Regeneração in vitro de segmentos nodais de Libidibia ferrea (Mart. ex Tul.) L.P. Queiroz sob diferentes concentrações e combinações de reguladores de crescimento e fontes luminosas

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Paula, Matheus da Rocha Uchôa de
Data de Publicação: 2019
Tipo de documento: Trabalho de conclusão de curso
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da Universidade do Estado do Amazonas (UEA)
Texto Completo: https://ri.uea.edu.br/handle/riuea/4545
Resumo: Libidibia ferrea (Mart. ex Tul.) L.P. Queiroz, popularly known as pau-ferro or jucá, is a plant species belonging to the family Fabaceae-Caesalpinoidae that has great medicinal value due to the potential of its active ingredient "Pau-ferrol A", which can be used as an important tool in the treatment of leukemia Human HL60. However, this species has been undergoing an intense process of extractivism practiced indiscriminately in their natural populations, in addition to of this, causing the genetic erosion and destruction of its habitat in the Amazon, where the irregular seed production combined with high integumentary dormancy has limited the production of seedlings aiming at the recomposition of natural populations and plantations ex situ. The study aimed to evaluate the physiological responses of seedlings of pau-ferro, developed in vitro, under different concentrations and combinations of growth regulators and light sources in the in vitro propagation of ironwood through an efficient alternative to promote the reproduction of genotypes through in vitro conditions of this species. The study was conducted in the National Research Institute's Forestry and Digital Technologies Laboratory da Amazônia (LASTED/INPA) Manaus, Amazonas, where nodal segments, originating from of the in vitro establishment of L. ferrea seeds following Silva's methodology et al., (2018), were inoculated in MS culture medium (SIGMA, M5519-50L, USA) plus different combinations of auxins and cytokinins in concentrations of 0.03 + 0.06 (mgL-1 ) and 0.05 + 0.1 (mgL-1 ), respectively. The auxins used were naphthaleneacetic acid (ANA), indole-3-acetic acid (IAA) and 3-indole-butyric acid (IBA), and the cytokinins were 6-benzylaminopurine (BAP), kinetin (KIN) and thidiazuron (TDZ). The results obtained suggest that the interaction of ANA and BAP (0.05 and 0.1 mg L -1 ), stimulated the highest rate of regeneration under blue-red LED, while the interaction of AIA and BAP (0.05 and 0.1 mg L-1 ) stimulated a higher multiplication rate under White LED, none of the treatments resulted in root growth. Key Words: Cytokinins, auxins, nodal segments, light sources
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However, this species has been undergoing an intense process of extractivism practiced indiscriminately in their natural populations, in addition to of this, causing the genetic erosion and destruction of its habitat in the Amazon, where the irregular seed production combined with high integumentary dormancy has limited the production of seedlings aiming at the recomposition of natural populations and plantations ex situ. The study aimed to evaluate the physiological responses of seedlings of pau-ferro, developed in vitro, under different concentrations and combinations of growth regulators and light sources in the in vitro propagation of ironwood through an efficient alternative to promote the reproduction of genotypes through in vitro conditions of this species. The study was conducted in the National Research Institute's Forestry and Digital Technologies Laboratory da Amazônia (LASTED/INPA) Manaus, Amazonas, where nodal segments, originating from of the in vitro establishment of L. ferrea seeds following Silva's methodology et al., (2018), were inoculated in MS culture medium (SIGMA, M5519-50L, USA) plus different combinations of auxins and cytokinins in concentrations of 0.03 + 0.06 (mgL-1 ) and 0.05 + 0.1 (mgL-1 ), respectively. The auxins used were naphthaleneacetic acid (ANA), indole-3-acetic acid (IAA) and 3-indole-butyric acid (IBA), and the cytokinins were 6-benzylaminopurine (BAP), kinetin (KIN) and thidiazuron (TDZ). The results obtained suggest that the interaction of ANA and BAP (0.05 and 0.1 mg L -1 ), stimulated the highest rate of regeneration under blue-red LED, while the interaction of AIA and BAP (0.05 and 0.1 mg L-1 ) stimulated a higher multiplication rate under White LED, none of the treatments resulted in root growth. Key Words: Cytokinins, auxins, nodal segments, light sourcesLibidibia ferrea (Mart. ex Tul.) L.P.Queiroz, popularmente conhecida como pau-ferro ou jucá, é uma espécie vegetal pertencente à família Fabaceae-Caesalpinoidae que apresenta grande valor medicinal devido ao potencial de seu princípio ativo “Pau-ferrol A”, que pode ser utilizado como importante ferramenta no tratamento da leucemia HL60 humana. Entretanto esta espécie vem sofrendo um intenso processo de extrativismo praticado de maneira indiscriminada em suas populações naturais, além disso, causando a erosão genética e destruição do seu habitat na Amazônia, onde a irregular produção de sementes aliada à elevada dormência tegumentar tem limitado a produção de mudas visando à recomposição das populações naturais e os plantios ex situ. O estudo teve por objetivo avaliar as respostas fisiológicas de plântulas de pau-ferro, desenvolvidas in vitro, sob diferentes concentrações e combinações de reguladores de crescimento e fontes luminosas na propagação in vitro de pau-ferro por meio de uma alternativa eficiente para promover a reprodução de genótipos superiores através de condições in vitro desta espécie. O estudo foi conduzido no Laboratório de Silvicultura e Tecnologias Digitais do Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia (LASTED/INPA) Manaus, Amazonas, onde segmentos nodais, oriundos do estabelecimento in vitro de sementes de L. ferrea seguindo a metodologia de Silva et al., (2018), foram inoculados em meio de cultura MS (SIGMA, M5519-50L, USA) acrescido de diferentes combinações de auxinas e citocininas nas concentrações de 0,03 + 0,06 (mgL-1 ) e 0,05 + 0,1 (mgL-1 ), respectivamente. As auxinas utilizadas foram o ácido naftalenoacético (ANA), ácido indol-3-acético (AIA) e ácido 3-indol-butírico (IBA), e as citocininas foram a 6-benzilaminopurina (BAP), cinetina (KIN) e tidiazurona (TDZ). Os resultados obtidos sugerem que a interação de ANA e BAP (0,05 e 0,1 mg L -1 ), estimulou a maior taxa de regeneração sob LED azul-vermelha, enquanto a interação de AIA e BAP (0,05 e 0,1 mg L-1 ) estimulou maior taxa de multiplicação sob LED branca, nenhum dos tratamentos resultou no crescimento de raízes. Palavras Chave: Citocininas, auxinas, segmentos nodais, fontes luminosas.Universidade do Estado do AmazonasBrasilUEALiberato, Maria Astrid RochaSilva, Daniel daPaula, Matheus da Rocha Uchôa de2022-01-10T13:52:40Z2024-09-08T11:29:39Z2021-01-102022-01-10T13:52:40Z2019-11-13info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisapplication/pdfPAULA, Matheus da Rocha Uchôa de. Regeneração in vitro de segmentos nodais de Libidibia ferrea (Mart. ex Tul.) L.P. Queiroz sob diferentes concentrações e combinações de reguladores de crescimento e fontes luminosas. 2019. 28 f. TCC (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade do Estado do Amazonas, Manaus.https://ri.uea.edu.br/handle/riuea/4545porBENEDITO, Clarisse et al. Emergência e crescimento inicial de plântulas de Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. var. ferrea em diferentes substratos. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v.7, p. 508–513, 2012. BHOJWANI, Sant Saran; DANTU, Prem Kumar. Plant Tissue Culture: An Introductory Text. 1. ed. Springer India: New Delhi, India,. 2013. CARVALHO, Sara et al. Viabilidade de Libidibia ferrea (Mart. Ex Tul.) LP Queiroz var. ferrea) por teste de tetrazólio. Journal of Seed Science, v.39, n.1, p. 7-12, 2017. CID, Luis; TEIXEIRA, João Batista. Explante, meio nutritivo, luz e temperatura. In: Cid, Luis. (Ed.). Cultivo in Vitro de Plantas. 3. ed. Brasília: Embrapa, 2014. p.17–52. COELHO, Maria et al. Superação da dormência tegumentar em sementes de Caesalpinia ferrea Mart ex Tul [Overcoming of dormancy coats of Caesalpinia ferrea Mart ex Tul. seeds]. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v. 4, p. 74–79, 2010. DROZINO, Ricardo et al. Minirrevisão: Bioativos de Libidibia ferrea e suas ações em odontologia. Arquivos do Museu Dinâmico Interdisciplinar, v. 21, n.1, p. 39-47, 2017. FERNANDES, Ciciane et al. Repellent Action of Carapa guianensis and Caesalpinia ferrea for flies species of Calliphoridae family. Ciência Rural, v. 46, p. 867–870, 2016. GEORGE, Edwin; HALL, Michael; KLERK, Geert-Jan. 2008. Plant Tissue Culture Procedure - Background. In: George, Edwin; Hall, Michael; Klerk, Geert. (Eds.). Plant Propagation by Tissue Culture. 1. ed. Dordrecht: Springer Science + Business Media BV, 2018. p.1–28. GOELZER, Ademir et al. Reguladores de crescimento na multiplicação in vitro de Campomanesia adamantium (Cambess.) O. 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Aplicações da cultura de tecidos em plantas medicinais. Brazilian Journal of Medicinal Plants, v. 14, p. 110–121, 2012. NAKAMURA, Eliane et al. Cancer chemopreventive effects of a Brazilian folk medicine, Juca, on in vivo two-stage skin carcinogenesis. Journal of Ethnopharmacology, v. 81, p. 135–137, 2002. NAWWAR, Mahmoud et al. Phenolics from Caesalpinia ferrea Mart.: Antioxidant, cytotoxic and hypolipidemic activity. Pharmazie, v. 70, p. 553–558, 2015. NOZAKI, Hiroshi et al. Pauferrol A, a novel chalcone trimer with a cyclobutane ring from Caesalpinia ferrea mart exhibiting DNA topoisomerase II inhibition and apoptosis inducing activity. Tetrahedron Letters, v. 48, p. 8290–8292, 2007. OLIVEIRA, Fábio; BARROS, Roseli; MOITA NETO, José. Plantas medicinais utilizadas em comunidades rurais de Oeiras, semiárido piauiense. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v. 12, p. 282–301, 2010. PEREIRA, Lívia et al. Polysaccharide fractions of Caesalpinia ferrea pods: potential anti-inflammatory usage. Journal of ethnopharmacology, v. 139, p. 642–648, 2012. RIBEIRO, D. A. et al. Promising medicinal plants for bioprospection in a Cerrado area of Chapada do Araripe, Northeastern Brazil. Journal of Ethnopharmacology, v. ROCHA, Gomes et al. Uso de LEDs na multiplicação in vitro de três cultivares de bananeira. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, v. 11.2, p. 247-252, 2017. SANTOS, Laércio; COELHO, Maria; AZEVEDO, Rodrigo. Qualidade de mudas de pau-ferro produzidas em diferentes substratos e condições de luz [Quality of Caesalpinia ferrea seedlings produced on different substrates and light condition]. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 33, p. 151–158, 2013. SCALON, Silvana et al. Germinação e crescimento de Caesalpinia ferrea Mart. Ex Tull. em diferentes substratos [Germination and Growth of Caesalpinia ferrea Mart. Ex Tul. in diferrent substrat]. Revista Árvore, v. 35, p. 633–639, 2011. SCHIAVINATO, Yara et al. Micropropagaçao de Anthurium plowmanii Croat. Micropropag. Plant Cell, Lavras, v4, n1, p. 15-20, 2008. SILVA, Daniel et al. In vitro propagation and seedling acclimatization of Caesalpinia ferrea Mart ., a valuable medicinal plant in the Amazon (Fabaceae). Boletim do Museu Paraense Emílio Goeldi. Ciências Naturais, v. 13, p. 57–65, 