Estudo de mexilhões Perna perna diagnosticados com Cryptosporidium spp. destinados ao consumo humano indicando contaminação ambiental

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Mariné, Geisi Ferreira
Data de Publicação: 2012
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9736
Resumo: O gênero Cryptosporidium possui espécies capazes de infectar vários hospedeiros animais, tanto domésticos quanto silvestres e também o homem, sendo a única forma de transmissão a ingestão de oocistos, que pode ocorrer através da água e alimentos contaminados. Fontes de contaminação tais como a drenagem hídrica das fezes de animais, o uso de fertilizantes orgânicos e o lançamento de esgotos parcialmente ou não tratados favorecem a contaminação de vários ambientes aquáticos por este protozoário já que os oocistos são eliminados nas fezes dos hospedeiros. Nos mares a presença de Cryptosporidium spp. compromete a qualidade do pescado, como por exemplo mexilhões Perna perna presentes na costa brasileira. O trabalho teve como objetivos: diagnosticar e caracterizar geneticamente a(s) espécie(s) e/ou genótipo(s) de Cryptosporidium em mexilhões Perna perna extraídos de costões rochosos de duas localidades, Lage Preta e Praia do Saco, no Município de Mangaratiba, Estado do Rio de Janeiro; realizar o seqüenciamento e análises filogenéticas, incluindo o depósito das seqüências de Cryptosporidium no GenBank; correlacionar a presença do protozoário com o índice de precipitação pluviométrica da região e estabelecer possíveis riscos da ingestão dos mexilhões, através da identificação de genótipo(s) e/ou espécie(s) com potencial zoonótico. Foram realizadas coletas mensais de março de 2009 a fevereiro de 2010, totalizando 12 coletas. A cada coleta foram separados 30 animais de cada local e divididos em três grupos com 10 animais cada, totalizando 72 amostras. Para as análises, o DNA extraído dos tecidos dos mexilhões foi utilizado na amplificação das seqüências do 18SSU rRNA através da técnica Nested-PCR. Para a identificação de espécies os amplicons foram seqüenciados. Durante todos os meses estudados foi possível diagnosticar amostras de mexilhões Perna perna positivas para Cryptosporidium de pelo menos um dos locais estudados. Foi possível a identificação de três espécies C. andersoni, C. meleagridis e C. parvum nas amostras obtidas de mexilhões dos dois locais, através da observação de similaridades quando comparadas às seqüências já existentes no GenBank. A análise estatística mostrou que não houve influência da chuva ou da falta desta sobre a positividade das amostras de mexilhões para Cryptosporidium, de ambos os locais. Com os resultados obtidos, conclui-se que há probabilidade de contaminação humana através da ingestão de mexilhões provenientes da região estudada
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spelling Mariné, Geisi FerreiraBomfim, Teresa Cristina Bergamo do609.928.087-15http://lattes.cnpq.br/6299581965425007Pacheco, Tania Maria ValenteSilva, Pedro Paulo de OliveiraMeireles, Marcelo VasconcelosFigueiredo, Beatriz Brener de074.012.977-52http://lattes.cnpq.br/26766405915655672023-12-21T18:43:19Z2023-12-21T18:43:19Z2012-03-27MARINÉ, Geisi Ferreira. Estudo de mexilhões Perna perna diagnosticados com Cryptosporidium spp. destinados ao consumo humano indicando contaminação ambiental. 2012. 89 f. Tese (Doutorado em Ciências Veterinárias) - Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2012.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9736O gênero Cryptosporidium possui espécies capazes de infectar vários hospedeiros animais, tanto domésticos quanto silvestres e também o homem, sendo a única forma de transmissão a ingestão de oocistos, que pode ocorrer através da água e alimentos contaminados. Fontes de contaminação tais como a drenagem hídrica das fezes de animais, o uso de fertilizantes orgânicos e o lançamento de esgotos parcialmente ou não tratados favorecem a contaminação de vários ambientes aquáticos por este protozoário já que os oocistos são eliminados nas fezes dos hospedeiros. Nos mares a presença de Cryptosporidium spp. compromete a qualidade do pescado, como por exemplo mexilhões Perna perna presentes na costa brasileira. O trabalho teve como objetivos: diagnosticar e caracterizar geneticamente a(s) espécie(s) e/ou genótipo(s) de Cryptosporidium em mexilhões Perna perna extraídos de costões rochosos de duas localidades, Lage Preta e Praia do Saco, no Município de Mangaratiba, Estado do Rio de Janeiro; realizar o seqüenciamento e análises filogenéticas, incluindo o depósito das seqüências de Cryptosporidium no GenBank; correlacionar a presença do protozoário com o índice de precipitação pluviométrica da região e estabelecer possíveis riscos da ingestão dos mexilhões, através da identificação de genótipo(s) e/ou espécie(s) com potencial zoonótico. Foram realizadas coletas mensais de março de 2009 a fevereiro de 2010, totalizando 12 coletas. A cada coleta foram separados 30 animais de cada local e divididos em três grupos com 10 animais cada, totalizando 72 amostras. Para as análises, o DNA extraído dos tecidos dos mexilhões foi utilizado na amplificação das seqüências do 18SSU rRNA através da técnica Nested-PCR. Para a identificação de espécies os amplicons foram seqüenciados. Durante todos os meses estudados foi possível diagnosticar amostras de mexilhões Perna perna positivas para Cryptosporidium de pelo menos um dos locais estudados. Foi possível a identificação de três espécies C. andersoni, C. meleagridis e C. parvum nas amostras obtidas de mexilhões dos dois locais, através da observação de similaridades quando comparadas às seqüências já existentes no GenBank. A análise estatística mostrou que não houve influência da chuva ou da falta desta sobre a positividade das amostras de mexilhões para Cryptosporidium, de ambos os locais. Com os resultados obtidos, conclui-se que há probabilidade de contaminação humana através da ingestão de mexilhões provenientes da região estudadaCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESThe Cryptosporidium genus has species capable of infecting various host animals, both domestic and wild as well as man, and the only way to transmit the infective oocysts intake, which can occur through the contaminated food and water. Sources of contamination such as water drainage of the animal faeces, the use of organic fertilizers and the release of part or untreated sewage contamination favor of various aquatic environments by this parasite since the oocysts are eliminated in the feces of the host. In the seas the presence of Cryptosporidium spp. directly affects the quality of fish such as mussels present in the Brazilian coast and is therefore limiting the consumption of food. The study aimed to: diagnose and characterize genetically type (s) and / or genotype (s) of Cryptosporidium in mussels taken from rocky shores at two locations, Lage Preta and Saco´s Beach, in the Mangaratiba city, State of Rio de Janeiro, performing the sequencing and phylogenetic analyzes, including the deposit of Cryptosporidium sequences from GenBank, to correlate the presence of the parasite with the index of rainfall in the region and to establish possible risks of eating mussels, by identifying the genotype (s) and / or specie (s) with zoonotic potential. Were collected monthly from March 2009 to February 2010 totaling 12 samples. During data collection, 30 animals were separated from each location and divided into three groups of 10 animals each, totaling 72 samples. For the analyzes, the DNA extracted from tissues of mussels was used in the amplification of sequences 18SSU rRNA by nested-PCR technique. For species identification, the amplicons were sent for sequencing. During all the study samples was possible to diagnose mussels Cryptosporidium positive for at least one of the study sites. It was possible to identify three species C. andersoni, C. meleagridis and C. parvum in samples obtained from two locations of mussels, by observing the similarity when compared to existing sequences in GenBank. It is possible the occurrence of human cryptosporidiosis by the consumption of mussels, raw or partially cooked, from the city of Mangaratiba. Statistical analysis showed no influence of rain in positivity of the samples of mussels for Cryptosporidium. With these results we conclude that there is likelihood of human exposure through ingestion of mussels from the region studied.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Ciências VeterináriasUFRRJBrasilInstituto de VeterináriaCryptosporidiummexilhão Perna pernadiagnóstico molecularfilogenia e epidemiologiaCryptosporidiummusselsmolecular diagnosisphylogeny and epidemiologyMedicina VeterináriaEstudo de mexilhões Perna perna diagnosticados com Cryptosporidium spp. destinados ao consumo humano indicando contaminação ambientalStudy mussels Perna perna diagnosed with Cryptosporidium spp. intended for human consumption indicating environmental contaminationinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisABE, N.; KIMATA, I.; ISEKI, M. Comparative study of PCR-based Cryptosporidium discriminating techniques with a review of literature. Kansenshogaku Zassi. v. 76, n. 10, p. 869-881. 2002. ADAMSKA, M; LEOÑSKA-DUNIEC, A.; MACIEJEWSKA, A; SAWCZUK, M; SKOTARCZAK, B PCR and Real Time PCR for the Detection of Cryptosporidium parvum Oocyst DNA. Folia biologica (Kraków), v. 59, n. 3-4 (2011), p.115-120, 2011. ADJEI, A; ARMAH, H; RODRIGUES, O; RENNER, L; BORKETEY, P; AYEH-KUMI, P; ADIKU, T; SIFAH, E; LARTEY, M Cryptosporidium spp., a frequent cause of diarrhea among children at the Korle-bu Teaching Hospital, Accra, Ghana. Japanese Journal of Infectious Diseases, v. 57, p. 216-219, 2004. ADL, S. M. et al. The new higher level classification of eucaryotes with emphasis on the taxonomy of Protists. Journal of Eukaryotic Microbiology, v. 52, n. 5, p. 399-451, 2005. AGNEWS D. G et al. Cryptosporidiosis in northeastern Brazilian children: association with increases diarrhea morbidity. The Journal of Infectious Diseases, v. 177, n. 3, p. 754-760, 1998. AJJAMPUR, S.S. et al. Molecular and spatial epidemiology of cryptosporidiosis in children in a semiurban community in South India. J. Clin. Microbiol. v.45, p.915–920, 2007. AKIYOSHI, D. E. et al. Genetic Analysis of a Cryptosporidium parvum human genotype I isolate passaged through different host species. Infection and Immunity. v.70, n. 10, p. 5670-5675, 2002. ALMEIDA, T. T. C. Padronização e avaliação de métodos moleculares para detecção de oocistos de Cryptosporidium spp (Apicomplexa: Cryptosporiidae) em amostras fecais: extração de DNA genômico e PCR (reação em cadeia pela polimerase). 