10, p. 1–11, 2016. DA COSTA, C.F.; DA SILVA, A.V.; NASCIMENTO, V.A.D.; DE SOUZA, V.C.; MONTEIRO, D.C.D.S.; TERRAZAS, W.C.M.; DOS PASSOS, R.A.; NASCIMENTO, S.; LIMA, J.B.P.; NAVECA, F.G. Evidence of vertical transmission of Zika virus in fieldcollected eggs of in the Brazilian Amazon. PLoS Negl.Trop. Dis., v. 12, p. 1–12, 2018. DI LUCA, M.; SEVERINI, F.; TOMA, L.; BOCCOLINI, D.; ROMI, R.; REMOLI, M.E.; SABBATUCCI, M.; RIZZO, C.; VENTURI, G.; REZZA, G.; et al. Experimental studies of susceptibility of Italian Aedes albopictus to Zika virus. Euro Surveill., v. 21, 2016. DU, S.; LIU, Y.; LIU, J.; ZHAO, J.; CHAMPAGNE, C.; TONG, L.; ZHANG, R.; ZHANG, F.; QIN, C.F.; MA, P.; et al. Aedes mosquitoes acquire and transmit Zika virus by breeding in contaminated aquatic environments. Nat. Commun., v. 10, p. 1–11, 2019. EPELBOIN, Y.; TALAGA, S.; EPELBOIN, L.; DUSFOUR, I. Zika virus: An updated review of competent or naturally infected mosquitoes. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 11, p.1–22, 2017. DOS SANTOS, B.M.C.; COELHO, F.C.; ARMSTRONG, M.; SARACENI, V.; LEMOS, C. Zika: an ongoing threat to women and infants. Cad. Saúde Pública, v. 34, 2018. FARAJI, A.; EGIZI, A.; FONSECA, D.M.; UNLU, I.; CREPEAU, T.; HEALY, S.P.; GAUGLER, R. Comparative Host Feeding Patterns of the Asian Tiger Mosquito, Aedes albopictus, in Urban and Suburban Northeastern USA and Implications for Disease Transmission. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 8, 2014. FAVORETTO, S.; ARAÚJO, D.; OLIVEIRA, D.; DUARTE, N.; MESQUITA, F.; ZANOTTO, P.; DURIGON, E. First detection of Zika virus in neotropical primates in Brazil: A possible new reservoir. BioRxiv, 2016. FERNANDES, R.S.; BERSOT, M.I.; CASTRO, M.G.; TELLERIA, E.L.; FERREIRA-DEBRITO, A.; RAPHAEL, L.M.; BONALDO, M.C.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Low vector competence in sylvatic mosquitoes limits Zika virus to initiate an enzootic cycle in South America. Sci. Rep., v. 9, p. 1–7, 2019. FERREIRA-DE-BRITO, A.; RIBEIRO, I.P.; MIRANDA, R.M.; FERNANDES, R.S.; CAMPOS, S.S.; DA SILVA, K.A.B.; DE CASTRO, M.G.; BONALDO, M.C.; BRASIL, P.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. First detection of natural infection of Aedes aegypti with Zika virus in Brazil and throughout South America. Mem. Inst. Oswaldo Cruz, v. 111, p. 655–658, 2016. FIGUEIREDO, L.T.M. The Brazilian flaviviruses. Microbes Infect., v. 2, p. 1643–1649, 2000. FRANCO, O. História da Febre Amarela no Brasil. Ministério da Saúde, Dep. Nac. Endem. Rurais., v. 1, p.1–8. 1969. INSTITUTO NACIONAL DE METEOROLOGIA–INMET. Disponível em: https://portal.inmet.gov.br/ Acesso em: 2021. GRARD, G.; CARON, M.; MOMBO, I.M.; NKOGHE, D.; MBOUI ONDO, S.; JIOLLE, D.; FONTENILLE, D.; PAUPY, C.; LEROY, E.M. Zika Virus in Gabon (Central Africa) - 2007: A New Threat from Aedes albopictus? PLoSNegl. Trop. Dis., v. 8, p. 1–6, 2014. JOHNSON, B.K.; CHANAS, A.C.; SHOCKLEY, P.; SQUIRES, E.J.; GARDNER, P.; WALLACE, C.; SIMPSON, D.I.H.; BOWEN, E.T.W.; PLATT, G.S.; WAY, H.; et al. Arbovirus isolations from, and serological studies on, wild and domestic vertebrates from Kano Plain, kenya. