Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Solange Evans Osses, Ingrid
Data de Publicação: 2006
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Repositório Institucional da UFPE
Texto Completo: https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/2080
Resumo: Neste trabalho foram desenvolvidos e otimizados métodos diagnósticos para dois agentes patogênicos com uma alta incidência no Brasil e cujos diagnósticos se baseiam principalmente em métodos invasivos como são o Helicobacter pylori e Leishmania chagasi (L. chagasi). A bactéria gram (-) Helicobacter pylori e a principal causa de ulcera péptica e gastrite maligna no mundo. Seu diagnostico e realizado preferencialmente por meio de endoscopia e biopsia de tecido gástrico. A bactéria e eliminada pelas fezes o que permitiria um diagnostico não invasivo e de controle de cura se implementar PCR de amostras de pacientes antes e durante o tratamento de doença. Não entanto as fezes possuem uma serie de inibidores o que tem dificultado o desenvolvimento de métodos de PCR para seu diagnostico. Aqui comparamos métodos de obtenção de DNA de fezes baseados em fervura das amostras descritos anteriormente por Holland (2000), com método de Lise Alcalina , modificado com o uso de Triton X-100 melhorando a obtenção de DNA eliminando a presencia de inibidores. Posteriormente DNAs provenientes de amostras de fezes de 10 pacientes foram utilizados em reações de PCR com alvos específicos descritos anteriormente para Helicobacter pylori (urec, RNAr e vac); 5 das amostras amplificaram de maneira especifica concordando com o diagnostico Giemsa (+) de biopsia de tecido gástrico de pacientes com dispepsia. L. chagasi, protozoário responsável de causar a leishmanioses visceral, no Brasil apresenta uma alta incidência e ampla distribuição, com formas graves e letais quando associada a quadros de ma nutrição e infecções concomitantes. O diagnostico e realizado principalmente por punção aspirativa de baço, fígado, medula óssea ou linfonodos permitindo a visualização do parasita no material. No presente trabalho desenvolvemos PCR simples usando diferentes DNAs parasitários de tripanosomatideos e oligonucleotideos PIA 3 e DEB 8 específicos para L. chagasi.. Os dois pares de oligonucleotideos resultaram serem específicos para L.chagasi, sendo a sensibilidade de 10 pg para PIA3 e de 1 pg para DEB8. Com o objetivo de diferenciar o diagnostico de Leishmaniose visceral e Leishmanioses tegumentar foi desenvolvida PCR múltipla utilizando alvos específicos para leishmania subgênero Viannia, denominados LV1 junto com os alvos específicos para L. chagasi . Os 4 oligonucleotideos não competeram entre sim na reação e mantiveram a especificidade e sensibilidade das PCR simples. Posteriormente um analise de bioinformática dos bancos de dados dos genes de Tripanosomatideos do portal GeneDB do Sanger Centre foi realizado na procura de um gene órfão de L. infantum para ser usado no diagnostico de L chagasi. 7.078 proteinas hipotéticas de L. infantum, foram comparados com 11.812 de T cruzi, 7557 de T brucei e 5.364 de L major. Através das ferramentas omni blast e Protogim, conseguimos seleccionar 93 proteinas hipotéticas de L infantum. Por critérios de tamanho, localização celular e outros, 5 putativos alvos foram escolhidos para serem testados in vitro. O gene Linj 20074, resultou ser altamente especifico e com sensibilidade de 1pg. Genes órfãos se apresentam como promissores alternativas para diagnostico ou alvo quimioterapicos em doenças parasitarias
id UFPE_947dc30a8ba7f48dae6dbdbcc371a71a
