Obtenção de clones infecciosos de ZIKV para estudos de atenuação viral
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Data de Publicação: | 2022 |
Tipo de documento: | Tese |
Idioma: | por |
Título da fonte: | Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) |
Texto Completo: | https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/55191 |
Resumo: | O vírus Zika (ZIKV) é um importante patógeno humano, associado a complicações graves como a síndrome congênita do ZIKV em neonatos, e a síndrome de Guillain-Barré em adultos. Até o momento, não estão disponíveis vacinas ou drogas antivirais contra a infecção por ZIKV, tornando-se um importante desafio o seu desenvolvimento. Esse trabalho teve como objetivo a construção de variantes de ZIKV atenuadas, obtidas pela tecnologia de genética reversa envolvendo plasmídeos bacterianos. Conhecidamente, o cDNA de ZIKV é instável em Escherichia coli, assim, foi estabelecida uma metodologia de construção de ZIKV sintético, baseado no vírus epidêmico Rio-U1, através clonagem do cDNA de ZIKV em um sistema de dois plasmídeos, utilizando o pCC1, um plasmídeo de cópia única. Para mitigar as restrições de rendimento de massa de cDNA, acoplou-se reações de PCR em diferentes etapas do protocolo, favorecendo a montagem do molde completo de cDNA de ZIKV, possibilitando a recuperação viral após transcrição in vitro. O clone IC.ZIKV-Rio-U1 demonstrou padrões de proliferação viral em modelos celulares muito similares ao vírus parental. Além disso, se mostrou virulento em camundongos AG129, exibindo os mesmos sinais de acometimento neurológico desenvolvidos pelo vírus parental. A partir da obtenção de IC.ZIKV-Rio-U1, foram desenvolvidas duas abordagens para promoção de atenuação viral, ambas envolvendo os genes NS4B e NS5. A primeira, foi baseada no fato de que, ao comparar ZIKV circulantes nas Américas com a linhagem ancestral Malásia de 1966, foi observado que a maioria das mutações sinônimas e não sinônimas ocorreu nas proteínas NS4B e NS5. Para avaliar se essas mutações influenciaram na virulência de ZIKV, foi construído o vírus quimérico IC.ZIKV-ns4b-ns5/Mal, a partir da substituição dos genes NS4B e NS5 de ZIKV Rio-U1 pelos genes equivalentes, derivados da linhagem ancestral. Não houve diferença significativa na virulência dos vírus IC.ZIKV-ns4b-ns5/Mal e IC.ZIKV-Rio-U1 em diferentes modelos celulares, mas foi observada uma ligeira diminuição na virulência em modelo de camundongos AG129. A segunda abordagem consistiu na desotimização de pares de códons dos genes NS4B e NS5, através de permuta nucleotídica baseada em dois algoritmos distintos, dN231 e N3, criando os vírus IC.ZIKV-ns4b-ns5/dN231 e IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3, respectivamente. Estudos de infecção celular e em camundongos AG129 demonstraram que apenas IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 exibiu perfil menos proliferativo em modelos celulares e menos virulento em camundongos AG129, demonstrando um padrão atenuado em comparação ao vírus IC.ZIKV-Rio-U1. Além disso, o vírus IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 induziu imunidade em camundongos AG129, protegendo esses animais contra desafio letal com o vírus selvagem Rio-U1. Esses resultados demonstram que, a estratégia de desotimização de pares de códons pode ser uma ferramenta para o desenvolvimento de vírus atenuados e protótipos vacinais |
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Fernandes, Déberli RuizLima, Leila de MendonçaMiranda, Iranaia AssunçãoPaula, Vanessa Salete deVitral, Claudia LamarcaFumian, Tulio MachadoBonaldo, Myrna Cristina2022-10-19T15:14:50Z2022-10-19T15:14:50Z2022FERNANDES, Déberli Ruiz. Obtenção de clones infecciosos de ZIKV para estudos de atenuação viral. 2022. 177 f. Tese (Doutorado em Biologia Parasitária) - Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 2022.https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/55191O vírus Zika (ZIKV) é um importante patógeno humano, associado a complicações graves como a síndrome congênita do ZIKV em neonatos, e a síndrome de Guillain-Barré em adultos. Até o momento, não estão disponíveis vacinas ou drogas antivirais contra a infecção por ZIKV, tornando-se um importante desafio o seu desenvolvimento. Esse trabalho teve como objetivo a construção de variantes de ZIKV atenuadas, obtidas pela tecnologia de genética reversa envolvendo plasmídeos bacterianos. Conhecidamente, o cDNA de ZIKV é instável em Escherichia coli, assim, foi estabelecida uma metodologia de construção de ZIKV sintético, baseado no vírus epidêmico Rio-U1, através clonagem do cDNA de ZIKV em um sistema de dois plasmídeos, utilizando o pCC1, um plasmídeo de cópia única. Para mitigar as restrições de rendimento de massa de cDNA, acoplou-se reações de PCR em diferentes etapas do protocolo, favorecendo a montagem do molde completo de cDNA de ZIKV, possibilitando a recuperação viral após transcrição in vitro. O clone IC.ZIKV-Rio-U1 demonstrou padrões de proliferação viral em modelos celulares muito similares ao vírus parental. Além disso, se mostrou virulento em camundongos AG129, exibindo os mesmos sinais de acometimento neurológico desenvolvidos pelo vírus parental. A partir da obtenção de IC.ZIKV-Rio-U1, foram desenvolvidas duas abordagens para promoção de atenuação viral, ambas envolvendo os genes NS4B e NS5. 