Mecanismos moleculares envolvidos em mechanosensing em Trichophyton interdigitale

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Quaresemin, Natália Renault
Data de Publicação: 2018
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP
Texto Completo: https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17135/tde-02082024-155306/
Resumo: Trichophyton interdigitale é um fungo que utiliza a queratina como fonte de nutrientes durante a infecção de pele, unha e cabelo, sendo a segunda espécie mais frequente nas infecções humanas por dermatófitos. Mecanismos de percepção e resposta a variações ambientais são essenciais para estabelecimento da infecção e adaptação ao estresse, inclusive durante a exposição a antifúngicos. Nesse contexto, o estudo dos mecanismos envolvidos no sensoriamento mecânico, ou conformacional, como o mechanosensing, torna-se fundamental. A enzima α-1,6- manosiltransferase, codificada pelo gene och1, que atua na elaboração de mananas N-ligadas na cadeia externa de parede celular, pode participar da resposta ao sensoriamento, e interage com o fator de transcrição Skn7 e a proteína quinase Ste20, que se relacionam com vias envolvidas na resposta a estresse e manutenção de parede celular. Evidências sugerem que Skn7 interaja com o fator de transcrição Hsf1, que, por sua vez, pode ser regulado pelo fator de transcrição PacC, conhecido por seu papel na resposta ao pH do ambiente e na secreção de proteases. Dessa forma, o objetivo desse trabalho foi analisar a expressão do gene och1, dos genes codificadores dos fatores de transcrição Skn7 e PacC e da proteína quinase Ste20 no dermatófito T. interdigitale durante seu crescimento em substratos queratinizados e durante exposição às drogas tunicamicina e caspofungina, inibidoras de parede celular. A partir de análises in silico, sugeriu-se uma interação de PacC com skn7 e och1, e de Skn7 com och1 e pacC, mediada pelos domínios Hsf1 e PacC, respectivamente. As análises de expressão gênica realizadas após a interação de conídios de T. interdigitale com moléculas do hospedeiro nos diferentes modelos de infecção in vitro utilizados (meio de cultivo com queratina em pó, fragmentos de unhas e cocultivo em queratinócitos) indicaram diminuição de transcritos para os genes och1 e skn7, na condição de interação com queratina, para as duas linhagens estudadas (selvagem, WT, e linhagem mutante ΔpacC), enquanto o gene pacC foi induzido tanto pelo crescimento em queratina como em unhas. Em relação ao gene ste20, nenhuma diferença de modulação foi observada durante o crescimento em queratina, contudo, a interação com unhas promoveu aumento significativo de transcritos, no tempo de 72h, para ambas as linhagens. Ao mesmo tempo, a interação dos fungos com queratinócitos evidenciou o aumento de transcritos de och1, o qual foi ainda mais expressivo na linhagem mutante. A observação conjunta desses dados sugere que a modulação desses genes é dependente da fonte de queratina utilizada e que a baixa modulação ou repressão dos genes durante o crescimento nas fontes de queratina possa ser reflexo da adaptação do fungo durante o processo de infecção. Essas análises também reiteram a relevância de PacC na degradação de queratina. Ademais, a alteração na modulação de och1 indica a importância das modificações pós-traducionais para o estabelecimento da infecção de T. interdigitale em queratinócitos. Paralelamente, a exposição aos agentes caspofungina e tunicamicina promoveu a modulação dos genes de forma divergente. Enquanto a exposição à caposfungina induziu och1 em ambas as linhagens, de forma mais acentuada para ΔpacC, a exposição à tunicamicina promoveu a indução de skn7 e ste20 também nas duas linhagens, assim como induziu pacC no WT. Além disso, a indução dos genes skn7 e ste20 na linhagem mutante é expressiva já em 48h de exposição a drogas, enquanto no WT esta modulação é observada apenas no tempo de 72h. Assim, os resultados apresentados sugerem a modulação dos genes och1, skn7, ste20 e pacC como uma resposta adaptativa durante a interação do dermatófito com o hospedeiro e durante a exposição a inibidores de parede celular, além de indicarem uma possível diferença na constituição e manosilação de proteínas de parede celular na linhagem ΔpacC em comparação à linhagem selvagem. Portanto, os genes och1, skn7, ste20 e pacC podem auxiliar nos mecanismos de percepção e sensoriamento mecânico, constituindo elementos importantes para virulência e adaptação a antifúngicos.
