Embriogênese somática de variedades superiores de cana-de-açúcar (Saccharum spp.)

• Autor(a) principal: Menezes, Thays Saynara Alves
• Data de Publicação: 2012
• Outros Autores: Santos, Thatiana Carvalho, Arrigoni-Blank, Maria de Fátima, Blank, Arie Fitzgerald
• Tipo de documento: Artigo
• Idioma: por
• Título da fonte: Repositório Institucional da UFS
• Texto Completo: https://ri.ufs.br/handle/riufs/1553
• topic: Calos embriogênicos; Reguladores de crescimento; Aclimatização; Embryogenesis callus; Growth controllers; Acclimatization; Embriogênese; Cana-de-açúcar

A cana-de-açúcar (Saccharum ssp.) é uma planta da família Poaceae, cultivada em países das regiões tropical e subtropical. Seu cultivo in vitro já foi descrito para diversos clones através da cultura de calos, meristemas e embriões somáticos. O delineamento foi o inteiramente casualizado com cinco repetições e quatro frascos por repetição com quatro explantes cada frasco. Nos ensaios de indução e multiplicação de calos testou-se concentrações de 2,4-D que variaram entre zero e 6,0 mg.L-1. No ensaio de regeneração de brotações os tratamentos constaram de um controle e combinações de 0,1 a 0,4 mg.L-1 de cinetina e 0,2 a 0,8 mg.L-1 de BAP. Para o enraizamento testouse MS e MS/2. Na aclimatização testou-se substratos contendo pó de coco e/ou vermiculita suplementado com calcário, fertilizante NPK (3-12-6) e sais do meio MS. Para a indução e a multiplicação dos calos recomenda-se a utilização de 6 mg.L-1 de 2,4-D, para a regeneração das brotações 0,2 mg.L-1 de cinetina e 0,4 mg.L-1 de BAP (9,5 brotações/calo), e para o enraizamento o uso de MS/2. A aclimatização pode ser realizada com pó de coco e vermiculita (2:1 v/v) + 1 g.L-1 de calcário + 12 g.L-1 de NPK (3-12-6)._________________________________________________________________________________________ ABSTRACT: The sugarcane (Saccharum ssp.) is a plant from the Poaceae family which is cultivated in countries in the tropical and subtropical regions. Its in vitro culture has already been descripted for several clones through the culture of callus, meristems and somatic embryos. The assay was installed in a totally randomized design with five replications and four flasks per replication with four explants each flask. At the induction and multiplication of the calli assays we tested concentrations of 2,4-D which oscillated between zero and 6,0 mg.L-1. Although in the regeneration of shoots the treatments proved a control and combinations of 0,1 to 0,4 mg.L-1 of kinetin and 0,2 to 0,8 mg.L-1of BAP. For rooting we tested MS and MS/2. For the acclimatization we tested substrates containing coconut coir and/or vermiculite compound, limestone, fertilizer NPK (3-12-6) and salts from the MS medium. For the callus induction and multiplication we recommend the use of 6 mg.L-1of 2,4-D, for the regeneration of shoots 0,2 mg.L-1 of kinetin, and 0,4 mg.L-1 of BAP (9,5 shoots/callus) and the rooting process in MS/2. The acclimatization can be done with coconut powder and vermiculite (2:1 v/v) + 1 g.L-1 of limestone + 12 g.L-1 of NPK (3-12-6).