130 f. Tese (Doutorado em Saúde Pública), Universidade de São Paulo (USP), São Paulo, 2004. ALVES, M., XIAO, L., SULAIMAN, I., LAL, A.A., MATOS, O., ANTUNES, F. Subgenotype analysis of Cryptosporidium isolates from humans, cattle and zoo ruminants in Portugal. J. Clin. Microbiol. v.41, p 2744–2747. 2003. AMAR, C. F. L.; DEAR, P. H.; McLAUCHLIN, J. Detection and identification Br real-time PCR/RFLP analyses of Cryptosporidium species from human faeces. Letters in Applied Microbiology. v.38, n.1, p. 217-222, 2004. AMARANTE, H. M. B. Ocorrência do Cryptosporidium sp. em indivíduos imunocompetentes e imunodeficientes em Curitiba. 122 f. Dissertação (Mestrado em Medicina Interna) - Setor de Ciências da Saúde, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 1992. 69 AMIN O. M Seasonal prevalence of intestinal parasites in the United States during 2000. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene v.66, n.6, p. 799-803, 2002. ANDREU, B. El cultivo Del mejillón en Europa. (I) Aspectos biológicos y Ecológicos: Enemigos y parasitos. Anais, Acad. Bras. Cienc. v.47, p.23-46, 1976. ARAÚJO, A. J. U. dos S. et al. Genotypic identification of Cryptosporidium spp. isolated from hiv-infected patients and immunocompetent children of São Paulo, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, v. 50, n. 3, 2008. ARCOVERDE C. A. C. Enteroparasitoses em pacientes infectados com o Vírus da Imunodeficiência Humana (HIV) atendidos no Hospital das Clínicas da UFPE. Dissertação de mestrado, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2001 AVELAR, J. C. L. Manual de Mitilicultura, Ministério do Meio Ambiente/Plano Nacional de Meio Ambiente/Plano de Execução Descentralizada. 1ª Edição. Brasília, 1998, p.164. BARNES, R. D. Zoologia dos Invertebrados. 4ª ed. São Paulo, Editora Livraria Roca Ltda., 1990, p. 419-463. BARTA JR, THOMPSON R.C.A. What is Cryptosporidium? Reappraising its biology and phylogenetic affinities. Trends Parasitol, v. 22, p. 463-468, 2006. BERTULLO, V. Tecnologia de los productos y Subproductos de Pescados, Moluscos y Crustáceos. Ed. Hemisferio Sur. 1ª edición. Buenos Aires-Argentina, 1975. p.538. BLUNT, D.S., KHRAMSTOV, N.V., UPSTON, S.J., AND MONTELONE, B.A. Molecular karyotype analysis of Cryptosporidium parvum: Evidence for eight chromosomes and a lowmolecular- size molecule. Clin. Diagn. Lab. Immunol. v.4, p. 11–13, 1997. BOEHMER, T. K. et al. Cryptosporidiosis from a community swimming pool: outbreak investigation and follow-up study. Epidemiology and Infection, v. 137, p. 1651- 1654, 2009. BOOM, R.; SOL, C. J. A..; SALIMANS, M. M. M.; JANSEN, C. L.; WERTHEIM-VAN DILLEN, P. M. E.; NOORDAA, J. Rapid and simple Method for purification of Nucleic Acids. Journal of Clinical Microbiology, v.28, n. 3, p. 495-503, 1990. BROOK, E.J., ANTHONY HART, C., FRENCH, N.P., CHRISTLEY, R.M., Molecular epidemiology of Cryptosporidium subtypes in cattle in England. Vet. J. v.179, p.378–382, 2009. CACCIÒ, S.; CAMILLI, R.; LA ROSA, G.; POZIO, E. Establishing the Cryptosporidium parvum karyotype by NotI and SfiI restriction analysis and Southern hybridization. Gene, v. 28, n. 1, p. 73-79, 1998. CACCIÒ, S.M. Molecular epidemiology of human cryptosporidiosis. Parasitology, v. 47, p. 185–92, 2005. 70 CAMA V. A, BERN C, ROBERTS J, CABRERA L, STERLING C.R, ORTEGA Y, GILMAN R.H, XIAO L. Cryptosporidium species and subtypes and clinical manifestations in children, Peru. Emerg Infect Dis. v. 14, p. 1567-1574, 2008. CAMA V. A, ROSS J. M, CRAWFORD S, KAWAI V, CHAVEZ-VALDEZ R, VARGAS D, VIVAR A, TICONA E, NAVINCOPA M, WILLIAMSON J, ORTEGA Y, GILMAN R. H, BERN C, XIAO L. Differences in clinical manifestations among Cryptosporidium species and subtypes in HIV-infected persons. J Infect Dis. V. 196: p. 684-691, 2007. CAMA V. A., BERN C., SULAIMAN I.M., GILMAN R.H., TICONA E., VIVAR A., KAWAI V., VARGAS D., ZHOU L., XIAO L.. Cryptosporidium species and genotypes in HIV-positive patients in Lima, Peru. J. Eukaryotic Microbiol., v.50(Suppl.), p. 531-533, 2003. CANTUSIO NETO, R., SANTOS, L. U; FRANCO, R. M. B. Evaluation of activated sludge treatment and the efficiency of the disinfection of Giardia species cysts and Cryptosporidium oocysts by UV at a sludge treatment plant in Campinas, southeast Brazil. Wat. Sci. Technol. 54(3), 89–94, 2006. CARPENTER, C., FAYER, R., TROUT, J., BEACH, M. Chlorine disinfection of recreational water for Cryptosporidium parvum. Emerg. Infect. Dis. v.5, p. 579–584. 1999. CARRENO, R.A.; MARTIN, D.S.; BARTA, J.R. Cryptosporidium is more closely related to the gregarines than to coccidia as shown by phylogenetic analysis of apicomplexan parasites inferred using small-subunit ribosomal RNA gene sequences. Parasitology Research, v. 85, n. 11, p. 899-904, 1999. CARVALHO FILHO, J. Panorama da malacocultura brasileira. Panorama da Aqüicultura. São Paulo, v.64, p. 25-31, 2001. CARVALHO-ALMEIDA, T.T; CASIMIRO, A.M; MATTE, G.R; MATTE, M.H. Na improved method for extracting Cryptosporidium sp DNA from preserved faeces and potential application for cryptosporidiosis surveillance. Rev Bras Vig Sanit. v. 1, p. 208-231, 2006. CENTRO DE REFERÊNCIA E TREINAMENTO EM DOENÇAS SEXUALMENTE TRANSMISSÍVEIS/AIDS (CRT-DST/AIDS), São Paulo, 1997. Disponível em http://www.saude.sp.gov.br/centro-de-referencia-e-treinamento-dstaids-sp/. Acesso em agosto de 2009. CHACÍN-BONILLA L, BARRIOS F, SANCHEZ Y Environmental risk factors for Cryptosporidium infection in an island from Western Venezuela. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 103, n. 1, p.45-49, 2008. CHALMERS, R. M; ROBINSON G; ELWIN K, HADFIELD S. J, THOMAS E; WALTKINS J; CASEMORE D, K. D. Detection of Cryptosporidium species and sources of contamination with Cryptosporidium hominis during a waterborne outbreak in North West Wales. J Water Health. v 8, p.311–25, 2010. 71 CHALMERS, R.M; HADFIELD, S.J; JACKSON C.J; ELWIN K, XIAO L, HUNTER P. Geographic linkage and variation in Cryptosporidium hominis. Emerg Infect Dis. V.14, p. 496-498, 2008. CHEN, X M; KEITHLY JS, PAYA CV, LARUSSO NF. Cryptosporidiosis. N Engl J Med. 30; v.346, n. 22, p. 1723-31, 2002. COLLINS, M. V.; FLICK, G. J; SMITH, S. A; FAYER, R.; RUBENDALL, E.; LINDSAY, D. The Effects of E-beam Irradiation and Microwave Energy on Eastern Oysters (Crassostrea virginica) Experimentally Infected with Cryptosporidium parvum. J. Eukaryot. Microbiol., v.52, n.6, p. 484–488, 2005. CORNELISEN, C. D; GILLESPIE, P. A; KIRS, M; YOUNG, R. G; FORREST, R. W; BARTER, P. J; KNIGHT, B. R; HAWOOD, V. J. Motueka River plume facilitates transport of ruminant faecal contaminants into shellfish growing waters, Tasman Bay, New Zealand New Zealand. Journal of Marine and Freshwater Research. v. 45, n. 3, p. 477-495, 2011. CRAWFORD, F. G; VERMUND, S.H. Human Cryptosporidiosis. Critical Review of Microbiology. n. 16, p 113-159, 1988 CURRENT, W. L.; GARCIA, L. S. Cryptosporidiosis. Clinical Microbiological Reviews, Jul, p. 325-358, 1991. DOWNEY, A. S. et al. Efficacy of Pyrvinium Pamoate against Cryptosporidium parvum Infection In Vitro and in a Neonatal Mouse Model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, v. 52, n. 9, p. 3106-3112, 2008. EMPRESA DE PESQUISA AGROPECUÁRIA E EXTENSÃO RURAL DO ESTADO DE SANTA CATARINA (EPAGRI) Síntese informativa da produção de moluscos (mexilhões, ostras e vieiras) no estado de Santa Catarina em 2009. Disponível em http://www.epagri.rct-sc.br. Acesso em outubro de 2010. EMPRESA DE PESQUISA AGROPECUÁRIA E EXTENSÃO RURAL DO ESTADO DE SANTA CATARINA. (EPAGRI), 2010. Disponível em http://www.epagri.sc.gov.br/. Acesso em janeiro de 2011. FAYER R. Cryptosporidium: a water-borne zoonotic parasite. Vet Parasitol, n. 126, p. 37– 56, 2007. FAYER, R. et al. Detection of Cryptosporidium felis and Giardia duodenalis Assemblage F in a cat colony. Veterinary Parasitology, v. 140, p. 44-53, 2006. FAYER, R. Taxonomy and species delimitation in Cryptosporidium. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 90-97, 2010. FAYER, R., GRACZYK, T.K., LEWIS, E.J., TROUT, J.M., FARLEY, C.A., Survival of infectious Cryptosporidium parvum oocysts in seawater and eastern oysters (Crassostrea virginica) in the Chesapeake Bay. Appl. Environ. Microbiol. v.64, p. 1070–1074. 1998. 72 FAYER, R., LEWIS, E.J., TROUT, J.M., GRACZYK, T.K., JENKINS, M.C., HIGGINS, J., XIAO, L., LAL, A.A., Cryptosporidium in oysters from commercial harvesting sites in the Chesapeake Bay. Emerg. Infect. Dis. V. 5, p. 706–710. 1999. FAYER, R., TROUT, J.M., LEWIS, E.J., SANTIN, M., ZHOU, L., LAL, A.A., XIAO, L. Contamination of Atlantic coast commercial shellfish with Cryptosporidium. Parasitol. Res. 89, 141–145, 2003. FAYER, R., TROUT, J.M., LEWIS, E.J., XIAO, L., LAL, A.A., JENKINS, M.C., GRACZYK, T.K. Temporal variability of Cryptosporidium in the Chesapeake Bay. Parasitol. Res. V. 88, p. 998–1003, 2002 FAYER, R.; MORGAN, U.; UPTON, S.J. Epidemiology of Cryptosporidium: transmission, detection and identification. International Journal for Parasitology, v. 30, n. 12, p. 1305- 1322, 2000. FAYER, R.; SANTÍN, M. Cryptosporidium xiaoi n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in sheep (Ovis aries). Veterinary Parasitology. v. 164, n. 14, p.192-200, 2009. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium ryanae n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos taurus). Veterinary Parasitology. v. 1, n. 3, p. 191-198, 2008. FAYER, R.; SPEER, C. A.; DUBER, J. P. The general Biology of Cryptosporidium. IN: FAYER, R. Cryptosporidium and cryptosporidiosis. CRC Press:Washington, p. 1-60, 1997. FAYER, R; SANTIN, M; TROUT, J.M. Prevalence of Cryptosporidium species and genotypes in mature dairy cattle on farms in eastern United States compared with younger cattle from the same locations. Veterinary Parasitology, v. 145, p 260–266, 2007. FELTUS, D.C., GIDDINGS, C.W., KHAITSA, M. L., MCEVOY, J. M. High prevalence of Cryptosporidium bovis and the deer-like genotype in calves compared to mature cows in beef cow-calf operations. Veterinary Parasitology, v. 151, p. 191–195, 2008. FENG, Y., ALDERISIO, K.A., YANG, W., BLANCERO, L.A., KUHNE, W.G., NADARESKI; C.A., REID, M., XIAO, L., Cryptosporidium genotypes in wildlife from a New York watershed. Appl. Environ. Microbiol.. v.73, p. 6475–6483, 2007. FERGUSON, C.; DEERE, D.; SINCLAIR, M.; CHALMERS, R. M.; ELWIN, K.; HADFIELD, S.; XIAO, L.; RYAN, U.; GASSER, R.; EL-OSTA, Y. A.; STEVENS, M. Meeting repot: Application of genotyping methods to assess risks from Cryptosporidium in watersheds. Environmental Health Perspectives. v. 114, n. 3, p. 430-434, 2006. FERNANDES, F. C. Manual de maricultura. Ministério da Marinha, Instituto Nacional de estudos do Mar. 1985, p. 24. FERNANDES, F. C.; TENENBAUM, D.R.; SAIDAH, F. E. M. Conteúdo estomacal e considerações gerais sobre a alimentação do mexilhão Perna perna (Linné, 1758) Mollusca – Bivalvia. V Simp. Latino Americano sobre oceanografdia biológica. Resumo, p.326, 1978. 