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A enzima α-1,6- manosiltransferase, codificada pelo gene och1, que atua na elaboração de mananas N-ligadas na cadeia externa de parede celular, pode participar da resposta ao sensoriamento, e interage com o fator de transcrição Skn7 e a proteína quinase Ste20, que se relacionam com vias envolvidas na resposta a estresse e manutenção de parede celular. Evidências sugerem que Skn7 interaja com o fator de transcrição Hsf1, que, por sua vez, pode ser regulado pelo fator de transcrição PacC, conhecido por seu papel na resposta ao pH do ambiente e na secreção de proteases. Dessa forma, o objetivo desse trabalho foi analisar a expressão do gene och1, dos genes codificadores dos fatores de transcrição Skn7 e PacC e da proteína quinase Ste20 no dermatófito T. interdigitale durante seu crescimento em substratos queratinizados e durante exposição às drogas tunicamicina e caspofungina, inibidoras de parede celular. A partir de análises in silico, sugeriu-se uma interação de PacC com skn7 e och1, e de Skn7 com och1 e pacC, mediada pelos domínios Hsf1 e PacC, respectivamente. As análises de expressão gênica realizadas após a interação de conídios de T. interdigitale com moléculas do hospedeiro nos diferentes modelos de infecção in vitro utilizados (meio de cultivo com queratina em pó, fragmentos de unhas e cocultivo em queratinócitos) indicaram diminuição de transcritos para os genes och1 e skn7, na condição de interação com queratina, para as duas linhagens estudadas (selvagem, WT, e linhagem mutante ΔpacC), enquanto o gene pacC foi induzido tanto pelo crescimento em queratina como em unhas. Em relação ao gene ste20, nenhuma diferença de modulação foi observada durante o crescimento em queratina, contudo, a interação com unhas promoveu aumento significativo de transcritos, no tempo de 72h, para ambas as linhagens. Ao mesmo tempo, a interação dos fungos com queratinócitos evidenciou o aumento de transcritos de och1, o qual foi ainda mais expressivo na linhagem mutante. A observação conjunta desses dados sugere que a modulação desses genes é dependente da fonte de queratina utilizada e que a baixa modulação ou repressão dos genes durante o crescimento nas fontes de queratina possa ser reflexo da adaptação do fungo durante o processo de infecção. Essas análises também reiteram a relevância de PacC na degradação de queratina. Ademais, a alteração na modulação de och1 indica a importância das modificações pós-traducionais para o estabelecimento da infecção de T. interdigitale em queratinócitos. Paralelamente, a exposição aos agentes caspofungina e tunicamicina promoveu a modulação dos genes de forma divergente. Enquanto a exposição à caposfungina induziu och1 em ambas as linhagens, de forma mais acentuada para ΔpacC, a exposição à tunicamicina promoveu a indução de skn7 e ste20 também nas duas linhagens, assim como induziu pacC no WT. Além disso, a indução dos genes skn7 e ste20 na linhagem mutante é expressiva já em 48h de exposição a drogas, enquanto no WT esta modulação é observada apenas no tempo de 72h. Assim, os resultados apresentados sugerem a modulação dos genes och1, skn7, ste20 e pacC como uma resposta adaptativa durante a interação do dermatófito com o hospedeiro e durante a exposição a inibidores de parede celular, além de indicarem uma possível diferença na constituição e manosilação de proteínas de parede celular na linhagem ΔpacC em comparação à linhagem selvagem. Portanto, os genes och1, skn7, ste20 e pacC podem auxiliar nos mecanismos de percepção e sensoriamento mecânico, constituindo elementos importantes para virulência e adaptação a antifúngicos.Trichophyton interdigitale is able to use keratin from skin, nail and hair as nutrient sources during infection process. It is the second main etiologic agent of human dermatophytosis worldwide. Mechanisms of sensing and response to environmental changes are essential for infection establishment and stress adaptation, including exposure to antifungal agents. In this context, it is fundamental to study the mechanisms involved in mechanical or conformational sensing, also known as mechanosensing. The α-1,6-mannosyltransferase enzyme, codified by the och1 gene, which initiates the elaboration of the N-linked mannan outer chain of