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Estudos de infecção celular e em camundongos AG129 demonstraram que apenas IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 exibiu perfil menos proliferativo em modelos celulares e menos virulento em camundongos AG129, demonstrando um padrão atenuado em comparação ao vírus IC.ZIKV-Rio-U1. Além disso, o vírus IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 induziu imunidade em camundongos AG129, protegendo esses animais contra desafio letal com o vírus selvagem Rio-U1. Esses resultados demonstram que, a estratégia de desotimização de pares de códons pode ser uma ferramenta para o desenvolvimento de vírus atenuados e protótipos vacinaisZika virus (ZIKV) is a major human pathogen, associated with serious complications, such as congenital syndrome in neonates and Guillain-Barré syndrome in adults. To date, vaccines or antiviral drugs against ZIKV infection are not available, making their development an important challenge. This work aimed at the construction of attenuated ZIKV variants, obtained by reverse genetics technology involving bacterial plasmids. It is known that the ZIKV cDNA is unstable in Escherichia coli, thus, a methodology for the construction of a synthetic ZIKV, based on the Rio-U1 epidemic virus, was established by cloning the ZIKV cDNA in a two-plasmid system, using the pCC1, a single copy plasmid. To mitigate cDNA mass yield restrictions, PCR reactions were coupled at different stages of the protocol, favoring the assembly of the complete ZIKV cDNA template, enabling viral recovery after in vitro transcription. The IC.ZIKV-Rio-U1 clone showed patterns of viral proliferation very similar to the parental virus in cell models. In addition, it was virulent in AG129 mice, exhibiting the same signs of neurological impairment developed by the parental virus. After obtaining IC.ZIKV-Rio-U1, two approaches were developed to promote viral attenuation, both involving the NS4B and NS5 genes. The first one, was based on the fact that, when comparing ZIKV circulating in the Americas with the Malaysian ancestral lineage of 1966, it was observed that most of the synonymous and non-synonymous mutations occurred in the NS4B and NS5 proteins. To assess whether these mutations influenced the virulence of ZIKV, the chimeric virus IC.ZIKV-ns4b-ns5/Mal was constructed by replacing the NS4B and NS5 genes of ZIKV Rio-U1 by equivalent genes derived from the ancestral lineage. There was no significant difference in virulence of IC.ZIKV-ns4b ns5/Mal and IC.ZIKV-Rio-U1 viruses in different cells models, but a slight virulence decrease was observed in AG129 mice models. The second one consisted in the codon pair deoptimization of the NS4B and NS5 genes, through nucleotide permutation based on two different algorithms, dN231 and N3, creating the IC.ZIKV-ns4b-ns5/dN231 and IC.ZIKV ns4b-ns5 viruses/N3, respectively. Cellular and mice infection studies showed that only IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 was less proliferative in cellular models and less virulent in AG129 mice, demonstrating an attenuated pattern compared to the IC.ZIKV-Rio-U1 virus. Furthermore, the IC.ZIKV-ns4b-ns5/N3 virus induced immunity in AG129 mice, protecting these animals against a lethal challenge with the Rio-U1 wild-type virus. These results demonstrate that the codon pair deoptimization strategy can be a tool for the development of attenuated viruses and vaccine prototypesFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.porZika virusFlavivirusClone infecciosoGenética reversaAtenuação viralZika virusInfectious clonesViral attenuationReverse geneticsZika vírusFlavivirusCélulas ClonaisGenética ReversaVacinas AtenuadasObtenção de clones infecciosos de ZIKV para estudos de atenuação viralinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesis2022Instituto Oswaldo CruzFundação Oswaldo CruzRio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Biologia Parasitáriainfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/55191/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51ORIGINALdeberli_fernandes_ioc_dout_2022.pdfapplication/pdf4797657https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/55191/2/deberli_fernandes_ioc_dout_2022.pdf7c4367854f2506a436e90fa036322c2bMD52icict/551912022-10-19 12:14:51.444oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352022-10-19T15:14:51Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false |
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