oai_identifier_str oai:repositorio.ufpe.br:123456789/2080
network_acronym_str UFPE
network_name_str Repositório Institucional da UFPE
repository_id_str 2221
spelling Solange Evans Osses, IngridPaes de Andrade, Paulo 2014-06-12T15:54:26Z2014-06-12T15:54:26Z2006Solange Evans Osses, Ingrid; Paes de Andrade, Paulo. Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori. 2006. Tese (Doutorado). Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2006.https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/2080Neste trabalho foram desenvolvidos e otimizados métodos diagnósticos para dois agentes patogênicos com uma alta incidência no Brasil e cujos diagnósticos se baseiam principalmente em métodos invasivos como são o Helicobacter pylori e Leishmania chagasi (L. chagasi). A bactéria gram (-) Helicobacter pylori e a principal causa de ulcera péptica e gastrite maligna no mundo. Seu diagnostico e realizado preferencialmente por meio de endoscopia e biopsia de tecido gástrico. A bactéria e eliminada pelas fezes o que permitiria um diagnostico não invasivo e de controle de cura se implementar PCR de amostras de pacientes antes e durante o tratamento de doença. Não entanto as fezes possuem uma serie de inibidores o que tem dificultado o desenvolvimento de métodos de PCR para seu diagnostico. Aqui comparamos métodos de obtenção de DNA de fezes baseados em fervura das amostras descritos anteriormente por Holland (2000), com método de Lise Alcalina , modificado com o uso de Triton X-100 melhorando a obtenção de DNA eliminando a presencia de inibidores. Posteriormente DNAs provenientes de amostras de fezes de 10 pacientes foram utilizados em reações de PCR com alvos específicos descritos anteriormente para Helicobacter pylori (urec, RNAr e vac); 5 das amostras amplificaram de maneira especifica concordando com o diagnostico Giemsa (+) de biopsia de tecido gástrico de pacientes com dispepsia. L. chagasi, protozoário responsável de causar a leishmanioses visceral, no Brasil apresenta uma alta incidência e ampla distribuição, com formas graves e letais quando associada a quadros de ma nutrição e infecções concomitantes. O diagnostico e realizado principalmente por punção aspirativa de baço, fígado, medula óssea ou linfonodos permitindo a visualização do parasita no material. No presente trabalho desenvolvemos PCR simples usando diferentes DNAs parasitários de tripanosomatideos e oligonucleotideos PIA 3 e DEB 8 específicos para L. chagasi.. Os dois pares de oligonucleotideos resultaram serem específicos para L.chagasi, sendo a sensibilidade de 10 pg para PIA3 e de 1 pg para DEB8. Com o objetivo de diferenciar o diagnostico de Leishmaniose visceral e Leishmanioses tegumentar foi desenvolvida PCR múltipla utilizando alvos específicos para leishmania subgênero Viannia, denominados LV1 junto com os alvos específicos para L. chagasi . Os 4 oligonucleotideos não competeram entre sim na reação e mantiveram a especificidade e sensibilidade das PCR simples. Posteriormente um analise de bioinformática dos bancos de dados dos genes de Tripanosomatideos do portal GeneDB do Sanger Centre foi realizado na procura de um gene órfão de L. infantum para ser usado no diagnostico de L chagasi. 