Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Carvalho, Taís Franco de
Data de Publicação: 2018
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
Texto Completo: https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/32858
Resumo: Sepse é a disfunção múltipla de órgãos causada pela resposta inflamatória desregulada do corpo a uma infeção. É a principal causa de morte em unidades de terapia intensiva no mundo, o que é associado a falta de diagnóstico e tratamento eficiente e no tempo adequado. Hemocultura é o padrão ouro para diagnóstico de infecções da corrente sanguínea. No entanto, ela demanda de 3 a 7 dias para o resultado final. A administração de antimicrobianos antes da coleta de amostras de sangue e o crescimento fastidioso de certos patógenos também tornam esse método não apropriado para guiar a terapia de forma correta. Logo, avanços têm sido feitos em biologia molecular para oferecer alternativas mais rápidas e sensíveis. De acordo com a literatura, testes baseados em PCR diretamente do sangue total são considerados os mais promissores dentre eles. Desenvolvemos nesse projeto um multiteste PCR/Arranjo que alia a amplificação por PCR com hibridização de ácidos nucleicos em Lab-on-a-chip (In-CheckTM platform, STMicroelectronics). Os micro-organismos cobertos no painel foram selecionados de acordo com dados epidemiológicos nacionais. Sequências do genoma destes micro-organismos foram obtidas de bancos de dados e sequenciamentos e alinhadas para o desenho de iniciadores e sondas. Iniciadores foram gerados para reconhecer e amplificar regiões conservadas com variação interna onde as sondas foram desenhadas para detectar e diferenciar cada espécie. Para avaliar e otimizar iniciadores e sondas assim como o protocolo de PCR e de hibridização, foi utilizado DNA extraído de patógenos em cultivo previamente caracterizados com metodologias tradicionais de microbiologia e sequenciamento. Especificidade e sensibilidade analítica foram investigadas usando DNA extraído de sangue artificialmente contaminado com concentrações conhecidas de micro-organismos. O protótipo final identifica 22 espécies de bactérias e 5 espécies de Candida spp. Adicionalmente, sondas universais diferenciam bactérias Gram-negativas, Gram-positivas e o gênero Candida. O limite de detecção do teste é de 10 a 1000 UFC/mL, o que tem valor clínico considerando concentrações de bactéria reportadas em sangue periférico de pacientes sépticos. O teste pode prover a detecção mais rápida e precisa de agentes causadores de sepse, permitindo tratamento mais eficiente antes da progressão para choque séptico e potencialmente contribuindo para reduzir taxa de mortalidade. Também promove uso consciente de antimicrobianos, reduzindo seleção de cepas resistentes.
id CRUZ_a27bc3daedccac6fbf0275b6c729cffe
oai_identifier_str oai:www.arca.fiocruz.br:icict/32858
network_acronym_str CRUZ
network_name_str Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
repository_id_str 2135
spelling Carvalho, Taís Franco deMorello, Luis GustavoKrieger, Marco Aurélio2019-04-29T18:23:26Z2019-04-29T18:23:26Z2018CARVALHO, Taís Franco de. Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse. 2018. 86 f. Dissertação (Mestrado em Biociências e Biotecnologia) - Instituto Carlos Chagas, Fundação Oswaldo Cruz, Curitiba, PR, 2018.https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/32858Sepse é a disfunção múltipla de órgãos causada pela resposta inflamatória desregulada do corpo a uma infeção. É a principal causa de morte em unidades de terapia intensiva no mundo, o que é associado a falta de diagnóstico e tratamento eficiente e no tempo adequado. Hemocultura é o padrão ouro para diagnóstico de infecções da corrente sanguínea. No entanto, ela demanda de 3 a 7 dias para o resultado final. A administração de antimicrobianos antes da coleta de amostras de sangue e o crescimento fastidioso de certos patógenos também tornam esse método não apropriado para guiar a terapia de forma correta. Logo, avanços têm sido feitos em biologia molecular para oferecer alternativas mais rápidas e sensíveis. De acordo com a literatura, testes baseados em PCR diretamente do sangue total são considerados os mais promissores dentre eles. Desenvolvemos nesse projeto um multiteste PCR/Arranjo que alia a amplificação por PCR com hibridização de ácidos nucleicos em Lab-on-a-chip (In-CheckTM platform, STMicroelectronics). Os micro-organismos cobertos no painel foram selecionados de acordo com dados epidemiológicos nacionais. Sequências do genoma destes micro-organismos foram obtidas de bancos de dados e sequenciamentos e alinhadas para o desenho de iniciadores e sondas. Iniciadores foram gerados para reconhecer e amplificar regiões conservadas com variação interna onde as sondas foram desenhadas para detectar e diferenciar cada espécie. Para avaliar e otimizar iniciadores e sondas assim como o protocolo de PCR e de hibridização, foi utilizado DNA extraído de patógenos em cultivo previamente caracterizados com metodologias tradicionais de microbiologia e sequenciamento. Especificidade e sensibilidade analítica foram investigadas usando DNA extraído de sangue artificialmente contaminado com concentrações conhecidas de micro-organismos. O protótipo final identifica 22 espécies de bactérias e 5 espécies de Candida spp. Adicionalmente, sondas universais diferenciam bactérias Gram-negativas, Gram-positivas e o gênero Candida. O limite de detecção do teste é de 10 a 1000 UFC/mL, o que tem valor clínico considerando