2018. YEH, Naichia; CHUNG, Jen-Ping. LEDs de alto brilho - fontes de iluminação com eficiência energética e seu potencial no cultivo de plantas em ambientes fechados. Revisões sobre energia renovável e sustentável, v. 13, n8, p. 2175- 2180, 2009.info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Repositório Institucional da Universidade do Estado do Amazonas (UEA)instname:Universidade do Estado do Amazonas (UEA)instacron:UEA2024-09-26T16:07:52Zoai:ri.uea.edu.br:riuea/4545Repositório InstitucionalPUBhttps://ri.uea.edu.br/server/oai/requestbibliotecacentral@uea.edu.bropendoar:2024-09-26T16:07:52Repositório Institucional da Universidade do Estado do Amazonas (UEA) - Universidade do Estado do Amazonas (UEA)false
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Minirrevisão: Bioativos de Libidibia ferrea e suas ações em odontologia. Arquivos do Museu Dinâmico Interdisciplinar, v. 21, n.1, p. 39-47, 2017. FERNANDES, Ciciane et al. Repellent Action of Carapa guianensis and Caesalpinia ferrea for flies species of Calliphoridae family. Ciência Rural, v. 46, p. 867–870, 2016. GEORGE, Edwin; HALL, Michael; KLERK, Geert-Jan. 2008. Plant Tissue Culture Procedure - Background. In: George, Edwin; Hall, Michael; Klerk, Geert. (Eds.). Plant Propagation by Tissue Culture. 1. ed. Dordrecht: Springer Science + Business Media BV, 2018. p.1–28. GOELZER, Ademir et al. Reguladores de crescimento na multiplicação in vitro de Campomanesia adamantium (Cambess.) O. Berg (Myrtaceae)/Growth regulators in vitro multiplication of Campomanesiaadamantium (Cambess.) O. Berg (Myrtaceae). Brazilian Applied Science Review, v. 3, n. 2, p. 1280-1291, 2019. GRATTAPAGLIA, Dario; MACHADO, Marcos Antonio. Micropropagation. In: Torres, Antônio; Caldas, Linda; Buso, Jose. (Eds.). Tissue Culture and Genetic Transformation of Plants. Brasília: Embrapa,1998. p.183–260. LENCINA, Kelen Haygert et al. Produtividade de microcepas de grápia (Apuleia Leiocarpa) mantidas in vitro. Ciência Florestal, v. 28, p. 150-159, 2018. LENHARD, Nádia Regina; SCALON, Silvana; NOVELINO, José Oscar. Crescimento inicial de mudas de pau ferro (Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. Var. leiostachya Benth.) sob diferentes regimes hídricos. Ciencia e Agrotecnologia, v. 34, p. 870–877, 2010. LIMA, Juliana Domingues et al. Efeitos da luminosidade no crescimento de mudas de Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. (Leguminosae, Caesalpinoideae). Acta Amazonica, v. 38, p. 5–10, 2008. LOYOLA-VARGAS, Víctor; OCHOA-ALEJO, Neftalí. An Introduction to Plant Cell Culture: The Future Ahead. In: Loyola-Vargas, Víctor; Ochoa-Alejo, Neftalí. (Eds.). Plant Cell Culture Protocols. 3. ed. New Delhi, India: Humana Press, 2012. p.1–8. MEDEIROS, Patrícia; LADIO, Ana; ALBUQUERQUE, Ulysses. 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NAWWAR, Mahmoud et al. Phenolics from Caesalpinia ferrea Mart.: Antioxidant, cytotoxic and hypolipidemic activity. Pharmazie, v. 70, p. 553–558, 2015. NOZAKI, Hiroshi et al. Pauferrol A, a novel chalcone trimer with a cyclobutane ring from Caesalpinia ferrea mart exhibiting DNA topoisomerase II inhibition and apoptosis inducing activity. Tetrahedron Letters, v. 48, p. 8290–8292, 2007. OLIVEIRA, Fábio; BARROS, Roseli; MOITA NETO, José. Plantas medicinais utilizadas em comunidades rurais de Oeiras, semiárido piauiense. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v. 12, p. 282–301, 2010. PEREIRA, Lívia et al. Polysaccharide fractions of Caesalpinia ferrea pods: potential anti-inflammatory usage. Journal of ethnopharmacology, v. 139, p. 642–648, 2012. RIBEIRO, D. A. et al. Promising medicinal plants for bioprospection in a Cerrado area of Chapada do Araripe, Northeastern Brazil. Journal of Ethnopharmacology, v. ROCHA, Gomes et al. 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