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., v. 71, p. 512–517, 1977. JOHNSON, B.W.; CHAMBERS, T.V.; CRABTREE, M.B.; FILIPPIS, A.M.B.; VILARINHOS, P.T.R.; RESENDE, M.C.; MACORIS, M. de L.G.; MILLER, B.R. Vector competence of Brazilian Aedes aegypti and Ae. albopictus for a Brazilian yellow fever virus isolate. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., v. 96, p. 611–613, 2002. LEROY, E.M.; NKOGHE, D.; OLLOMO, B.; NZE-NKOGUE, C.; BECQUART, P.; GRARD, G.; POURRUT, X.; CHARREL, R.; MOUREAU, G.; NDJOYI-MBIGUINO, A.; et al. Concurrent chikungunya and dengue virus infections during simultaneous outbreaks, Gabon, 2007. Emerg. Infect. Dis., v. 15, p. 591–593, 2009. LIU, Z.; ZHANG, Z.; LAI, Z.; ZHOU, T.; JIA, Z.; GU, J.; WU, K.; CHEN, X.G. Temperature Increase Enhances Aedes albopictus Competence to Transmit Dengue Virus. Front. Microbiol., v. 8, p. 1–7, 2017. LOURENÇO DE OLIVEIRA, R.; VAZEILLE, M.; DE FILIPPIS, A.M.B.; FAILLOUX, A.B. Large genetic differentiation and low variation in vector competence for dengue and yellow fever viruses of Aedes albopictus from Brazil, the United States, and the Cayman Islands. Am. J. Trop. Med. Hyg., v. 69, p. 105–114, 2003. MACIEL-DE-FREITAS, R.; NETO, R.B.; GONÇALVES, J.M.; Codeço, C.T.; LOURENÇO-DE-OLIVEIRA, R. Movement of dengue vectors between the human modified environment and an urban forest in Rio de Janeiro. J. Med. Entomol., v. 43, p. 1112–1120, 2006. MARCONDES, C.B.; ALENCAR, J. Revisão de mosquitos Haemagogus Williston (Diptera: Culicidae) do Brasil. Rev. Biomed. v. 21, p. 221–238, 2010. MILLER, B.R.; MITCHELL, C.J.; BALLINGER, M.E. Replication, tissue tropisms and transmission of yellow fever virus in Aedes albopictus. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. v. 83, p. 252–255, 1989. MITCHELL, C.J.; MILLER, B.R.; GUBLER, D.J. Vector competence of Aedes albopictus from Houston, Texas, for dengue serotypes 1 to 4, yellow fever and Ross River viruses. J. Am. Mosq. Control Assoc., v. 3, p. 460–465, 1987. MLAKAR, J.; KORVA, M.; TUL, N.; POPOVIC, M.; POLJSAK-PRIJATELJ, M.; MRAZ, J.; KOLENC, M.; RESMAN RUS, K.; VESNAVER VIPOTNIK, T.; FABJAN, VODUSEK, V.; et al. Zika Virus Associated with Microcephaly. N. Engl. J. Med., v. 374, p. 951–958, 2016. MOREIRA-SOTO, A.; CARNEIRO, I. DE O.; FISCHER, C.; FELDMANN, M.; KÜMMERER, B.M.; SILVA, N.S.; SANTOS, U.G.; SOUZA, B.F. de C.D.; LIBORIO, F. de A.; VALENÇA-MONTENEGRO, M.M.; et al. Limited Evidence for Infection of Urban and Peri-urban Nonhuman Primates with Zika and Chikungunya Viruses in Brazil. MSphere, v. 3, p. 1–10, 2018. NIEBYLSKI, M.L.; CRAIG, G.B.Jr. Dispersal and survival of Aedes albopictus at a scrap tire yard in Missouri. J Am Mosq Control Assoc, v. 10, p. 339–343, 1994. OTTO, T.D.; VASCONCELLOS, E.A.; GOMES, L.H.F.; MOREIRA, A.S.; DEGRAVE, W.M.; MENDONÇA-LIMA, L.; ALVES-FERREIRA, M. ChromaPipe: a pipeline for analysis, quality control and management for a DNA sequencing facility. Genet. Mol. Res., v. 7, p. 861–871, 2008. PATEL, P.; LANDT, O.; KAISER, M.; FAYE, O.; KOPPE, T.; LASS, U.; SALL, A.A.; NIEDRIG, M. Development of one-step quantitative reverse transcription PCR for the rapid detection of flaviviruses. Virol. J., v. 10, 2013. PAUVOLID-CORRÊA, A.; KENNEY, J.L.; COUTO-LIMA, D.; CAMPOS, Z.M.S.; SCHATZMAYR, H.G.; NOGUEIRA, R.M.R.; BRAULT, A.C.; KOMAR, N. Ilheus Virus Isolation in the Pantanal, West-Central Brazil. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 7, 2013. PAUVOLID-CORRÊA, A.; CAMPOS, Z.; JULIANO, R.; VELEZ, J.; NOGUEIRA, R.M.R.; KOMAR, N. Serological Evidence of Widespread Circulation of West Nile Virus and Other Flaviviruses in Equines of the Pantanal, Brazil. PLoS Negl. Trop. Dis., v. 8, 2014. REINERT, J.F. List of abbreviations for currently valid generic-level taxa in family Culicidae (Diptera). J. Eur. Mosq. Control Assoc., v. 27, p. 68–76, 2009. RICHARDS, S.L.; PONNUSAMY, L.; UNNASCH, T.R.; HASSAN, H.K.; APPERSON, C.S. Host-feeding patterns of Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) in relation to availability of human and domestic animals in suburban landscapes of central North Carolina. J. Med. Entomol., v. 43, p. 543–551, 2006. SES Informe Epidemiológico 001/2018: Monitoramento das Emergências em Saúde Pública (Febre Amarela) 04 de janeiro de 2018; pp. 1-6. Disponível em: http://www.riocomsaude.rj.gov.br/Publico/MostrarArquivo.aspx?C=%2Bp77vqe5mOs%3 D. Acesso em: 2021. SILVA, N.I.O.; SACCHETTO, L.; DE REZENDE, I.M.; TRINDADE, G.S.; LABEAUD, A.D.; DE THOISY, B.; DRUMOND, B.P. Recent sylvatic yellow fever virus transmission in Brazil: the news from an old disease. Virol. J., v. 17, p. 1–12, 2020. SILVER, J.B. Mosquito ecology: field sampling methods. 3rd ed. New York: Springer, 2008. SOPER, F.L.; PENNA, H.; CARDOSO, E.; SERAFIM, J.; FROBISHER, M.Jr.; PINHEIRO, J. Yellow fever without Aedes aegypti. Study of a rural epidemic in the Valle do Chanaan, Espirito Santo, Brazil, 1932. Am. J. Epidemiol., v. 18, p. 555–587, 1933. SCHULER-FACCINI, L.; RIBEIRO, E.M.; FEITOSA, I.M.L.; HOROVITZ, D.D.G.; CAVALCANTI, D.P.; PESSOA, A.; DORIQUI, M.J.R.; NERI, J.I.; DE PINA NETO, J.M.; WANDERLEY, H.Y.C.; et al. Possible Association Between Zika Virus Infection and Microcephaly — Brazil, 2015. MMWR. Morb. Mortal. Wkly. Rep., p. 59–62, 2016. TERZIAN, A.C.B.; AUGUSTE, A.J.; VEDOVELLO, D.; FERREIRA, M.U.; DA SILVANUNES, M.; SPERANÇA, M.A.; SUZUKI, R.B.; JUNCANSEN, C.; ARAÚJO, J.P.JR., WEAVER, S.C.; et al. Isolation and characterization of Mayaro virus from a human in Acre, Brazil. Am. J. Trop. Med. Hyg., v. 92, p. 401–404, 2015. TERZIAN, A.C.B.; ZINI, N.; SACCHETTO, L.; ROCHA, R.F.; PARRA, M.C.P.; DEL SARTO, J.L.; DIAS, A.C.F.; COUTINHO, F.; RAYRA, J.; DA SILVA, R.A.; et al. Evidence of natural Zika virus infection in neotropical non-human primates in Brazil. Sci. Rep., v. 8, p. 1–15, 2018. WHO | Yellowfever – Brazil. Disponível em: http://www.who.int/csr/don/11-february-2019- yellow-fever-brazil/en/ Acesso em: 2021.
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