73 FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION (FAO). El estado mundial de la pesca y la acuicultura Roma,. 2010. 219p. dispon´vel em http://www.fao.org/docrep/013/i1820s/i1820s.pdf . Acesso em julho de 2011. FRANCO, R.M.B; EBERHARDT, R.; CANTUSIO NETO, R. Occurrence of Cryptosporidium oocysts and Giardia cysts in raw water from the Atibaia river, Campinas, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo v. 42, n. 2, p.109-111, 2001. FREIRE-SANTOS, F; GOMEZ-COUSO, H; ORTEGA-INARREA, M. R; CASTROHERMIDA, J. A; OTEIZA-LOPEZ, A. M; GARCIA-MARTIN, O; ARES-MAZAS, E. Survival of Cryptosporidium parvum oocysts recovered from experimentally contaminated oysters (Ostrea edulis) and clams (Tapes decussatus). Parasitol Res, v. 88, p. 130–133, 2002. FREIRE-SANTOS, F; OTEIZA-LOPEZ, A. M; VERGARA-CASTIBLANCO, C.A; ARESMAZAS, E; ALVAREZ-SUAREZ, E; GARCIA-MARTIN, O. Detection of Cryptosporidium oocysts in bivalve molluscs destined for human consumption. J. Parasitol, v, 86, p. 853–4, 2000. GAMBA, R. C.; CIAPINA, E.M; ESPINDOLA, R.S; PACHECO, A.; PELLIZARI, V. H. Detection of Cryptosporidium sp. Oocysts in groundwater for human consumption in Itaquaquecetuba city, São Paulo-Brazil. Brazilian Journal of Microbiology v.31, p. 151– 153, 2000. GARCIA, L.S.; SHIMIZU, R.Y. Detection of Giardia lamblia and Cryptosporidium parvum antigens in human fecal specimens using the ColorPAC combination rapid solid-phase qualitative immunochromatographic assay. Journal Clinical Microbiology, v.38, p. 1267– 1268, 2000. GARCIA, L.S.; SHIMIZU, R.Y. Evaluation of nine immunoassay kits (enzyme immunoassay and direct fluorescence) for detection of Giardia lamblia and Cryptosporidium parvum in human fecal specimens. Journal Clinical Microbiology, v. 35, p. 1526–1529, 1997. GASSER, R. B. Molecular tools – advances, opportunities and prospects. Veterinary parasitology. v. 136, n. 1, p.69-89, 2006. GASSER, R. B.; ABS EL-OSTA, Y. G. ; CHALMERS, R. M. Eletrophoretic Analyis of genetic variability within Cryptosporidium parvum from imported and autochthonous cases of human cryptosporidiosis in the United Kingdom. Applied and Environmental Microbiology. V.69, n. 5, p. 2719-2730, 2003. GERBA, C.P., ROSE, J.B; HAAS, C.N. Sensitive population: who is at the greatest risk? International Journal of Food Microbiology, n. 30, p. 113–123, 1996. GLABERMAN, S., SULAIMAN, I.M., BERN, C., LIMOR, J., PENG, M.M., MORGAN, U., GILMAN, R., LAL, A.A., XIAO, L. A multilocus genotypic analysis of Cryptosporidium meleagridis. J. Eukaryot. Microbiol. p.19–22, 2001. 74 GOMES, A.H.S.; PACHECO, M.A.S.R.; FONSCECA, Y.S.K.; et al. Pesquisa de Cryptosporidium sp em aguas de fontes naturais e comparacao com analises bacteriologicas, Revista do Instituto Adolfo Lutz, v. 61 (1), p. 59-63, 2002. GOMEZ-BAUTISTA, M., ORTEGA-MORA, L.M., TABARES, E., LOPES-RODAS, V., COSTAS, E. Detection of infectious Cryptosporidium parvum oocysts in mussels (Mytilus galloprovincialis) and cockles (Cerastoderma edule). Appl. Environ. Microbiol. V. 66, p. 1866–1870. 2000. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; AMAR, C. F. L; GRANT, K. A; WILLIAMSON, K., ARES-MAZAS, M. E; MCLAUCHLIN, J. Detection of Cryptosporidium and Giardia in molluscan shellfish by multiplexed nested-PCR. Int. J. Food. Microbiol, n. 91, p. 279–288, 2004. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; HERNANDEZ-CORDOVA, G. A; ARESMAZAS, M. E. A histological study of the transit of Cryptosporidium parvum oocysts through clams (Tapes decussatus). Int. J. Food. Microbiol, n. 102, p. 57–62, 2005. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; MARTINEZ-URTAZA, J; GARCIA-MARTIN, O; ARES-MAZAS, M. E. Contamination of bivalve molluscs by Cryptosporidium oocysts: the need for new quality control standards. Int. J. Food. Microbiol, n. 87, p. 97–105, 2003. GOMEZ-COUSO, H; MÉNDEZ-HERMIDA, F; CASTRO-HERMIDA, J. A; ARES-MAZAS E. CRYPTOSPORIDIUM contamination in harvesting areas of bivalve molluscs. J. Food Prot, n. 69, p. 185–90, 2006. GONÇALVES, E. M. do N. et al. Multilocus genotyping of Cryptosporidium hominis associated with diarrhea outbreak in a day care unit in São Paulo. Clinics, v. 61, n. 2, p. 119- 126, 2006. GOOGLE EARTH®. Localização do Município de Mangaratiba, Estado do Rio de Janeiro. Acesso em novembro de 2011. GOUJON, M.; MCWILLIAM, H.; LI, W.; VALENTIN, F.; SQUIZZATO, S.; PAERN, J.; LOPEZ, R. A new bioinformatics analysis tools framework at EMBL-EBI. Nucleic acids research, v. 38, suplemento W, p. w695-699, 2010. GRACZYK, T. K., DA SILVA, A.J., CRANFIELD, M.R., NIZEYI, J.B., KALEMA, G.R., PIENIAZEK, N.J. Cryptosporidium parvum genotype 2 infections in free-ranging mountain gorillas (Gorilla gorilla beringei) of the Bwindi Impenetrable National Park, Uganda. Parasitol. Res. v.87, p. 368–370, 2001. GRACZYK, T. K., FAYER, R., CRANFIELD, M. R; CONN, D. B. Invitro interactions of Asian freshwater clams (Corbicula fluminea) hemocytes and Cryptosporidium parvum oocysts. Appl. Environ. Microbiol, n. 63, p. 2910–2912, 1997. GRACZYK, T. K.; CRANFIELD, M. R.; FAYER, R.; ANDERSON, M.S. Viability and infectivity of Cryptosporidium parvum oocysts are retained upon intestinal passage though a refratory avian host. Applied and Enviromental Microbiology, v.62, p.3234-3237, 1996. 75 GRIFFTHS J. Human cryptosporidiosis: epidemiology, transmission, clinical disease, treatment and diagnosis. Advances in Parasitology, v. 40, p. 37-50, 1998. HENRIQUES, M.B. Resistência do mexilhão Perna perna (Linnaeus, 1758) proveniente de bancos naturais da baixada santista, a variações de temperatura, salinidade, tempo de exposição ao ar e determinação da incidência de parasitismo. Rio Claro, 2004. 102 f. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas) - Instituto de Biociências da Universidade Estadual Paulista “Julio de Mesquita Filho”, Rio Claro, 2004. HENRIQUES, P.; O.M., ZAMARIOLI, L.A.; FAUSTINO, J.S. Contaminação bacteriológica no tecido mole do mexilhão Perna perna (Linnaeus, 1758) coletado nos bancos naturais do litoral da Baixada Santista. Arquivos de Ciências do Mar, Ceará: UFCE, LABOMAR, v. 33, p.69-76, 2000. HIJJAWI, N.S., MELONI, B.P., RYAN, U.M., OLSON, M.E., THOMPSON, R.C., Successful in vitro cultivation of Cryptosporidium andersoni: evidence for the existence of novel extracellular stages in the life cycle and implications for the classification of Cryptosporidium. Int. J. Parasitol. v.32, p. 1719–1726, 2004. HUBER, F.; SILVA da, S.; BOMFIM, T.C.B.; TEIXEIRA, K.R.S., BELLO, A.R. Genotypic characterization and phylogenetic analysis of Cryptosporidium sp. from domestic animals in Brazil. Veterinary Parasitology, v.150, p.65-74, 2007. HUNTER, P.R.; HADFIELD, S.J.; WILKINSON, D.; LAKE, I.R.; HARRISON, F.C.; CHALMERS, R.M. Subtypes of Cryptosporidium parvum in humans and disease risk. Emerging Infection Diseases, v. 13, n.1, p. 82-88, 2007. INSTITUTO NACIONAL DE METEOROLOGIA (INMET) – Informação de dados de precipitação pluviométrica da estação de Marambaia, Rio de Janeiro durante os meses de Março /2009 a Fevereiro/2010. IACOVSKI, R.B, BARARDI, C.R.M, SIMÕES C.M.O Detection and enumeration of Cryptosporidium sp. oocysts in sewage sludge samples from the city of Florianópolis (Brazil) by using immunomagnetic separation combined with indirect immunofluorescence assay. Waste Management & Research. v.22, p. 171-176. 2004. JEX, A.R.; GASSER, R.B. Analysis of the genetic diversity within Cryptosporidium hominis and Cryptosporidium parvum from imported and autochthonous cases of human cryptosporidiosis by mutation scanning. Electrophoresis, v. 29, n. 20, p 4119-4129, 2008. JOHNSTON, S.P.; BALLARD, M.M.; BEACH, M.J.; CAUSER, L.; WILKINS, P.P. Evaluation of three commercial assays for detection of Giardia and Cryptosporidium organisms in fecal specimens. Journal Clinical Microbiology, v. 41, p .623–6, 2003. KACAR, A; GUNGOR, F. Comparison of fecal coliform bacteria before and after wastewater treatment plant in the Izmir Bay (Eastern Aegean Sea). Environ Monit Assess, v. 162, p. 355–363, 2010. KACAR; A. Some microbial characteristics of mussels (Mytilus galloprovincialis) in coastal city area. Environ Sci Pollut Res, v. 18, p. 1384–1389, 2011. 76 KARANIS, P., PLUTZER, J., HALIM, N.A., IGORI, K., NAGASAWA, H., ONGERTH, J., LIQING, M. Molecular characterization of Cryptosporidium from animal sources in Qinghai province of China. Parasitol. Res. v.101, p. 1575–1580, 2007. KING, B. J.; HOEFEL, D; DAMINATO, D.P; FANOK, S; MONIS, P. T. Solar UV reduces Cryptosporidium parvum oocyst infectivity in environmental waters. J Appl Microbiol v.104, p. 1311-1323, 2008. KORICH DG, MEAD JR, MADORE MS, SINCLAIR NA, STERLING CR. Effects of ozone, chlorine dioxide, chlorine, and monochloramine on Cryptosporidium parvum oocyst viability. Appl Environ Microbiol, v. 56, p. 1423–8, 1990. TAMURA, K KUMAR, S;., NEI, N. MEGA3: Integrated software for Molecular Evolutionary Genetics Analysis and sequence alignment. Briefings in Bioinformatics v.5, p.150-163, 2004. Disponível: http://www.megasoftware.net/m_con_select.html. Acesso em: Janeiro de 2012. LAGE, H. Coleta e comercialização do mexilhão Perna perna na Baía de Guanabara. Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 2006. 38 f. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Oceanografia) Instituto de Geociências, Departamento de Oceanografia e Hidrologia. Universidade Estadual do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 2006. LALLO, M. A. Criptosporidiose canina. Clínica Veterinária, São Paulo, v. 1, n. 2, p. 20 - 22, 1996. LANGKJAR, R. B; VIGRE, H; ENEMARK, H. L; MADDOX-HYTTEL, C. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium and Giardia from pigs and cattle in Denmark. Parasitology, v. 134, p. 339–350, 2006. LARKIN, M.A.; BLACKSHIELDS, G.; BROWN, N.P.; CHENNA, R.; MCGETTIGAN, P.A.; MCWILLIAM, H.; VALENTIN, F.; WALLACE, I.M.; WILM, A.; LOPEZ, R.; THOMPSON, J.D.; GIBSON, T.J.; HIGGINS, D.G. ClustalW and ClustalX version 2. Bioinformatics, v.23, n. 21, p. 2947-2948, 2007. LAUBACH, H. E; BENTLEY, C. Z; GINTER, E. L; SPALTER, J. S; JENSEN, L.A. A study of risk factors associated with the prevalence of Cryptosporidium in villages around lake Atitlan, Guatemala. The Brazilian Journal of Infectious Diseases, n. 8, v. 4, p. 319-323, 2004. LEAL, D. A. G; DORES, R. A. P; MARQUES, S. S; DURIGAN, M; GREINERT, G. J. A; MORESCO, V; AMSTUTZ, R. C; MICOLI, A. H, NETO R. C, MONTE BARARDI, R; FRANCO, R. M. B. Sanitary quality of edible bivalve mollusks in southeastern brazil using an U.V based depuration system. Ocean and Coastal Management, 2011. LEAL, D. A. G; PEREIRA, M. A; FRANCO, R. M. B; BRANCO, N; CANTUSIO NETO, R. First report of Cryptosporidium spp. oocysts in oysters (Crassostrea rhizophorae) and cockles (Tivela mactroides). Brazil Journal of Water and Health, v. 6, n. 4, 2008. 77 LÉVESQUE, B.; BARTHE, C.; DIXON, B. R.; PARRINGTON, L. J.; MARTIN, D., DOIDGE, B.; MURPHY, D. Microbiological quality of blue mussels (Mytilus edulis) in Nunavik, Quebec: a pilot study. Can. J. Microbiol. v. 56, p. 968–977, 2010. LI, X; GUYOT, K; DEI-CAS, E; MALLARD, J. P; BALLET, J. J; BRASSEUR, P. Cryptosporidium oocysts in mussels (Mytilus edulis) from Normandy (France). Int. J. Food. Microbiol., v. 108, p. 321–325, 2006. LOUIE K, GUSTAFSON L, FYFE M, GILL I, MACDOUGALL L, TOM L, WONG Q, ISAAC-RENTON J An outbreak of Cryptosporidium parvum in a Surrey pool with detection in pool water sampling. Canada Communicable Disease Report , v30, n7, p. 61-66, 2004. LUCY, F. E; CONNOLLY, M; GRACZYK, T, K; TAMANG, L; SULLIVAN, M. R; MASTITSKY, S. E. Zebra mussels (Dreissena polymorpha) are effective sentinels of water quality irrespective of their size. Aquatic Invasions, v. 5, n. 1, p. 49-57, 2008. LUNA, S; LILIANA, R. L; CHINCGILLA, M.; CATARINELLA, G. Presencia de ooquistes de Cryptosporidium spp en aguas superficiales en Costa Rica. Parasitologia Latinoamericana v.57, p. 63-65, 2002. MACKENZIE, W.R.; HOXIE, N.J.; PROCTOR, M.E.; GRADUS, M.S.; BLAIR, K.A.; PETERSON,D.E.; KAZMIERCZAK, J.J.;ADDISS, D.G.; FOX, K.R.; ROSE, J.B. A massive outbreak in Milwaukee of Cryptosporidium infection transmitted through the public water supply. The New England Journal of Medicine, v. 331, p. 161–7, 1994. MACRAE, M; HAMILTON, C; STRACHAN, N.J.C; WRIGHT, S; OGDEN, I.D. The detection of Cryptosporidium parvum and Escherichia coli O157 in UK bivalve shellfish. Journal of Microbiological Methods, v. 60, p. 395–401, 2005. MARENZI, A. W. C.; BRANCO, J. O. O mexilhão Perna perna (Linnaeus) (Bivalvia, Mytilidae) em cultivo na Armação do Itapocoroy, Santa Catarina, Brasil. Rev. Bras. de Zool. v. 22, n.2, p. 394-399, Junho 2005. MARINHA DO BRASIL. Carta Náutica 2011. Disponível em http://www.mar.mil.br/dhn/chm/cartas/download/cartasbsb/cartas_digitais_internet.htm. Acesso em junho de 2011. MARTINEZ, A, L. N; ÁGUILAB, C; BORNAY-LLINARESA, F. J. Cryptosporidium: un género en revisión. Situación en España. Enferm Infecc Microbiol Clin, v. 29, n. 2, p. 135– 143, 2011. MASCARINI L M; DONALÍSIO, M. R. Giardíase e criptosporidiose em crianças institucionalizadas em creches no estado de São Paulo. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 39, n. 6, p. 577-579, 2006. MCGUIGAN, C.. Cryptosporidium outbreak after a visit to a wildlife centre in northeast Scotland: 62 confirmed cases. Eurosurveillance, v.10, n. 4, 2005. McLAUCHLIN, J.; PEDRAZA-DIAZ, S.; AMAR-HOETZENEDER, C.; NICHOLS, G. L. Genetic Characterization of Cryptosporidiumstraisn from 218 patientes with diarrhea 78 diagnosed as having sporadic cryptosporidiosis. Jounal of Clinical Microbiology. v.37, n.10, 1999. MEIRELES, M.V.; SOARES, R.M. DOS SANTOS, M.M.; GENNARI, S.M. Biological studies and molecular characterization of a Cryptosporidium isolate from ostriches (Struthio camelus). Journal for Parasitology, v. 92, n. 3, p.623-626, 2006. MEISEL, J.L.; PERERA, D.R.; MELIGRO, C.; RUBIN, C.E. Overhelimng watery diarrhea associated with a Cryptosporidium in a imunossupressed patient. Gastroenterology, v.70, p.1156-1160, 1976. MENDONÇA, C; ALMEIDA, A; CASTRO, A; DELGADO, M. L; SOARES, S; COSTA, J. M. C; CANADA, N. Molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia isolates from cattle from Portugal. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p. 47-50, 2007. MILLER, W. A; ATWILL, E. R; GARDNER, I. A; MILLER, M. A; FRITZ, H. M; HEDRICK, R. P; MELLI, A. C; BARNES, N. M; CONRAD, P. A. Clams (Corbicula fluminea) as bioindicators of fecal contamination with Cryptosporidium and Giardia spp. In freshwater ecosystems in California. Int. J. Parasitol.v. 35, p.673–684, 2005. MILLER, W. A; MILLER, M. A; GARDNER, I. A; ATWILL, E. R; HARRIS, M; AMES, J; JESSUP, D; MELLI, A; PARADIES, D; WORCESTER, K; OLIN, P; BARNES, N; CONRAD, P.A. New genotypes and factors associated with Cryptosporidium detection in mussels (Mytilus spp.) along the California coast. International Journal for Parasitology, v. 35, p. 1103–1113, 2006. MINISTÉRIO DA PESCA E AQUICULTURA, 2010 disponível em: http://www.mpa.gov.br/#imprensa/2011/MAIO/nt_MAI_13-05-O-Ministerio-da-Pesca-e- Aquicultura-disponibiliza; Acesso em julho de 2011. MISIC, Z., ABE, N. Subtype analysis of Cryptosporidium parvum isolates from calves on farms around Belgrade, Serbia and Montenegro, using the 60 kDa glycoprotein gene sequences. Parasitology. v.134, p. 351–358, 2007. MOHANDAS K, SEHGAL R, SUD A, MALLA N Prevalence of intestinal parasitic pathogens in HIV-seropositive individuals in Northern India. Japanese Journal of Infectious Diseases. v. 55, p.83-84, 2002. MORGAN-RYAN, U. M., FALL, A.; WARD, L. A.; HIJJAWI, N.; SULAIMAN, I.; FAYER, R.; THOMPSON, R. C.; OLSON, M. ; LAL, A.; XIAO, L. Cryptosporidium hominis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) from Homo sapiens. Journal of Eukaryotic Microbiology. v. 49, n. 1, p.433–440, 2002. NAPPIER, S.P.; GRACZYK, T.K.; TAMANG, L.; SCHWAB, K.J. Co-localized Crassostrea virginica and Crassostrea ariakensis Oysters differ in bioaccumulation, retention and depuration of microbial indicators and human enteropathogens. Journal of Applied Microbiology. v.52, p. 198-213, 2010. 79 NEWMAN, R.D.; JAEGER, K.L.;WUHIB, T.; LIMA, A.A.;GUERRANT, R.L.; SEARS, C.L. Evaluation of an antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of Cryptosporidium oocysts. Journal Clinical Microbiology. v. 31, p. 2080–2084, 1993. NSW FOOD AUTHORITY. Food Regulation 2010. Disponível em <http://www.foodauthority.nsw.gov.au/industry/food-standards-andrequirements/ legislation/foodregulation/>. Acesso em julho de 2011. O’BRIEN, E., MCINNES, L., RYAN, U. Cryptosporidium GP60 genotypes from humans and domesticated animals in Australia, North America and Europe. Exp. Parasitol. V.118, p. 118–121, 2008. O’CONNOR, P. National distribution of chemical concentrations in mussels and oysters in the USA. Marine Environmental Research, v. 53, p. 117–143, 2002. O’DONOUGHUE, P. J. Cryptosporidium and cryptosporidiosis in man and animals. International Journal for Parasitology. v. 25, n. 2, p. 139-195, 1995. OLIVEIRA-SILVA, M. B et al. Seasonal profile and level of CD4 Seasonal profile and level of CD4+ lymphocytes in the occurrence of cryptosporidiosis and cystoisosporidiosis in HIV/Aids patients in the Triângulo Mineiro region, Brazil. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. v.40, n. 5, p. 512-515, 2007. ORDÓÑEZ, J.A.; RODRÍGUEZ, M.I.C.; ÁLVAREZ, L.F.; SANZ, M.L.G., MINGUILLÓN, G.D.G.F. PERALES, L.H.; CORTECERO, M.D.S. Tecnologia de alimentos: alimentos de origem animal. Porto Alegre: Artmed,. 2005, v.2, 279 p. OSAKI SC, COSTA AO, OLIVEIRA-SILVA MB, PEREIRA JT, PAULINO RC, CASTRO EA, THOMAZ-SOCCOL V Otimização da técnica de PCR para detecção de Cryptosporidium em água, pp 1-9. XVI Simpósio Nacional de Bioprocessos, Curitiba, 2007. OSHIRO, E.T; DORVAL, M.E.C; NUNES, V.L.B; SILVA, M.A.A; SAID, L.A.M Prevalência do Cryptosporidium parvum em crianças abaixo de 5 anos, residentes na zona urbana de Campo Grande, MS, Brasil, 1996. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical v.33, n. 3, p.277-280, 2000. PENG, M.M., WILSON, M.L., HOLLAND, R.E., MESHNICK, S.R., LAL, A.A., XIAO, L. Genetic diversity of Cryptosporidium spp. in cattle in Michigan: implications for understanding the transmission dynamics. Parasitol.Res. v. 90, p. 175–180, 2003. PEREIRA, C.S.; VIANA, C.M.; RODRIGUES, D.P. Vibrio parahaemolyticus produtores de uréase isolados a partir de ostras (Crassostrea rizophorae) coletadas in natura em restaurantes e mexilhões (Perna perna) de banco natural. Ciência e Tecnologia de Alimentos, Campinas: Sociedade Brasileira de Ciência e Tecnologia de Alimentos, v.24, n.4, p.591-595, out.-dez. 2004. PEREIRA, S.J., RAMIREZ, N.E., XIAO, L., WARD, L.A. Pathogenesis of human and bovine Cryptosporidium parvum in gnotobiotic pigs. J. Infect. Dis. v.186, p. 715–718, 2002. 80 PLUTZER. J.; KARANIS, P. Genetic polymorphism in Cryptosporidium species: an update. Veterinary Parasitology, v. 165, n. 12, p. 187-199, 2009. POMMEPUY, M; DUMANS, F; CAPRAIS, M. P; CAMUS, P; LEMENNEC, C; PARNAUDEAU, S; HAUGARREAU, L; SARRETTE, B; VILAGINES, P; POTHIER, P; KHOLI, E; LEGUYADER, F. Sewage impact on shellfish microbial contamination. Water Sci. Technol, v. 50, p. 117–124, 2004. POZIO E. et al. Clinical cryptosporidiosis and human immunodeficiency virus (HIV)-induced immunosuppression: findings from a longitudinal study of HIV-positive and HIVnegative former injection drug users. The Journal of Infectious Diseases v.176, p.969-975, 1997. PUTIGNANI, L; MENICHELLA, D. Global Distribution, Public Health and Clinical Impact of the Protozoan Pathogen Cryptosporidium. Hindawi Publishing Corporation Interdisciplinary Perspectives on Infectious Diseases, v. 2010, Article ID 753512, p. 39, 2010. REDLINGER T, CORELLA-BARUD V, GRAHAM J, GALINDO A, AVITIA R, CARDENAS V Hyperendemic Cryptosporidium and Giardia in households lacking municipal sewer and water on the United StatesMexico border. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. v. 66, n.6, p. 794-798, 2002. REDUKER D.W; SPEER C. A; BLIXT J. A. Ultrastructure of Cryptosporidiumparvumoocysts and encysting sporozoites as revealed by high resolution scanning electron microscopy. J. Protozool, v 32, p. 708-711, 1985. REICHENBACH-KLINKE, H.H.; AHNE, W.; NEGELE, R.D. Enfermedades de los peces. Zaragoza: Acribia, 1982. 507 p. RESGALLA JR., C.R.; WEBER, L.I.; CONCEIÇÃO, M.B. O mexilhão Perna perna (L.): biologia, ecologia e aplicações. Rio de Janeiro: Interciência, 2008. 324p. RIMHANEN-FINNE, R; RONKAINEN, P;. HA¨NNINEN, M.