the cell wall, may help in cellular sensing responses. Besides, there is an evidence of interaction of Och1 with the transcription factors Skn7 and the protein kinase Ste20, which play a role in the signal transduction pathways involved in stress response and cell wall maintenance. Also, the Skn7 might interacts with the transcription factor Hsf1, which in turn can be regulated by the transcription factor PacC, whose role in response to the environment pH and secretion of proteases is well known. In this respect, the aim of this work was to analyze the expression of och1 and the encoding genes of transcription factors Skn7, PacC and of the protein kinase Ste20 in the dermatophyte T. interdigitale during its grown on keratinized substrates, and after its exposure to cell wall inhibitors tunicamycin and caspofungin. In silico analyses suggested an interaction of PacC with skn7 and och1, and of Skn7 with och1 and pacC, mediated by the Hsf1 and PacC domains, respectively. In addition, gene expression analyzes performed after the interaction of T. interdigitale conidia with host molecules in the different in vitro infection models (culture medium with powdered keratin, nail fragments and co-culture with keratinocytes) indicated a decreased in transcript levels of och1 and skn7 genes, in keratin cultures, for both strains studied (wild-type, WT, and mutant strain ΔpacC), whereas the pacC gene was induced by the conditions keratin and nail fragments. The gene expression analysis of ste20 showed no changes in modulation during T. interdigitale growth on keratin sources. However, nail condition promoted a significant increase in ste20 transcript levels at 72h time point, in both strains. At the same time, the interaction of dermatophyte with keratinocytes evidenced the increase of och1 transcript levels, which was even more expressive in the mutant strain. Taken together, these data suggested that the modulation of these genes is dependent on the source of keratin analyzed and that the low modulation or repression of genes during the grown on keratin sources may be related to the adaptation of the fungus during the infection process. These analyzes strength the relevance of PacC in keratin degradation process. Also, the change in och1 modulation indicates the importance of post-translational modifications for the establishment of T. interdigitale infection in keratinocytes. In addition, the exposure to caspofungin and tunicamycin drugs promoted the modulation of the genes in distinct ways. Exposure to caspofungin induced och1 in both strains, more pronounced in ΔpacC, while exposure to tunicamycin promoted the induction of skn7 and ste20 in both strains as well as induced pacC in WT. Also, the induction of the skn7 and ste20 genes in the mutant was already observed at 48h time point of drugs exposure, whereas in WT their induction was noticed at 72h time point. Thus, all the results suggested the modulation of och1, skn7, ste20 and pacC genes as an adaptive response during dermatophyte-host interaction as well as to exposure to cell wall inhibitors. Furthermore, indicated a possible difference in cell wall constitution and mannosylation in the ΔpacC strain compared to the WT strain. Therefore, the och1, skn7, ste20 and pacC genes may participate in mechanical perception and sensing mechanisms, being important elements for virulence and adaptation to antifungal agents.Biblioteca Digitais de Teses e Dissertações da USPRossi, Nilce Maria MartinezQuaresemin, Natália Renault2018-03-27info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisapplication/pdfhttps://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/17/17135/tde-02082024-155306/reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USPinstname:Universidade de São Paulo (USP)instacron:USPLiberar o conteúdo para acesso público.info:eu-repo/semantics/openAccesspor2024-08-05T20:35:02Zoai:teses.usp.br:tde-02082024-155306Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.teses.usp.br/PUBhttp://www.teses.usp.br/cgi-bin/mtd2br.plvirginia@if.usp.br|| atendimento@aguia.usp.br||virginia@if.usp.bropendoar:27212024-08-05T20:35:02Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da USP - Universidade de São Paulo (USP)false
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