concentrações de bactéria reportadas em sangue periférico de pacientes sépticos. O teste pode prover a detecção mais rápida e precisa de agentes causadores de sepse, permitindo tratamento mais eficiente antes da progressão para choque séptico e potencialmente contribuindo para reduzir taxa de mortalidade. Também promove uso consciente de antimicrobianos, reduzindo seleção de cepas resistentes.Sepsis is the multiple organ dysfunction syndrome caused by an irregular body inflammatory response to an infection. It is considered the major cause of death in intensive care units worldwide, which is associated to the lack of appropriate and timely diagnosis and treatment. Blood culturing is the current gold standard technique for blood stream infection (BSI) diagnosis. However, generally takes 3 to 7 days to a final result and antimicrobial administration prior to collection and fastidious pathogens render this method unsuitable to guide therapy properly. Therefore, advances have been made in molecular biology to offer more sensitive and fast alternatives. According to the literature, PCR-based tests directly from whole blood are considered the most promising among them. We developed a PCR/Array-based multitest that allies PCR amplification and hybridization of nucleic acids in a Lab-ona-chip (In-CheckTM platform, STMicroelectronics). The microorganisms covered in the panel were selected according to the national epidemiology data. Sequences of the genome from the microorganisms on the test’s panel were retrieved from the data bank and aligned for primers and probes design. Primers were generated to target and amplify conserved regions spanning internal variability that allowed probes to be designed to detect and differentiate each species. To evaluate and optimize probes and primers as well as PCR amplification and hybridization protocols, DNA extracted from cultured pathogens previously characterized with traditional microbiology techniques and sequencing was used. Analytical specificity and sensitivity were investigated using DNA extracted from whole blood artificially spiked with known cell density of microorganisms. The final prototype showed the ability to identify 22 species of bacteria, and 5 species of Candida spp. Additionally, universal probes were added to differentiate Gram-negative and Gram-positive bacteria and the genus Candida. The detection limit for the tested microorganisms is between 10 and 1000 CFU/mL, which has clinical value considering reported bacteria density in peripheral blood of septic patients. The test may provide faster and more accurate detection of the sepsis-causing agents, allowing more efficient treatment before progression to septic shock and potentially contributing to reduce mortality rates. It also has the benefit of promoting antimicrobial stewardship that limits the selection of resistant strains.Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.porFundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas.HemoculturaSepsisSystemic Inflammatory Response SyndromeBlood CulturePolymerase Chain ReactionSíndrome de Respuesta Inflamatoria SistémicaCultivo de SangreReacción en Cadena de la PolimerasaSepseSíndrome de Resposta Inflamatória SistêmicaReação em Cadeia da PolimeraseDesenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepseinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesis2018Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos ChagasMestrado AcadêmicoCuritiba/PRPrograma de Pós-Graduação em Biociências e Biotecnologiainfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)instacron:FIOCRUZLICENSElicense.txttext/plain1748https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/1/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD51ORIGINALDissert_Tais_Carvalho.pdfDissert_Tais_Carvalho.pdfapplication/pdf2831302https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/2/Dissert_Tais_Carvalho.pdf757fdee3d5c92c79d555f556b346d682MD52TEXTDissert_Tais_Carvalho.pdf.txtDissert_Tais_Carvalho.pdf.txtExtracted texttext/plain189651https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/3/Dissert_Tais_Carvalho.pdf.txtfe0ef465b16b1dee70d215bffc7e3ef0MD53icict/328582021-03-11 12:37:32.052oai:www.arca.fiocruz.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.arca.fiocruz.br/oai/requestrepositorio.arca@fiocruz.bropendoar:21352021-03-11T15:37:32Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)false
dc.title.pt_BR.fl_str_mv Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
title Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
spellingShingle Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
Carvalho, Taís Franco de
Hemocultura
Sepsis
Systemic Inflammatory Response Syndrome
Blood Culture
Polymerase Chain Reaction
Síndrome de Respuesta Inflamatoria Sistémica
Cultivo de Sangre
Reacción en Cadena de la Polimerasa
Sepse
Síndrome de Resposta Inflamatória Sistêmica
Reação em Cadeia da Polimerase
title_short Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
title_full Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
title_fullStr Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
title_full_unstemmed Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
title_sort Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse
author Carvalho, Taís Franco de
author_facet Carvalho, Taís Franco de
author_role author
dc.contributor.advisorco.none.fl_str_mv Morello, Luis Gustavo
dc.contributor.author.fl_str_mv Carvalho, Taís Franco de