-L. Simultaneous detection of Cryptosporidium parvum and Giardia in sewage sludge by IC-PCR. J. Appl. Microbiol, v. 91, p. 1030–1035, 2002. ROBERTSON, L. J; GJERDE, B. Occurrence of parasites on fruits and vegetables in Norway. J. Food Prot, v. 64, p. 1793–1798, 2008. ROBERTSON, L. J; GJERDE, B; HANSEN, E. F. et al. A water contamination incident in Oslo, Norway during October 2007; a basis for discussion of boil-water notices and the potential for post-treatment contamination of drinking water supplies. J. Water Health, v. 7, p. 55-66, 2009. ROBERTSON, L.J., CAMPBELL, A.T., SMITH, H.V. Survival of Cryptosporidium parvum oocysts under various environmental pressures. Appl. Environ. Microbiol. v.58, p. 3494– 3500, 1992. ROBERTSON, L.J; FORBERG, T; HERMANSEN, L; GJERDE, B.K; ALVSVAG, J. O; LANGELAND, N. Cryptosporidium parvum infections in Bergen, Norway, during an 81 extensive outbreak of waterborne giardiasis in autumn and winter 2004. Applied and Environmental Microbiology. v.72, n3, p. 2.218-2.220, 2006. ROBINSON, G. et al. Unusual Cryptosporidium Genotypes in Human Cases of Diarrhea. Emerging Infectious Diseases, v. 14, n. 11, 2008. ROBINSON, G; WRIGHT, S; ELWIN K; et al. Re-description of Cryptosporidium cuniculus Inman and Takeuchi, 1979 (Apicomplexa: Cryptosporidiidae): Morphology, biology and phylogeny. Int J Parasitol. 2010. ROCKZANSKI, M.; COSTA, S. W.; BOLL, M. G.; OLIVEIRA NETO, F. M., A evolução da aqüicultura no Estado de Santa Catarina, Brasil. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE AQÜICULTURA, Florianópolis. Anais. Florianópolis, ABRAQ, 2000. ROSE, J.B., LISLE, J.T., LECHEVALLIER, M. Waterborne cryptosporidiosis: incidence outbreaks, and treatment strategies. In: Fayer, R. (Ed.), Cryptosporidium and Cryptosporidiosis. CRC Press, Boca Raton, FL, 1997. p. 93-110. ROSSIGNOL, J. F. Cryptosporidium and Giardia: Treatment Options and Prospects for New Drugs Jean-François. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 45-43, 2010. RUPPERT, E. E.; BARNES, R. D. Zoologia dos Invertebrados. 6ª ed. São Paulo, Editora Livraria Roca Ltda. 1996, p. 412- 451. RYAN, U. M. Cryptosporidium in birds, fish and amphibians. Experimental Parasitology, v. 124, n.1, p.113-120, 2010. RYAN, U. M; Xiao,L. “Molecular epidemiology and typing of non-human isolates of Cryptosporidium,” In: Giardia and Cryptosporidium: From Molecules to Diseases, G. ORTEGA-PIERRES, G; CACCIO, S. M; FAYER, R; MANK, T. G; SMITH, H. V; R. C. A. Thompson, Eds., chaper VI, pp. 65–80, CABI, Oxfordshire, UK, 2009. RYAN, U.M, POWER, M; XIAO, L. Cryptosporidium fayeri n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) from the Red Kangaroo (Macropus rufus). J Eukaryot Microbiol v.55, n. 22-26, 2008. SALAYA, J. J.; BEAUPERTHUY, I.; MARTINEZ, J. Estudos sobre a la biologia, pesqueira y cultivo del mejillon, Perna perna en Venezuela. Minist. Agric. Y Cria. In Inf. Tec. n.62, p. 50, 1973. SANTI´N, M., TROUT, J.M., FAYER, R. A longitudinal study of cryptosporidiosis in dairy cattle from birth to 2 years of age. Vet. Parasitol. V.155, p. 15–23, 2008. SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; FAYER, R. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia species and genotypes in sheep in Maryland. Vet Parasitol, v. 146, p.17-24, 2004. SANTOS, E. Moluscos do Brasil: vida e costumes. Belo Horizonte: Itatiaia Ltda, Coleção Zoologia Brasílica, v.7, 1982. 141 p. 82 SANTOS, M. M. A. B. et al. Cryptosporidium infection in ostriches (Struthio camelus) in Brazil: clinical, morphological and molecular studies. Revista Basileira de Ciência Avícola, v. 7, n. 2, 2009. SAVIOLI L, SMITH H, THOMPSON A. Giardia and Cryptosporidium join the ‘Neglected Diseases Initiative’. Trends Parasitol. v.22, p. 203-208, 2006. SCHETS, F. M; HAROLD, H. J. M; BERG, V. D; ENGELS, G. B; LODDER, W. J; HUSMAN, A. M. R. Cryptosporidium and Giardia in commercial and non-commercial oysters (Crassostrea gigas) and water from the Oosterschelde, the Netherlands. Int. J. Food. Microbiol, v. 113, p. 189–194, 2007. SCHNYDER, M. et al. Prophylactic and therapeutic efficacy of nitazoxanide against Cryptosporidium parvum in experimentally challenged neonatal calves. Veterinary Parasitology, v. 160, p. 149-154, 2009. SCHRIEWER, A; WEHLMANN, S; WUERTZ. Improving qPCR efficiency in environmental samples by selective removal of humic acids with DAX-8. Journal of Microbiological Methods, v. 85, p. 16–21, 2011. SCORZA, A. V.; BREWER, M. M.; LAPPIN, M. R. Polymerase Chain Reaction for the detection of Cryptosporidium spp. In cat feces. Joural of Parasitology. v. 89, n. 2, p.423- 426, 2003. SECRETARIA ESPECIAL DE AQÜICULTURA E PESCA - SEAP. Presidência da República - Estatística da Aqüicultura e Pesca no Brasil 2005. Disponível em http://www.presidencia.gov.br/estrutura_presidencia/seap/estatistica/, acesso em junho de 2008. Série Manuais BMLP de Maricultura, Cultivo de Mexilhões; Brazilian Mariculture Linkage Program – Programa Brasileiro de Intercâmbio em Maricultura, p. 6, 2003. SHAHIDUZZAMAN, M. et al. Combination of cell culture and quantitative PCR for screening of drugs against Cryptosporidium parvum. Veterinary Parasitology. v.162, n. 3-4, p. 271-277, 2010. SILVA, C. G. M. da et al. Ocorrência de Cryptosporidium spp. e outros parasitas em hortaliças consumidas in natura, no Recife. Ciência & Saúde Coletiva. v. 10, p. 63-69, 2004. SLIFKO, T. R. et al. Emerging parasite zoonoses associated with water and food. International Journal for Parasitology, v. 30, p. 1379-1393, 2000. SMITH, H. V; ROSE, J. B..Waterborne cryptosporidiosis. Parasitology Today. v.6, p.8-12, 1998. SMITH, H.V.; CAMPBELL, B.M.; GRIMASON, A.M. A microscopic system with a dual band filter for the simultaneous enumeration of Cryptosporidium parvum oocysts and sporozoites. Water Research, v. 37, n. 10, p. 2525-2527, 2002. 83 SMITH, H.V.; NICHOLS, R.A.; MALLON, M.; MACLEOD, A.; TAIT, A.; REILLY, W.J.; BROWNING, L.M.; GRAY, D.; REID, S.W.; WASTLING, J. M. Natural Cryptosporidium hominis infections in Scottish cattle. Veterinary Records. v. 156, n. 22, p.710-711. 2006. SMITH, J. L. Cryptosporidium and Giardia as agents of foodborne disease. Journal of Food Protection. v.56, n.5, p. 451-461, 1993. SOBA, B., LOGAR, J. Genetic classification of Cryptosporidium isolates from humans and calves in Slovenia. Parasitology. v.135, p. 1263–1270, 2008. SOBA, B., PETROVEC, M., MIOC, V., LOGAR, J. Molecular characterization of Cryptosporidium isolates from humans in Slovenia. Clin. Microbiol. Infect. v.12, p. 918– 921, 2006. STORER, T. L.; USINGER, R. L. Zoologia Geral. 2ªed. São Paulo, Companhia Editora Nacional. 1976. p.418- 425. SULAIMAN, I.M., et al. Unique endemicity of cryptosporidiosis in children in Kuwait. J. Clin. Microbiol. v.43, p. 2805–2809, 2005. TAMBURRINI A, TOSINI F, LA ROSA G, POZIO E, CACCIÒ S Identification and characterization Identification and characterization of three antigenic proteins from Cryptosporidium parvum sporozoites using a DNA library expressing poly-histidine tagged peptides. International Journal for Parasitology. v. 29, n.12, p.1.925-1.933. 1999. TAMBURRINI, A; POZIO, E. Long-term survival of Cryptosporidium parvum oocysts in seawater and in experimentally infected mussels (Mytilus galloprovincialis). Int. J. Parasitol, v. 29, p. 711–715, 1999. TUMWINE J K, KEKITIINWA A, BAKEERA-KITAKA S, NDEEZI G, DOWNING R, FENG X, AKIYOSHI DE, TZIPORI S Cryptosporidiosis and microsporidiosis in Ugandan children with persistent diarrhea with and without concurrent infection with the human immunodeficiency virus. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. v.73, n. 5, p.921-925, 2005. TZIPORI S, WIDMER G. A hundred-year retrospective on cryptosporidiosis. Trends Parasitol. v.24, p. 184-189, 2008. WANG, K, X, LI CP, WANG J, PAN BR Epidemiological survey of cryptosporidiosis in Anhui Province China. World Journal of Gastroenterology. v.8, n. 2, p. 371-374, 2002. WIELINGA, P. R, et al. Molecular epidemiology of Cryptosporidium in humans and cattle in The Netherlands. Int J Parasitol v.38, p. 809-817, 2008. WINDDWS, J. et al. Scope for growth and contaminant levels in North Sea mussels Mitilus edulis. Marine Ecology- progress series. n.127, p. 131-148, 1995. XIAO, L.; FAYER, R., Molecular characterization of species and genotypes of Cryptosporidium and Giardia and assessment of zoonotic transmission. International Journal for Parasitology, v. 38, p. 1239-1255, 2008. 84 XIAO, L.; FAYER, R.; RYAN, U.; UPTON, S. Cryptosporidium taxonimy: Recent advances and Implications for public health. Clinical Microbiological Reviews. v.17, n.1, p.72-92. 2004. XIAO, L.; FENG Y. Zoonotic cryptosporidiosis. FEMS Immunologic Medical Microbiology, v. 52, n. 3, p.309-323, 2008. XIAO, L.; RYAN, U.M. Cryptosporidiosis: an update in molecular epidemiology. Current Opinion in Infection Diseases, v. 17, p. 483–90, 2004. XIAO, L.; . MORGAN, U. M; LIMOR, J.; ESCALANTE, A.; ARROWOOD, M.; SHULAW, W.; THOMPSON, R. C. A. FAYER, R. Genetic Diversity within Cryptosporidium parvum and Related Cryptosporidium Species. Applied and Environmental Microbiology, p. 3386–3391, 1999. ZALI, M R, MEHR, A J, REZAIAN M, MEAMAR A R, VAZIRI S, MOHRAZ M Prevalence of Prevalence of intestinal parasitic pathogens among HIV-positive individuals in Iran. Japanese Journal of Infectious Diseases v.57, p. 268-277, 2004.https://tede.ufrrj.br/retrieve/54424/2012%20-%20Geisi%20Ferreira%20Marin%c3%a9.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/3532Submitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2020-05-18T15:32:46Z No. of bitstreams: 1 2012 - Geisi Ferreira Mariné.pdf: 4392984 bytes, checksum: 740282cc9563e512044767f957ac12ee (MD5)Made available in DSpace on 2020-05-18T15:32:46Z (GMT). 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description O gênero Cryptosporidium possui espécies capazes de infectar vários hospedeiros animais, tanto domésticos quanto silvestres e também o homem, sendo a única forma de transmissão a ingestão de oocistos, que pode ocorrer através da água e alimentos contaminados. Fontes de contaminação tais como a drenagem hídrica das fezes de animais, o uso de fertilizantes orgânicos e o lançamento de esgotos parcialmente ou não tratados favorecem a contaminação de vários ambientes aquáticos por este protozoário já que os oocistos são eliminados nas fezes dos hospedeiros. Nos mares a presença de Cryptosporidium spp. compromete a qualidade do pescado, como por exemplo mexilhões Perna perna presentes na costa brasileira. O trabalho teve como objetivos: diagnosticar e caracterizar geneticamente a(s) espécie(s) e/ou genótipo(s) de Cryptosporidium em mexilhões Perna perna extraídos de costões rochosos de duas localidades, Lage Preta e Praia do Saco, no Município de Mangaratiba, Estado do Rio de Janeiro; realizar o seqüenciamento e análises filogenéticas, incluindo o depósito das seqüências de Cryptosporidium no GenBank; correlacionar a presença do protozoário com o índice de precipitação pluviométrica da região e estabelecer possíveis riscos da ingestão dos mexilhões, através da identificação de genótipo(s) e/ou espécie(s) com potencial zoonótico. Foram realizadas coletas mensais de março de 2009 a fevereiro de 2010, totalizando 12 coletas. A cada coleta foram separados 30 animais de cada local e divididos em três grupos com 10 animais cada, totalizando 72 amostras. Para as análises, o DNA extraído dos tecidos dos mexilhões foi utilizado na amplificação das seqüências do 18SSU rRNA através da técnica Nested-PCR. Para a identificação de espécies os amplicons foram seqüenciados. Durante todos os meses estudados foi possível diagnosticar amostras de mexilhões Perna perna positivas para Cryptosporidium de pelo menos um dos locais estudados. Foi possível a identificação de três espécies C. andersoni, C. meleagridis e C. parvum nas amostras obtidas de mexilhões dos dois locais, através da observação de similaridades quando comparadas às seqüências já existentes no GenBank. A análise estatística mostrou que não houve influência da chuva ou da falta desta sobre a positividade das amostras de mexilhões para Cryptosporidium, de ambos os locais. Com os resultados obtidos, conclui-se que há probabilidade de contaminação humana através da ingestão de mexilhões provenientes da região estudada
