Imunobiológicos para o diagnóstico laboratorial de ranavirose: clonagem e expressão do gene MCP de isolado brasileiro de Ranavirus e produção de anticorpos policlonais anti-proteína MCP recombinante

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Corrêa, Thaís Camilo
Data de Publicação: 2019
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP
Texto Completo: https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/74/74131/tde-12042021-123249/
Resumo: Membros do gênero Ranavirus, pertencente à família Iridoviridae, têm sido responsáveis por epizootias em animais ectotérmicos em várias partes do mundo, pois representam patógenos emergentes capazes de infectar três classes de vertebrados: peixes ósseos, anfíbios e répteis. No Brasil, os relatos de surtos por ranavirose sassociados ao Frogvirus3 (FV3) ocorrem desde meados dos anos 2000, sendo cada vez mais frequentes principalmente em criações comerciais de rã-touro. Portanto, as infecções por ranavírus representam um risco para outros setores da aquicultura, como a piscicultura. Neste contexto, visando a produção de imunorreagentes para uso em testes de diagnóstico, os objetivos foram: produzir a proteína recombinante do gene MCP (Major capsid protein) do isolado brasileiro deRanavirus,FV3-símile; produzir anticorpos policlonais de coelho anti-rMCP e, por fim, padronizar um teste de ELISA-IB (Indirect-Blocking Enzyme Linked Immunosorbent Assay). Para isso, foi construído o plasmídeo pET28a/MCP, transformado em Rosetta (™) (DE3) para a expressão da proteína rMCP. Após a purificação, a produção de anticorpos policlonais anti-rMCPfoi conduzida em dois coelhos jovens através de três inoculações da proteína rMCP, por via intramuscular e subcutânea, em intervalos de 14 dias, sendo os soros analisados por Immunoblot. Para a padronização do teste ELISA-IB, foram amostrados soros de rãs-touro e realizada a infecção experimental de tilápias do Nilo, para a obtenção de soros controles. Destaque para os resultados com o sucesso da expressão da proteína rMCP de 50kDa,no entanto, em sua forma insolúvel sob purificação desnaturante seguida de diálise. A rMCP desencadeou a produção de anticorpos policlonais nos coelhos, já na segunda imunização. No ELISA-IB, a proteína rMCP foi utilizada como antígeno viral, seguida dos soros testes e anticorpos de bloqueio (policlonal anti-rMCP). Contudo, problemas com a obtenção de soros controles adequados dificultaram a padronização do teste, sendo possível, no entanto, identificar porcentagem de inibição em soro de rã. O uso dos imunorreagentes produzidos e o ELISA-IB demostraram potencial promissor para o diagnóstico laboratorial de infecção por ranavírus em peixes, bem como anfíbios, no intuito de colaborar para a melhoria das condições sanitárias da aquicultura brasileira. Além disso, os imunorreagentes obtidos podem propiciar novos estudos para a produção de imunógenos vacinais contra o Ranavirus.
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No Brasil, os relatos de surtos por ranavirose sassociados ao Frogvirus3 (FV3) ocorrem desde meados dos anos 2000, sendo cada vez mais frequentes principalmente em criações comerciais de rã-touro. Portanto, as infecções por ranavírus representam um risco para outros setores da aquicultura, como a piscicultura. Neste contexto, visando a produção de imunorreagentes para uso em testes de diagnóstico, os objetivos foram: produzir a proteína recombinante do gene MCP (Major capsid protein) do isolado brasileiro deRanavirus,FV3-símile; produzir anticorpos policlonais de coelho anti-rMCP e, por fim, padronizar um teste de ELISA-IB (Indirect-Blocking Enzyme Linked Immunosorbent Assay). Para isso, foi construído o plasmídeo pET28a/MCP, transformado em Rosetta (™) (DE3) para a expressão da proteína rMCP. Após a purificação, a produção de anticorpos policlonais anti-rMCPfoi conduzida em dois coelhos jovens através de três inoculações da proteína rMCP, por via intramuscular e subcutânea, em intervalos de 14 dias, sendo os soros analisados por Immunoblot. Para a padronização do teste ELISA-IB, foram amostrados soros de rãs-touro e realizada a infecção experimental de tilápias do Nilo, para a obtenção de soros controles. Destaque para os resultados com o sucesso da expressão da proteína rMCP de 50kDa,no entanto, em sua forma insolúvel sob purificação desnaturante seguida de diálise. A rMCP desencadeou a produção de anticorpos policlonais nos coelhos, já na segunda imunização. No ELISA-IB, a proteína rMCP foi utilizada como antígeno viral, seguida dos soros testes e anticorpos de bloqueio (policlonal anti-rMCP). Contudo, problemas com a obtenção de soros controles adequados dificultaram a padronização do teste, sendo possível, no entanto, identificar porcentagem de inibição em soro de rã. O uso dos imunorreagentes produzidos e o ELISA-IB demostraram potencial promissor para o diagnóstico laboratorial de infecção por ranavírus em peixes, bem como anfíbios, no intuito de colaborar para a melhoria das condições sanitárias da aquicultura brasileira. Além disso, os imunorreagentes obtidos podem propiciar novos estudos para a produção de imunógenos vacinais contra o Ranavirus.Members of the genus Ranavirus, belonging to the family Iridoviridae, have been responsible for epizootics in ectothermic animals in various parts of the world, as they represent emerging pathogens capable of infecting three classes of vertebrates: bony fish, amphibians and reptiles. In Brazil, reports of Frog virus 3 (FV3)-associated ranavirus outbreaks have occurred since the mid-2000s, and are increasingly common mainly in commercial bullfrog farming. Therefore, ranavirus infections pose a risk to other aquaculture sectors, such as fish farming. In this context, aiming at the production of immunoreagents for use in diagnostic tests, the objectives were: to produce the recombinant MCP (Major capsid protein) gene from the Brazilian Ranavirus isolate, FV3-like; produce rabbit anti-rMCP polyclonal antibodies and, finally, standardize an ELISA-IB (Indirect-Blocking Enzyme Linked Immunosorbent Assay) test. To this end, the Rosetta (™)transformed plasmid pET28a / MCP (DE3) was constructed for the expression of the rMCP protein. Following purification, the production of polyclonal anti-rMCP antibodies was conducted in two young rabbits by three intramuscular and subcutaneous immunizations with the rMCP protein at 14-day intervals and the sera analyzed by Immunoblot. For standardization of the ELISA-IB test, bullfrog sera were sampled and experimental infection of Nile tilapia was carried out to obtain control sera. It is worth mentioning for the results, the successful expression of the 50kDa rMCP protein, however, in its insoluble form, under denaturing purification followed by dialysis. The rMCP triggered the production of polyclonal antibodies in rabbits as early as the second immunization. In ELISA-IB, rMCP protein was used as viral antigen, followed by sera tests and blocking antibodies (anti-rMCP polyclonal). However, problems with obtaining adequate control sera made the standardization of the test difficult, but it was possible to identify inhibition percentage in frog serum. The use of the produced immunoreagents and the ELISA-IB show promising potential for laboratory diagnosis of ranavirus infection in fish, as well as amphibians, in order to contribute to the improvement of sanitary conditions in Brazilian aquaculture. In addition, the obtained immunoreagents may provide further studies for the production of vaccine immunogens against Ranavirus.Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPSousa, Ricardo Luiz Moro deCorrêa, Thaís Camilo2019-11-28info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/74/74131/tde-12042021-123249/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPLiberar o conteúdo para acesso público.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2021-04-12T21:00:02Zoai:teses.usp.br:tde-12042021-123249Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212021-04-12T21:00:02Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false
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