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Krieger, Marco Aurélio
contributor_str_mv Krieger, Marco Aurélio
dc.subject.other.pt_BR.fl_str_mv Hemocultura
topic Hemocultura
Sepsis
Systemic Inflammatory Response Syndrome
Blood Culture
Polymerase Chain Reaction
Síndrome de Respuesta Inflamatoria Sistémica
Cultivo de Sangre
Reacción en Cadena de la Polimerasa
Sepse
Síndrome de Resposta Inflamatória Sistêmica
Reação em Cadeia da Polimerase
dc.subject.en.pt_BR.fl_str_mv Sepsis
Systemic Inflammatory Response Syndrome
Blood Culture
Polymerase Chain Reaction
dc.subject.es.pt_BR.fl_str_mv Síndrome de Respuesta Inflamatoria Sistémica
Cultivo de Sangre
Reacción en Cadena de la Polimerasa
dc.subject.decs.pt_BR.fl_str_mv Sepse
Síndrome de Resposta Inflamatória Sistêmica
Reação em Cadeia da Polimerase
description Sepse é a disfunção múltipla de órgãos causada pela resposta inflamatória desregulada do corpo a uma infeção. É a principal causa de morte em unidades de terapia intensiva no mundo, o que é associado a falta de diagnóstico e tratamento eficiente e no tempo adequado. Hemocultura é o padrão ouro para diagnóstico de infecções da corrente sanguínea. No entanto, ela demanda de 3 a 7 dias para o resultado final. A administração de antimicrobianos antes da coleta de amostras de sangue e o crescimento fastidioso de certos patógenos também tornam esse método não apropriado para guiar a terapia de forma correta. Logo, avanços têm sido feitos em biologia molecular para oferecer alternativas mais rápidas e sensíveis. De acordo com a literatura, testes baseados em PCR diretamente do sangue total são considerados os mais promissores dentre eles. Desenvolvemos nesse projeto um multiteste PCR/Arranjo que alia a amplificação por PCR com hibridização de ácidos nucleicos em Lab-on-a-chip (In-CheckTM platform, STMicroelectronics). Os micro-organismos cobertos no painel foram selecionados de acordo com dados epidemiológicos nacionais. Sequências do genoma destes micro-organismos foram obtidas de bancos de dados e sequenciamentos e alinhadas para o desenho de iniciadores e sondas. Iniciadores foram gerados para reconhecer e amplificar regiões conservadas com variação interna onde as sondas foram desenhadas para detectar e diferenciar cada espécie. Para avaliar e otimizar iniciadores e sondas assim como o protocolo de PCR e de hibridização, foi utilizado DNA extraído de patógenos em cultivo previamente caracterizados com metodologias tradicionais de microbiologia e sequenciamento. Especificidade e sensibilidade analítica foram investigadas usando DNA extraído de sangue artificialmente contaminado com concentrações conhecidas de micro-organismos. O protótipo final identifica 22 espécies de bactérias e 5 espécies de Candida spp. Adicionalmente, sondas universais diferenciam bactérias Gram-negativas, Gram-positivas e o gênero Candida. O limite de detecção do teste é de 10 a 1000 UFC/mL, o que tem valor clínico considerando concentrações de bactéria reportadas em sangue periférico de pacientes sépticos. O teste pode prover a detecção mais rápida e precisa de agentes causadores de sepse, permitindo tratamento mais eficiente antes da progressão para choque séptico e potencialmente contribuindo para reduzir taxa de mortalidade. Também promove uso consciente de antimicrobianos, reduzindo seleção de cepas resistentes.
publishDate 2018
dc.date.issued.fl_str_mv 2018
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2019-04-29T18:23:26Z
dc.date.available.fl_str_mv 2019-04-29T18:23:26Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/masterThesis
format masterThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv CARVALHO, Taís Franco de. Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse. 2018. 86 f. Dissertação (Mestrado em Biociências e Biotecnologia) - Instituto Carlos Chagas, Fundação Oswaldo Cruz, Curitiba, PR, 2018.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/32858
identifier_str_mv CARVALHO, Taís Franco de. Desenvolvimento de método molecular em plataforma Lab-on-a-chip para diagnóstico de micro-organismos associados à sepse. 2018. 86 f. Dissertação (Mestrado em Biociências e Biotecnologia) - Instituto Carlos Chagas, Fundação Oswaldo Cruz, Curitiba, PR, 2018.
url https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/32858
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.publisher.none.fl_str_mv Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas.
publisher.none.fl_str_mv Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas.
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
instname:Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
instacron:FIOCRUZ
instname_str Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
instacron_str FIOCRUZ
institution FIOCRUZ
reponame_str Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
collection Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA)
bitstream.url.fl_str_mv https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/1/license.txt
https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/2/Dissert_Tais_Carvalho.pdf
https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/32858/3/Dissert_Tais_Carvalho.pdf.txt
bitstream.checksum.fl_str_mv 8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33
757fdee3d5c92c79d555f556b346d682
fe0ef465b16b1dee70d215bffc7e3ef0
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositório Institucional da FIOCRUZ (ARCA) - Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ)
repository.mail.fl_str_mv repositorio.arca@fiocruz.br
_version_ 1798324699045822464