7.078 proteinas hipotéticas de L. infantum, foram comparados com 11.812 de T cruzi, 7557 de T brucei e 5.364 de L major. Através das ferramentas omni blast e Protogim, conseguimos seleccionar 93 proteinas hipotéticas de L infantum. Por critérios de tamanho, localização celular e outros, 5 putativos alvos foram escolhidos para serem testados in vitro. O gene Linj 20074, resultou ser altamente especifico e com sensibilidade de 1pg. Genes órfãos se apresentam como promissores alternativas para diagnostico ou alvo quimioterapicos em doenças parasitariasporUniversidade Federal de PernambucoAttribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Brazilhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/info:eu-repo/semantics/openAccessBiologia MolecularDiagnósticoHelicobacter pyloriLeishmania chagasiDesenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pyloriinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisreponame:Repositório Institucional da UFPEinstname:Universidade Federal de Pernambuco (UFPE)instacron:UFPEORIGINALarquivo5232_1.pdfapplication/pdf6314022https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/1/arquivo5232_1.pdf6d483dcd851885e89a9ca20a1e572b4aMD51LICENSElicense.txttext/plain1748https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/2/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD52TEXTarquivo5232_1.pdf.txtarquivo5232_1.pdf.txtExtracted texttext/plain161094https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/3/arquivo5232_1.pdf.txtcf32ea9abd79d0cc778f90911c79629dMD53THUMBNAILarquivo5232_1.pdf.jpgarquivo5232_1.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1170https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/4/arquivo5232_1.pdf.jpgf7695d65a70e3413ed0be7403b6dc508MD54123456789/20802019-10-25 02:52:21.444oai:repositorio.ufpe.br:123456789/2080Tk9URTogUExBQ0UgWU9VUiBPV04gTElDRU5TRSBIRVJFClRoaXMgc2FtcGxlIGxpY2Vuc2UgaXMgcHJvdmlkZWQgZm9yIGluZm9ybWF0aW9uYWwgcHVycG9zZXMgb25seS4KCk5PTi1FWENMVVNJVkUgRElTVFJJQlVUSU9OIExJQ0VOU0UKCkJ5IHNpZ25pbmcgYW5kIHN1Ym1pdHRpbmcgdGhpcyBsaWNlbnNlLCB5b3UgKHRoZSBhdXRob3Iocykgb3IgY29weXJpZ2h0Cm93bmVyKSBncmFudHMgdG8gRFNwYWNlIFVuaXZlcnNpdHkgKERTVSkgdGhlIG5vbi1leGNsdXNpdmUgcmlnaHQgdG8gcmVwcm9kdWNlLAp0cmFuc2xhdGUgKGFzIGRlZmluZWQgYmVsb3cpLCBhbmQvb3IgZGlzdHJpYnV0ZSB5b3VyIHN1Ym1pc3Npb24gKGluY2x1ZGluZwp0aGUgYWJzdHJhY3QpIHdvcmxkd2lkZSBpbiBwcmludCBhbmQgZWxlY3Ryb25pYyBmb3JtYXQgYW5kIGluIGFueSBtZWRpdW0sCmluY2x1ZGluZyBidXQgbm90IGxpbWl0ZWQgdG8gYXVkaW8gb3IgdmlkZW8uCgpZb3UgYWdyZWUgdGhhdCBEU1UgbWF5LCB3aXRob3V0IGNoYW5naW5nIHRoZSBjb250ZW50LCB0cmFuc2xhdGUgdGhlCnN1Ym1pc3Npb24gdG8gYW55IG1lZGl1bSBvciBmb3JtYXQgZm9yIHRoZSBwdXJwb3NlIG9mIHByZXNlcnZhdGlvbi4KCllvdSBhbHNvIGFncmVlIHRoYXQgRFNVIG1heSBrZWVwIG1vcmUgdGhhbiBvbmUgY29weSBvZiB0aGlzIHN1Ym1pc3Npb24gZm9yCnB1cnBvc2VzIG9mIHNlY3VyaXR5LCBiYWNrLXVwIGFuZCBwcmVzZXJ2YXRpb24uCgpZb3UgcmVwcmVzZW50IHRoYXQgdGhlIHN1Ym1pc3Npb24gaXMgeW91ciBvcmlnaW5hbCB3b3JrLCBhbmQgdGhhdCB5b3UgaGF2ZQp0aGUgcmlnaHQgdG8gZ3JhbnQgdGhlIHJpZ2h0cyBjb250YWluZWQgaW4gdGhpcyBsaWNlbnNlLiBZb3UgYWxzbyByZXByZXNlbnQKdGhhdCB5b3VyIHN1Ym1pc3Npb24gZG9lcyBub3QsIHRvIHRoZSBiZXN0IG9mIHlvdXIga25vd2xlZGdlLCBpbmZyaW5nZSB1cG9uCmFueW9uZSdzIGNvcHlyaWdodC4KCklmIHRoZSBzdWJtaXNzaW9uIGNvbnRhaW5zIG1hdGVyaWFsIGZvciB3aGljaCB5b3UgZG8gbm90IGhvbGQgY29weXJpZ2h0LAp5b3UgcmVwcmVzZW50IHRoYXQgeW91IGhhdmUgb2J0YWluZWQgdGhlIHVucmVzdHJpY3RlZCBwZXJtaXNzaW9uIG9mIHRoZQpjb3B5cmlnaHQgb3duZXIgdG8gZ3JhbnQgRFNVIHRoZSByaWdodHMgcmVxdWlyZWQgYnkgdGhpcyBsaWNlbnNlLCBhbmQgdGhhdApzdWNoIHRoaXJkLXBhcnR5IG93bmVkIG1hdGVyaWFsIGlzIGNsZWFybHkgaWRlbnRpZmllZCBhbmQgYWNrbm93bGVkZ2VkCndpdGhpbiB0aGUgdGV4dCBvciBjb250ZW50IG9mIHRoZSBzdWJtaXNzaW9uLgoKSUYgVEhFIFNVQk1JU1NJT04gSVMgQkFTRUQgVVBPTiBXT1JLIFRIQVQgSEFTIEJFRU4gU1BPTlNPUkVEIE9SIFNVUFBPUlRFRApCWSBBTiBBR0VOQ1kgT1IgT1JHQU5JWkFUSU9OIE9USEVSIFRIQU4gRFNVLCBZT1UgUkVQUkVTRU5UIFRIQVQgWU9VIEhBVkUKRlVMRklMTEVEIEFOWSBSSUdIVCBPRiBSRVZJRVcgT1IgT1RIRVIgT0JMSUdBVElPTlMgUkVRVUlSRUQgQlkgU1VDSApDT05UUkFDVCBPUiBBR1JFRU1FTlQuCgpEU1Ugd2lsbCBjbGVhcmx5IGlkZW50aWZ5IHlvdXIgbmFtZShzKSBhcyB0aGUgYXV0aG9yKHMpIG9yIG93bmVyKHMpIG9mIHRoZQpzdWJtaXNzaW9uLCBhbmQgd2lsbCBub3QgbWFrZSBhbnkgYWx0ZXJhdGlvbiwgb3RoZXIgdGhhbiBhcyBhbGxvd2VkIGJ5IHRoaXMKbGljZW5zZSwgdG8geW91ciBzdWJtaXNzaW9uLgo=Repositório InstitucionalPUBhttps://repositorio.ufpe.br/oai/requestattena@ufpe.bropendoar:22212019-10-25T05:52:21Repositório Institucional da UFPE - Universidade Federal de Pernambuco (UFPE)false