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dc.relation.references.por.fl_str_mv ABE, N.; KIMATA, I.; ISEKI, M. Comparative study of PCR-based Cryptosporidium discriminating techniques with a review of literature. Kansenshogaku Zassi. v. 76, n. 10, p. 869-881. 2002. ADAMSKA, M; LEOÑSKA-DUNIEC, A.; MACIEJEWSKA, A; SAWCZUK, M; SKOTARCZAK, B PCR and Real Time PCR for the Detection of Cryptosporidium parvum Oocyst DNA. Folia biologica (Kraków), v. 59, n. 3-4 (2011), p.115-120, 2011. ADJEI, A; ARMAH, H; RODRIGUES, O; RENNER, L; BORKETEY, P; AYEH-KUMI, P; ADIKU, T; SIFAH, E; LARTEY, M Cryptosporidium spp., a frequent cause of diarrhea among children at the Korle-bu Teaching Hospital, Accra, Ghana. Japanese Journal of Infectious Diseases, v. 57, p. 216-219, 2004. ADL, S. M. et al. The new higher level classification of eucaryotes with emphasis on the taxonomy of Protists. Journal of Eukaryotic Microbiology, v. 52, n. 5, p. 399-451, 2005. AGNEWS D. G et al. Cryptosporidiosis in northeastern Brazilian children: association with increases diarrhea morbidity. The Journal of Infectious Diseases, v. 177, n. 3, p. 754-760, 1998. AJJAMPUR, S.S. et al. Molecular and spatial epidemiology of cryptosporidiosis in children in a semiurban community in South India. J. Clin. Microbiol. v.45, p.915–920, 2007. AKIYOSHI, D. E. et al. Genetic Analysis of a Cryptosporidium parvum human genotype I isolate passaged through different host species. Infection and Immunity. v.70, n. 10, p. 5670-5675, 2002. ALMEIDA, T. T. C. Padronização e avaliação de métodos moleculares para detecção de oocistos de Cryptosporidium spp (Apicomplexa: Cryptosporiidae) em amostras fecais: extração de DNA genômico e PCR (reação em cadeia pela polimerase). 130 f. Tese (Doutorado em Saúde Pública), Universidade de São Paulo (USP), São Paulo, 2004. ALVES, M., XIAO, L., SULAIMAN, I., LAL, A.A., MATOS, O., ANTUNES, F. Subgenotype analysis of Cryptosporidium isolates from humans, cattle and zoo ruminants in Portugal. J. Clin. Microbiol. v.41, p 2744–2747. 2003. AMAR, C. F. L.; DEAR, P. H.; McLAUCHLIN, J. Detection and identification Br real-time PCR/RFLP analyses of Cryptosporidium species from human faeces. Letters in Applied Microbiology. v.38, n.1, p. 217-222, 2004. AMARANTE, H. M. B. Ocorrência do Cryptosporidium sp. em indivíduos imunocompetentes e imunodeficientes em Curitiba. 122 f. Dissertação (Mestrado em Medicina Interna) - Setor de Ciências da Saúde, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 1992. 69 AMIN O. M Seasonal prevalence of intestinal parasites in the United States during 2000. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene v.66, n.6, p. 799-803, 2002. ANDREU, B. El cultivo Del mejillón en Europa. (I) Aspectos biológicos y Ecológicos: Enemigos y parasitos. Anais, Acad. Bras. Cienc. v.47, p.23-46, 1976. ARAÚJO, A. J. U. dos S. et al. Genotypic identification of Cryptosporidium spp. isolated from hiv-infected patients and immunocompetent children of São Paulo, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, v. 50, n. 3, 2008. ARCOVERDE C. A. C. Enteroparasitoses em pacientes infectados com o Vírus da Imunodeficiência Humana (HIV) atendidos no Hospital das Clínicas da UFPE. Dissertação de mestrado, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2001 AVELAR, J. C. L. Manual de Mitilicultura, Ministério do Meio Ambiente/Plano Nacional de Meio Ambiente/Plano de Execução Descentralizada. 1ª Edição. Brasília, 1998, p.164. BARNES, R. D. Zoologia dos Invertebrados. 4ª ed. São Paulo, Editora Livraria Roca Ltda., 1990, p. 419-463. BARTA JR, THOMPSON R.C.A. What is Cryptosporidium? Reappraising its biology and phylogenetic affinities. Trends Parasitol, v. 22, p. 463-468, 2006. BERTULLO, V. Tecnologia de los productos y Subproductos de Pescados, Moluscos y Crustáceos. Ed. Hemisferio Sur. 1ª edición. Buenos Aires-Argentina, 1975. p.538. BLUNT, D.S., KHRAMSTOV, N.V., UPSTON, S.J., AND MONTELONE, B.A. Molecular karyotype analysis of Cryptosporidium parvum: Evidence for eight chromosomes and a lowmolecular- size molecule. Clin. Diagn. Lab. Immunol. v.4, p. 11–13, 1997. BOEHMER, T. K. et al. Cryptosporidiosis from a community swimming pool: outbreak investigation and follow-up study. Epidemiology and Infection, v. 137, p. 1651- 1654, 2009. BOOM, R.; SOL, C. J. A..; SALIMANS, M. M. M.; JANSEN, C. L.; WERTHEIM-VAN DILLEN, P. M. E.; NOORDAA, J. Rapid and simple Method for purification of Nucleic Acids. Journal of Clinical Microbiology, v.28, n. 3, p. 495-503, 1990. BROOK, E.J., ANTHONY HART, C., FRENCH, N.P., CHRISTLEY, R.M., Molecular epidemiology of Cryptosporidium subtypes in cattle in England. Vet. J. v.179, p.378–382, 2009. CACCIÒ, S.; CAMILLI, R.; LA ROSA, G.; POZIO, E. Establishing the Cryptosporidium parvum karyotype by NotI and SfiI restriction analysis and Southern hybridization. Gene, v. 28, n. 1, p. 73-79, 1998. CACCIÒ, S.M. Molecular epidemiology of human cryptosporidiosis. Parasitology, v. 47, p. 185–92, 2005. 70 CAMA V. A, BERN C, ROBERTS J, CABRERA L, STERLING C.R, ORTEGA Y, GILMAN R.H, XIAO L. Cryptosporidium species and subtypes and clinical manifestations in children, Peru. Emerg Infect Dis. v. 14, p. 1567-1574, 2008. CAMA V. A, ROSS J. M, CRAWFORD S, KAWAI V, CHAVEZ-VALDEZ R, VARGAS D, VIVAR A, TICONA E, NAVINCOPA M, WILLIAMSON J, ORTEGA Y, GILMAN R. H, BERN C, XIAO L. Differences in clinical manifestations among Cryptosporidium species and subtypes in HIV-infected persons. J Infect Dis. V. 196: p. 684-691, 2007. CAMA V. A., BERN C., SULAIMAN I.M., GILMAN R.H., TICONA E., VIVAR A., KAWAI V., VARGAS D., ZHOU L., XIAO L.. Cryptosporidium species and genotypes in HIV-positive patients in Lima, Peru. J. Eukaryotic Microbiol., v.50(Suppl.), p. 531-533, 2003. CANTUSIO NETO, R., SANTOS, L. U; FRANCO, R. M. B. Evaluation of activated sludge treatment and the efficiency of the disinfection of Giardia species cysts and Cryptosporidium oocysts by UV at a sludge treatment plant in Campinas, southeast Brazil. Wat. Sci. Technol. 54(3), 89–94, 2006. CARPENTER, C., FAYER, R., TROUT, J., BEACH, M. Chlorine disinfection of recreational water for Cryptosporidium parvum. Emerg. Infect. Dis. v.5, p. 579–584. 1999. CARRENO, R.A.; MARTIN, D.S.; BARTA, J.R. Cryptosporidium is more closely related to the gregarines than to coccidia as shown by phylogenetic analysis of apicomplexan parasites inferred using small-subunit ribosomal RNA gene sequences. Parasitology Research, v. 85, n. 11, p. 899-904, 1999. CARVALHO FILHO, J. Panorama da malacocultura brasileira. Panorama da Aqüicultura. São Paulo, v.64, p. 25-31, 2001. CARVALHO-ALMEIDA, T.T; CASIMIRO, A.M; MATTE, G.R; MATTE, M.H. Na improved method for extracting Cryptosporidium sp DNA from preserved faeces and potential application for cryptosporidiosis surveillance. Rev Bras Vig Sanit. v. 1, p. 208-231, 2006. CENTRO DE REFERÊNCIA E TREINAMENTO EM DOENÇAS SEXUALMENTE TRANSMISSÍVEIS/AIDS (CRT-DST/AIDS), São Paulo, 1997. Disponível em http://www.saude.sp.gov.br/centro-de-referencia-e-treinamento-dstaids-sp/. Acesso em agosto de 2009. CHACÍN-BONILLA L, BARRIOS F, SANCHEZ Y Environmental risk factors for Cryptosporidium infection in an island from Western Venezuela. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 103, n. 1, p.45-49, 2008. CHALMERS, R. M; ROBINSON G; ELWIN K, HADFIELD S. J, THOMAS E; WALTKINS J; CASEMORE D, K. D. Detection of Cryptosporidium species and sources of contamination with Cryptosporidium hominis during a waterborne outbreak in North West Wales. J Water Health. v 8, p.311–25, 2010. 71 CHALMERS, R.M; HADFIELD, S.J; JACKSON C.J; ELWIN K, XIAO L, HUNTER P. Geographic linkage and variation in Cryptosporidium hominis. Emerg Infect Dis. V.14, p. 496-498, 2008. CHEN, X M; KEITHLY JS, PAYA CV, LARUSSO NF. Cryptosporidiosis. N Engl J Med. 30; v.346, n. 22, p. 1723-31, 2002. COLLINS, M. V.; FLICK, G. J; SMITH, S. A; FAYER, R.; RUBENDALL, E.; LINDSAY, D. The Effects of E-beam Irradiation and Microwave Energy on Eastern Oysters (Crassostrea virginica) Experimentally Infected with Cryptosporidium parvum. J. Eukaryot. Microbiol., v.52, n.6, p. 484–488, 2005. CORNELISEN, C. D; GILLESPIE, P. A; KIRS, M; YOUNG, R. G; FORREST, R. W; BARTER, P. J; KNIGHT, B. R; HAWOOD, V. J. Motueka River plume facilitates transport of ruminant faecal contaminants into shellfish growing waters, Tasman Bay, New Zealand New Zealand. Journal of Marine and Freshwater Research. v. 45, n. 3, p. 477-495, 2011. CRAWFORD, F. G; VERMUND, S.H. Human Cryptosporidiosis. Critical Review of Microbiology. n. 16, p 113-159, 1988 CURRENT, W. L.; GARCIA, L. S. Cryptosporidiosis. Clinical Microbiological Reviews, Jul, p. 325-358, 1991. DOWNEY, A. S. et al. Efficacy of Pyrvinium Pamoate against Cryptosporidium parvum Infection In Vitro and in a Neonatal Mouse Model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, v. 52, n. 9, p. 3106-3112, 2008. EMPRESA DE PESQUISA AGROPECUÁRIA E EXTENSÃO RURAL DO ESTADO DE SANTA CATARINA (EPAGRI) Síntese informativa da produção de moluscos (mexilhões, ostras e vieiras) no estado de Santa Catarina em 2009. Disponível em http://www.epagri.rct-sc.br. Acesso em outubro de 2010. EMPRESA DE PESQUISA AGROPECUÁRIA E EXTENSÃO RURAL DO ESTADO DE SANTA CATARINA. (EPAGRI), 2010. Disponível em http://www.epagri.sc.gov.br/. Acesso em janeiro de 2011. FAYER R. Cryptosporidium: a water-borne zoonotic parasite. Vet Parasitol, n. 126, p. 37– 56, 2007. FAYER, R. et al. Detection of Cryptosporidium felis and Giardia duodenalis Assemblage F in a cat colony. Veterinary Parasitology, v. 140, p. 44-53, 2006. FAYER, R. Taxonomy and species delimitation in Cryptosporidium. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 90-97, 2010. FAYER, R., GRACZYK, T.K., LEWIS, E.J., TROUT, J.M., FARLEY, C.A., Survival of infectious Cryptosporidium parvum oocysts in seawater and eastern oysters (Crassostrea virginica) in the Chesapeake Bay. Appl. Environ. Microbiol. v.64, p. 1070–1074. 1998. 72 FAYER, R., LEWIS, E.J., TROUT, J.M., GRACZYK, T.K., JENKINS, M.C., HIGGINS, J., XIAO, L., LAL, A.A., Cryptosporidium in oysters from commercial harvesting sites in the Chesapeake Bay. Emerg. Infect. Dis. V. 5, p. 706–710. 1999. FAYER, R., TROUT, J.M., LEWIS, E.J., SANTIN, M., ZHOU, L., LAL, A.A., XIAO, L. Contamination of Atlantic coast commercial shellfish with Cryptosporidium. Parasitol. Res. 89, 141–145, 2003. FAYER, R., TROUT, J.M., LEWIS, E.J., XIAO, L., LAL, A.A., JENKINS, M.C., GRACZYK, T.K. Temporal variability of Cryptosporidium in the Chesapeake Bay. Parasitol. Res. V. 88, p. 998–1003, 2002 FAYER, R.; MORGAN, U.; UPTON, S.J. Epidemiology of Cryptosporidium: transmission, detection and identification. International Journal for Parasitology, v. 30, n. 12, p. 1305- 1322, 2000. FAYER, R.; SANTÍN, M. Cryptosporidium xiaoi n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in sheep (Ovis aries). Veterinary Parasitology. v. 164, n. 14, p.192-200, 2009. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium ryanae n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos taurus). Veterinary Parasitology. v. 1, n. 3, p. 191-198, 2008. FAYER, R.; SPEER, C. A.; DUBER, J. P. The general Biology of Cryptosporidium. IN: FAYER, R. Cryptosporidium and cryptosporidiosis. CRC Press:Washington, p. 1-60, 1997. FAYER, R; SANTIN, M; TROUT, J.M. Prevalence of Cryptosporidium species and genotypes in mature dairy cattle on farms in eastern United States compared with younger cattle from the same locations. Veterinary Parasitology, v. 145, p 260–266, 2007. FELTUS, D.C., GIDDINGS, C.W., KHAITSA, M. L., MCEVOY, J. M. High prevalence of Cryptosporidium bovis and the deer-like genotype in calves compared to mature cows in beef cow-calf operations. Veterinary Parasitology, v. 151, p. 191–195, 2008. FENG, Y., ALDERISIO, K.A., YANG, W., BLANCERO, L.A., KUHNE, W.G., NADARESKI; C.A., REID, M., XIAO, L., Cryptosporidium genotypes in wildlife from a New York watershed. Appl. Environ. Microbiol.. v.73, p. 6475–6483, 2007. FERGUSON, C.; DEERE, D.; SINCLAIR, M.; CHALMERS, R. M.; ELWIN, K.; HADFIELD, S.; XIAO, L.; RYAN, U.; GASSER, R.; EL-OSTA, Y. A.; STEVENS, M. Meeting repot: Application of genotyping methods to assess risks from Cryptosporidium in watersheds. Environmental Health Perspectives. v. 114, n. 3, p. 430-434, 2006. FERNANDES, F. C. Manual de maricultura. Ministério da Marinha, Instituto Nacional de estudos do Mar. 1985, p. 24. FERNANDES, F. C.; TENENBAUM, D.R.; SAIDAH, F. E. M. Conteúdo estomacal e considerações gerais sobre a alimentação do mexilhão Perna perna (Linné, 1758) Mollusca – Bivalvia. V Simp. Latino Americano sobre oceanografdia biológica. Resumo, p.326, 1978. 73 FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION (FAO). El estado mundial de la pesca y la acuicultura Roma,. 2010. 219p. dispon´vel em http://www.fao.org/docrep/013/i1820s/i1820s.pdf . Acesso em julho de 2011. FRANCO, R.M.B; EBERHARDT, R.; CANTUSIO NETO, R. Occurrence of Cryptosporidium oocysts and Giardia cysts in raw water from the Atibaia river, Campinas, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo v. 42, n. 2, p.109-111, 2001. FREIRE-SANTOS, F; GOMEZ-COUSO, H; ORTEGA-INARREA, M. R; CASTROHERMIDA, J. A; OTEIZA-LOPEZ, A. M; GARCIA-MARTIN, O; ARES-MAZAS, E. Survival of Cryptosporidium parvum oocysts recovered from experimentally contaminated oysters (Ostrea edulis) and clams (Tapes decussatus). Parasitol Res, v. 88, p. 130–133, 2002. FREIRE-SANTOS, F; OTEIZA-LOPEZ, A. M; VERGARA-CASTIBLANCO, C.A; ARESMAZAS, E; ALVAREZ-SUAREZ, E; GARCIA-MARTIN, O. Detection of Cryptosporidium oocysts in bivalve molluscs destined for human consumption. J. Parasitol, v, 86, p. 853–4, 2000. GAMBA, R. C.; CIAPINA, E.M; ESPINDOLA, R.S; PACHECO, A.; PELLIZARI, V. H. Detection of Cryptosporidium sp. Oocysts in groundwater for human consumption in Itaquaquecetuba city, São Paulo-Brazil. Brazilian Journal of Microbiology v.31, p. 151– 153, 2000. GARCIA, L.S.; SHIMIZU, R.Y. Detection of Giardia lamblia and Cryptosporidium parvum antigens in human fecal specimens using the ColorPAC combination rapid solid-phase qualitative immunochromatographic assay. Journal Clinical Microbiology, v.38, p. 1267– 1268, 2000. GARCIA, L.S.; SHIMIZU, R.Y. Evaluation of nine immunoassay kits (enzyme immunoassay and direct fluorescence) for detection of Giardia lamblia and Cryptosporidium parvum in human fecal specimens. Journal Clinical Microbiology, v. 35, p. 1526–1529, 1997. GASSER, R. B. Molecular tools – advances, opportunities and prospects. Veterinary parasitology. v. 136, n. 1, p.69-89, 2006. GASSER, R. B.; ABS EL-OSTA, Y. G. ; CHALMERS, R. M. Eletrophoretic Analyis of genetic variability within Cryptosporidium parvum from imported and autochthonous cases of human cryptosporidiosis in the United Kingdom. Applied and Environmental Microbiology. V.69, n. 5, p. 2719-2730, 2003. GERBA, C.P., ROSE, J.B; HAAS, C.N. Sensitive population: who is at the greatest risk? International Journal of Food Microbiology, n. 30, p. 113–123, 1996. GLABERMAN, S., SULAIMAN, I.M., BERN, C., LIMOR, J., PENG, M.M., MORGAN, U., GILMAN, R., LAL, A.A., XIAO, L. A multilocus genotypic analysis of Cryptosporidium meleagridis. J. Eukaryot. Microbiol. p.19–22, 2001. 74 GOMES, A.H.S.; PACHECO, M.A.S.R.; FONSCECA, Y.S.K.; et al. Pesquisa de Cryptosporidium sp em aguas de fontes naturais e comparacao com analises bacteriologicas, Revista do Instituto Adolfo Lutz, v. 61 (1), p. 59-63, 2002. GOMEZ-BAUTISTA, M., ORTEGA-MORA, L.M., TABARES, E., LOPES-RODAS, V., COSTAS, E. Detection of infectious Cryptosporidium parvum oocysts in mussels (Mytilus galloprovincialis) and cockles (Cerastoderma edule). Appl. Environ. Microbiol. V. 66, p. 1866–1870. 2000. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; AMAR, C. F. L; GRANT, K. A; WILLIAMSON, K., ARES-MAZAS, M. E; MCLAUCHLIN, J. Detection of Cryptosporidium and Giardia in molluscan shellfish by multiplexed nested-PCR. Int. J. Food. Microbiol, n. 91, p. 279–288, 2004. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; HERNANDEZ-CORDOVA, G. A; ARESMAZAS, M. E. A histological study of the transit of Cryptosporidium parvum oocysts through clams (Tapes decussatus). Int. J. Food. Microbiol, n. 102, p. 57–62, 2005. GOMEZ-COUSO, H; FREIRE-SANTOS, F; MARTINEZ-URTAZA, J; GARCIA-MARTIN, O; ARES-MAZAS, M. E. Contamination of bivalve molluscs by Cryptosporidium oocysts: the need for new quality control standards. Int. J. Food. Microbiol, n. 87, p. 97–105, 2003. GOMEZ-COUSO, H; MÉNDEZ-HERMIDA, F; CASTRO-HERMIDA, J. A; ARES-MAZAS E. CRYPTOSPORIDIUM contamination in harvesting areas of bivalve molluscs. J. Food Prot, n. 69, p. 185–90, 2006. GONÇALVES, E. M. do N. et al. Multilocus genotyping of Cryptosporidium hominis associated with diarrhea outbreak in a day care unit in São Paulo. Clinics, v. 61, n. 2, p. 119- 126, 2006. GOOGLE EARTH®. Localização do Município de Mangaratiba, Estado do Rio de Janeiro. Acesso em novembro de 2011. GOUJON, M.; MCWILLIAM, H.; LI, W.; VALENTIN, F.; SQUIZZATO, S.; PAERN, J.; LOPEZ, R. A new bioinformatics analysis tools framework at EMBL-EBI. Nucleic acids research, v. 38, suplemento W, p. w695-699, 2010. GRACZYK, T. K., DA SILVA, A.J., CRANFIELD, M.R., NIZEYI, J.B., KALEMA, G.R., PIENIAZEK, N.J. Cryptosporidium parvum genotype 2 infections in free-ranging mountain gorillas (Gorilla gorilla beringei) of the Bwindi Impenetrable National Park, Uganda. Parasitol. Res. v.87, p. 368–370, 2001. GRACZYK, T. K., FAYER, R., CRANFIELD, M. R; CONN, D. B. Invitro interactions of Asian freshwater clams (Corbicula fluminea) hemocytes and Cryptosporidium parvum oocysts. Appl. Environ. Microbiol, n. 63, p. 2910–2912, 1997. GRACZYK, T. K.; CRANFIELD, M. R.; FAYER, R.; ANDERSON, M.S. Viability and infectivity of Cryptosporidium parvum oocysts are retained upon intestinal passage though a refratory avian host. Applied and Enviromental Microbiology, v.62, p.3234-3237, 1996. 75 GRIFFTHS J. Human cryptosporidiosis: epidemiology, transmission, clinical disease, treatment and diagnosis. Advances in Parasitology, v. 40, p. 37-50, 1998. HENRIQUES, M.B. Resistência do mexilhão Perna perna (Linnaeus, 1758) proveniente de bancos naturais da baixada santista, a variações de temperatura, salinidade, tempo de exposição ao ar e determinação da incidência de parasitismo. Rio Claro, 2004. 102 f. Tese (Doutorado em Ciências Biológicas) - Instituto de Biociências da Universidade Estadual Paulista “Julio de Mesquita Filho”, Rio Claro, 2004. HENRIQUES, P.; O.M., ZAMARIOLI, L.A.; FAUSTINO, J.S. Contaminação bacteriológica no tecido mole do mexilhão Perna perna (Linnaeus, 1758) coletado nos bancos naturais do litoral da Baixada Santista. Arquivos de Ciências do Mar, Ceará: UFCE, LABOMAR, v. 33, p.69-76, 2000. HIJJAWI, N.S., MELONI, B.P., RYAN, U.M., OLSON, M.E., THOMPSON, R.C., Successful in vitro cultivation of Cryptosporidium andersoni: evidence for the existence of novel extracellular stages in the life cycle and implications for the classification of Cryptosporidium. Int. J. Parasitol. v.32, p. 1719–1726, 2004. HUBER, F.; SILVA da, S.; BOMFIM, T.C.B.; TEIXEIRA, K.R.S., BELLO, A.R. Genotypic characterization and phylogenetic analysis of Cryptosporidium sp. from domestic animals in Brazil. Veterinary Parasitology, v.150, p.65-74, 2007. HUNTER, P.R.; HADFIELD, S.J.; WILKINSON, D.; LAKE, I.R.; HARRISON, F.C.; CHALMERS, R.M. Subtypes of Cryptosporidium parvum in humans and disease risk. Emerging Infection Diseases, v. 13, n.1, p. 82-88, 2007. INSTITUTO NACIONAL DE METEOROLOGIA (INMET) – Informação de dados de precipitação pluviométrica da estação de Marambaia, Rio de Janeiro durante os meses de Março /2009 a Fevereiro/2010. IACOVSKI, R.B, BARARDI, C.R.M, SIMÕES C.M.O Detection and enumeration of Cryptosporidium sp. oocysts in sewage sludge samples from the city of Florianópolis (Brazil) by using immunomagnetic separation combined with indirect immunofluorescence assay. Waste Management & Research. v.22, p. 171-176. 