dc.title.pt_BR.fl_str_mv Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
title Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
spellingShingle Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
Solange Evans Osses, Ingrid
Biologia Molecular
Diagnóstico
Helicobacter pylori
Leishmania chagasi
title_short Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
title_full Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
title_fullStr Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
title_full_unstemmed Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
title_sort Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori
author Solange Evans Osses, Ingrid
author_facet Solange Evans Osses, Ingrid
author_role author
dc.contributor.author.fl_str_mv Solange Evans Osses, Ingrid
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Paes de Andrade, Paulo
contributor_str_mv Paes de Andrade, Paulo
dc.subject.por.fl_str_mv Biologia Molecular
Diagnóstico
Helicobacter pylori
Leishmania chagasi
topic Biologia Molecular
Diagnóstico
Helicobacter pylori
Leishmania chagasi
description Neste trabalho foram desenvolvidos e otimizados métodos diagnósticos para dois agentes patogênicos com uma alta incidência no Brasil e cujos diagnósticos se baseiam principalmente em métodos invasivos como são o Helicobacter pylori e Leishmania chagasi (L. chagasi). A bactéria gram (-) Helicobacter pylori e a principal causa de ulcera péptica e gastrite maligna no mundo. Seu diagnostico e realizado preferencialmente por meio de endoscopia e biopsia de tecido gástrico. A bactéria e eliminada pelas fezes o que permitiria um diagnostico não invasivo e de controle de cura se implementar PCR de amostras de pacientes antes e durante o tratamento de doença. Não entanto as fezes possuem uma serie de inibidores o que tem dificultado o desenvolvimento de métodos de PCR para seu diagnostico. Aqui comparamos métodos de obtenção de DNA de fezes baseados em fervura das amostras descritos anteriormente por Holland (2000), com método de Lise Alcalina , modificado com o uso de Triton X-100 melhorando a obtenção de DNA eliminando a presencia de inibidores. Posteriormente DNAs provenientes de amostras de fezes de 10 pacientes foram utilizados em reações de PCR com alvos específicos descritos anteriormente para Helicobacter pylori (urec, RNAr e vac); 5 das amostras amplificaram de maneira especifica concordando com o diagnostico Giemsa (+) de biopsia de tecido gástrico de pacientes com dispepsia. L. chagasi, protozoário responsável de causar a leishmanioses visceral, no Brasil apresenta uma alta incidência e ampla distribuição, com formas graves e letais quando associada a quadros de ma nutrição e infecções concomitantes. O diagnostico e realizado principalmente por punção aspirativa de baço, fígado, medula óssea ou linfonodos permitindo a visualização do parasita no material. No presente trabalho desenvolvemos PCR simples usando diferentes DNAs parasitários de tripanosomatideos e oligonucleotideos PIA 3 e DEB 8 específicos para L. chagasi.. Os dois pares de oligonucleotideos resultaram serem específicos para L.chagasi, sendo a sensibilidade de 10 pg para PIA3 e de 1 pg para DEB8. Com o objetivo de diferenciar o diagnostico de Leishmaniose visceral e Leishmanioses tegumentar foi desenvolvida PCR múltipla utilizando alvos específicos para leishmania subgênero Viannia, denominados LV1 junto com os alvos específicos para L. chagasi . Os 4 oligonucleotideos não competeram entre sim na reação e mantiveram a especificidade e sensibilidade das PCR simples. Posteriormente um analise de bioinformática dos bancos de dados dos genes de Tripanosomatideos do portal GeneDB do Sanger Centre foi realizado na procura de um gene órfão de L. infantum para ser usado no diagnostico de L chagasi. 