2004. JEX, A.R.; GASSER, R.B. Analysis of the genetic diversity within Cryptosporidium hominis and Cryptosporidium parvum from imported and autochthonous cases of human cryptosporidiosis by mutation scanning. Electrophoresis, v. 29, n. 20, p 4119-4129, 2008. JOHNSTON, S.P.; BALLARD, M.M.; BEACH, M.J.; CAUSER, L.; WILKINS, P.P. Evaluation of three commercial assays for detection of Giardia and Cryptosporidium organisms in fecal specimens. Journal Clinical Microbiology, v. 41, p .623–6, 2003. KACAR, A; GUNGOR, F. Comparison of fecal coliform bacteria before and after wastewater treatment plant in the Izmir Bay (Eastern Aegean Sea). Environ Monit Assess, v. 162, p. 355–363, 2010. KACAR; A. Some microbial characteristics of mussels (Mytilus galloprovincialis) in coastal city area. Environ Sci Pollut Res, v. 18, p. 1384–1389, 2011. 76 KARANIS, P., PLUTZER, J., HALIM, N.A., IGORI, K., NAGASAWA, H., ONGERTH, J., LIQING, M. Molecular characterization of Cryptosporidium from animal sources in Qinghai province of China. Parasitol. Res. v.101, p. 1575–1580, 2007. KING, B. J.; HOEFEL, D; DAMINATO, D.P; FANOK, S; MONIS, P. T. Solar UV reduces Cryptosporidium parvum oocyst infectivity in environmental waters. J Appl Microbiol v.104, p. 1311-1323, 2008. KORICH DG, MEAD JR, MADORE MS, SINCLAIR NA, STERLING CR. Effects of ozone, chlorine dioxide, chlorine, and monochloramine on Cryptosporidium parvum oocyst viability. Appl Environ Microbiol, v. 56, p. 1423–8, 1990. TAMURA, K KUMAR, S;., NEI, N. MEGA3: Integrated software for Molecular Evolutionary Genetics Analysis and sequence alignment. Briefings in Bioinformatics v.5, p.150-163, 2004. Disponível: http://www.megasoftware.net/m_con_select.html. Acesso em: Janeiro de 2012. LAGE, H. Coleta e comercialização do mexilhão Perna perna na Baía de Guanabara. Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 2006. 38 f. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Oceanografia) Instituto de Geociências, Departamento de Oceanografia e Hidrologia. Universidade Estadual do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, 2006. LALLO, M. A. Criptosporidiose canina. Clínica Veterinária, São Paulo, v. 1, n. 2, p. 20 - 22, 1996. LANGKJAR, R. B; VIGRE, H; ENEMARK, H. L; MADDOX-HYTTEL, C. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium and Giardia from pigs and cattle in Denmark. Parasitology, v. 134, p. 339–350, 2006. LARKIN, M.A.; BLACKSHIELDS, G.; BROWN, N.P.; CHENNA, R.; MCGETTIGAN, P.A.; MCWILLIAM, H.; VALENTIN, F.; WALLACE, I.M.; WILM, A.; LOPEZ, R.; THOMPSON, J.D.; GIBSON, T.J.; HIGGINS, D.G. ClustalW and ClustalX version 2. Bioinformatics, v.23, n. 21, p. 2947-2948, 2007. LAUBACH, H. E; BENTLEY, C. Z; GINTER, E. L; SPALTER, J. S; JENSEN, L.A. A study of risk factors associated with the prevalence of Cryptosporidium in villages around lake Atitlan, Guatemala. The Brazilian Journal of Infectious Diseases, n. 8, v. 4, p. 319-323, 2004. LEAL, D. A. G; DORES, R. A. P; MARQUES, S. S; DURIGAN, M; GREINERT, G. J. A; MORESCO, V; AMSTUTZ, R. C; MICOLI, A. H, NETO R. C, MONTE BARARDI, R; FRANCO, R. M. B. Sanitary quality of edible bivalve mollusks in southeastern brazil using an U.V based depuration system. Ocean and Coastal Management, 2011. LEAL, D. A. G; PEREIRA, M. A; FRANCO, R. M. B; BRANCO, N; CANTUSIO NETO, R. First report of Cryptosporidium spp. oocysts in oysters (Crassostrea rhizophorae) and cockles (Tivela mactroides). Brazil Journal of Water and Health, v. 6, n. 4, 2008. 77 LÉVESQUE, B.; BARTHE, C.; DIXON, B. R.; PARRINGTON, L. J.; MARTIN, D., DOIDGE, B.; MURPHY, D. Microbiological quality of blue mussels (Mytilus edulis) in Nunavik, Quebec: a pilot study. Can. J. Microbiol. v. 56, p. 968–977, 2010. LI, X; GUYOT, K; DEI-CAS, E; MALLARD, J. P; BALLET, J. J; BRASSEUR, P. Cryptosporidium oocysts in mussels (Mytilus edulis) from Normandy (France). Int. J. Food. Microbiol., v. 108, p. 321–325, 2006. LOUIE K, GUSTAFSON L, FYFE M, GILL I, MACDOUGALL L, TOM L, WONG Q, ISAAC-RENTON J An outbreak of Cryptosporidium parvum in a Surrey pool with detection in pool water sampling. Canada Communicable Disease Report , v30, n7, p. 61-66, 2004. LUCY, F. E; CONNOLLY, M; GRACZYK, T, K; TAMANG, L; SULLIVAN, M. R; MASTITSKY, S. E. Zebra mussels (Dreissena polymorpha) are effective sentinels of water quality irrespective of their size. Aquatic Invasions, v. 5, n. 1, p. 49-57, 2008. LUNA, S; LILIANA, R. L; CHINCGILLA, M.; CATARINELLA, G. Presencia de ooquistes de Cryptosporidium spp en aguas superficiales en Costa Rica. Parasitologia Latinoamericana v.57, p. 63-65, 2002. MACKENZIE, W.R.; HOXIE, N.J.; PROCTOR, M.E.; GRADUS, M.S.; BLAIR, K.A.; PETERSON,D.E.; KAZMIERCZAK, J.J.;ADDISS, D.G.; FOX, K.R.; ROSE, J.B. A massive outbreak in Milwaukee of Cryptosporidium infection transmitted through the public water supply. The New England Journal of Medicine, v. 331, p. 161–7, 1994. MACRAE, M; HAMILTON, C; STRACHAN, N.J.C; WRIGHT, S; OGDEN, I.D. The detection of Cryptosporidium parvum and Escherichia coli O157 in UK bivalve shellfish. Journal of Microbiological Methods, v. 60, p. 395–401, 2005. MARENZI, A. W. C.; BRANCO, J. O. O mexilhão Perna perna (Linnaeus) (Bivalvia, Mytilidae) em cultivo na Armação do Itapocoroy, Santa Catarina, Brasil. Rev. Bras. de Zool. v. 22, n.2, p. 394-399, Junho 2005. MARINHA DO BRASIL. Carta Náutica 2011. Disponível em http://www.mar.mil.br/dhn/chm/cartas/download/cartasbsb/cartas_digitais_internet.htm. Acesso em junho de 2011. MARTINEZ, A, L. N; ÁGUILAB, C; BORNAY-LLINARESA, F. J. Cryptosporidium: un género en revisión. Situación en España. Enferm Infecc Microbiol Clin, v. 29, n. 2, p. 135– 143, 2011. MASCARINI L M; DONALÍSIO, M. R. Giardíase e criptosporidiose em crianças institucionalizadas em creches no estado de São Paulo. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 39, n. 6, p. 577-579, 2006. MCGUIGAN, C.. Cryptosporidium outbreak after a visit to a wildlife centre in northeast Scotland: 62 confirmed cases. Eurosurveillance, v.10, n. 4, 2005. McLAUCHLIN, J.; PEDRAZA-DIAZ, S.; AMAR-HOETZENEDER, C.; NICHOLS, G. L. Genetic Characterization of Cryptosporidiumstraisn from 218 patientes with diarrhea 78 diagnosed as having sporadic cryptosporidiosis. Jounal of Clinical Microbiology. v.37, n.10, 1999. MEIRELES, M.V.; SOARES, R.M. DOS SANTOS, M.M.; GENNARI, S.M. Biological studies and molecular characterization of a Cryptosporidium isolate from ostriches (Struthio camelus). Journal for Parasitology, v. 92, n. 3, p.623-626, 2006. MEISEL, J.L.; PERERA, D.R.; MELIGRO, C.; RUBIN, C.E. Overhelimng watery diarrhea associated with a Cryptosporidium in a imunossupressed patient. Gastroenterology, v.70, p.1156-1160, 1976. MENDONÇA, C; ALMEIDA, A; CASTRO, A; DELGADO, M. L; SOARES, S; COSTA, J. M. C; CANADA, N. Molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia isolates from cattle from Portugal. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p. 47-50, 2007. MILLER, W. A; ATWILL, E. R; GARDNER, I. A; MILLER, M. A; FRITZ, H. M; HEDRICK, R. P; MELLI, A. C; BARNES, N. M; CONRAD, P. A. Clams (Corbicula fluminea) as bioindicators of fecal contamination with Cryptosporidium and Giardia spp. In freshwater ecosystems in California. Int. J. Parasitol.v. 35, p.673–684, 2005. MILLER, W. A; MILLER, M. A; GARDNER, I. A; ATWILL, E. R; HARRIS, M; AMES, J; JESSUP, D; MELLI, A; PARADIES, D; WORCESTER, K; OLIN, P; BARNES, N; CONRAD, P.A. New genotypes and factors associated with Cryptosporidium detection in mussels (Mytilus spp.) along the California coast. International Journal for Parasitology, v. 35, p. 1103–1113, 2006. MINISTÉRIO DA PESCA E AQUICULTURA, 2010 disponível em: http://www.mpa.gov.br/#imprensa/2011/MAIO/nt_MAI_13-05-O-Ministerio-da-Pesca-e- Aquicultura-disponibiliza; Acesso em julho de 2011. MISIC, Z., ABE, N. Subtype analysis of Cryptosporidium parvum isolates from calves on farms around Belgrade, Serbia and Montenegro, using the 60 kDa glycoprotein gene sequences. Parasitology. v.134, p. 351–358, 2007. MOHANDAS K, SEHGAL R, SUD A, MALLA N Prevalence of intestinal parasitic pathogens in HIV-seropositive individuals in Northern India. Japanese Journal of Infectious Diseases. v. 55, p.83-84, 2002. MORGAN-RYAN, U. M., FALL, A.; WARD, L. A.; HIJJAWI, N.; SULAIMAN, I.; FAYER, R.; THOMPSON, R. C.; OLSON, M. ; LAL, A.; XIAO, L. Cryptosporidium hominis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) from Homo sapiens. Journal of Eukaryotic Microbiology. v. 49, n. 1, p.433–440, 2002. NAPPIER, S.P.; GRACZYK, T.K.; TAMANG, L.; SCHWAB, K.J. Co-localized Crassostrea virginica and Crassostrea ariakensis Oysters differ in bioaccumulation, retention and depuration of microbial indicators and human enteropathogens. Journal of Applied Microbiology. v.52, p. 198-213, 2010. 79 NEWMAN, R.D.; JAEGER, K.L.;WUHIB, T.; LIMA, A.A.;GUERRANT, R.L.; SEARS, C.L. Evaluation of an antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of Cryptosporidium oocysts. Journal Clinical Microbiology. v. 31, p. 2080–2084, 1993. NSW FOOD AUTHORITY. Food Regulation 2010. Disponível em <http://www.foodauthority.nsw.gov.au/industry/food-standards-andrequirements/ legislation/foodregulation/>. Acesso em julho de 2011. O’BRIEN, E., MCINNES, L., RYAN, U. Cryptosporidium GP60 genotypes from humans and domesticated animals in Australia, North America and Europe. Exp. Parasitol. V.118, p. 118–121, 2008. O’CONNOR, P. National distribution of chemical concentrations in mussels and oysters in the USA. Marine Environmental Research, v. 53, p. 117–143, 2002. O’DONOUGHUE, P. J. Cryptosporidium and cryptosporidiosis in man and animals. International Journal for Parasitology. v. 25, n. 2, p. 139-195, 1995. OLIVEIRA-SILVA, M. B et al. Seasonal profile and level of CD4 Seasonal profile and level of CD4+ lymphocytes in the occurrence of cryptosporidiosis and cystoisosporidiosis in HIV/Aids patients in the Triângulo Mineiro region, Brazil. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. v.40, n. 5, p. 512-515, 2007. ORDÓÑEZ, J.A.; RODRÍGUEZ, M.I.C.; ÁLVAREZ, L.F.; SANZ, M.L.G., MINGUILLÓN, G.D.G.F. PERALES, L.H.; CORTECERO, M.D.S. Tecnologia de alimentos: alimentos de origem animal. Porto Alegre: Artmed,. 2005, v.2, 279 p. OSAKI SC, COSTA AO, OLIVEIRA-SILVA MB,
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