7.078 proteinas hipotéticas de L. infantum, foram comparados com 11.812 de T cruzi, 7557 de T brucei e 5.364 de L major. Através das ferramentas omni blast e Protogim, conseguimos seleccionar 93 proteinas hipotéticas de L infantum. Por critérios de tamanho, localização celular e outros, 5 putativos alvos foram escolhidos para serem testados in vitro. O gene Linj 20074, resultou ser altamente especifico e com sensibilidade de 1pg. Genes órfãos se apresentam como promissores alternativas para diagnostico ou alvo quimioterapicos em doenças parasitarias
publishDate 2006
dc.date.issued.fl_str_mv 2006
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2014-06-12T15:54:26Z
dc.date.available.fl_str_mv 2014-06-12T15:54:26Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/doctoralThesis
format doctoralThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv Solange Evans Osses, Ingrid; Paes de Andrade, Paulo. Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori. 2006. Tese (Doutorado). Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2006.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/2080
identifier_str_mv Solange Evans Osses, Ingrid; Paes de Andrade, Paulo. Desenvolvimento e otimização de métodos de biolgia molecular para o diagnóstico de Leichmania chagasi e Helicobacter pylori. 2006. Tese (Doutorado). Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2006.
url https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/2080
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.rights.driver.fl_str_mv Attribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Brazil
http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/
info:eu-repo/semantics/openAccess
rights_invalid_str_mv Attribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Brazil
http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/
eu_rights_str_mv openAccess
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal de Pernambuco
publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal de Pernambuco
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Repositório Institucional da UFPE
instname:Universidade Federal de Pernambuco (UFPE)
instacron:UFPE
instname_str Universidade Federal de Pernambuco (UFPE)
instacron_str UFPE
institution UFPE
reponame_str Repositório Institucional da UFPE
collection Repositório Institucional da UFPE
bitstream.url.fl_str_mv https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/1/arquivo5232_1.pdf
https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/2/license.txt
https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/3/arquivo5232_1.pdf.txt
https://repositorio.ufpe.br/bitstream/123456789/2080/4/arquivo5232_1.pdf.jpg
bitstream.checksum.fl_str_mv 6d483dcd851885e89a9ca20a1e572b4a
8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33
cf32ea9abd79d0cc778f90911c79629d
f7695d65a70e3413ed0be7403b6dc508
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositório Institucional da UFPE - Universidade Federal de Pernambuco (UFPE)
repository.mail.fl_str_mv attena@ufpe.br
_version_ 1802310626833334272