Cryptosporidium em bezerros destinados à exploração leiteira no Estado do Rio de Janeiro: padronização de técnicas moleculares, caracterização genotípica e influência do manejo na infecção

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Chambarelli, Melissa Carvalho Machado do Couto
Data de Publicação: 2012
Tipo de documento: Tese
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9780
Resumo: A criptosporidiose bovina é de grande relevância para a pecuária brasileira, principalmente em animais jovens. Bovinos infectados com Cryptosporidium podem apresentar um baixo desempenho produtivo além de eliminar grande quantidade de formas infectantes no ambiente, especialmente aqueles que apresentam um quadro clínico de diarréia. Os objetivos do trabalho foram: comparar duas técnicas de extração de DNA utilizando um kit comercial e um protocolo adaptado por pesquisadores; analisar diversas temperaturas de anelamento para as reações de PCR-Nested para os genes alvo 18S e GP60, além de dois tipos de coloração de fragmentos de DNA em gel de agarose (brometo de etídio e gelred); determinar a ocorrência de espécies e subtipos de Cryptosporidium em bezerros com até um ano de idade, através da técnica de PCR para os genes alvos 18S e GP60 e analisar a influencia de modificações no manejo no percentual de infecção em bezerros. Os resultados da padronização demostraram uma maior grau de pureza do kit comercial, tendo sido ainda estabelecido novas temperaturas para uma otimização das técnicas, além da maior sensibilidade e baixa toxicidade do corante gelred. Após o sequenciamento foi observada a presença de três espécies de Cryptosporidium infectando bezerros em diferentes faixas etárias. Na fase pré-desmame (< 2 meses) 10% dos animais encontravam-se infectados por C. parvum, enquanto que os bezerros na fase pósdesmame (≥ 2 meses) apresentaram-se infectados por C. andersoni (15%) e C. ryanae (2%). Nesse estudo também foi observado que a implantação de algumas mudanças no manejo da propriedade pode ser de grande ajuda na tentativa de diminuir a disseminação da doença entre os animais e reduzir a contaminação ambiental.
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spelling Chambarelli, Melissa Carvalho Machado do CoutoBomfim, Teresa Cristina Bergamo do609.928.087-15http://lattes.cnpq.br/6299581965425007Araújo, Adauto José Gonçalves deFigueiredo, Beatriz Benner deFigueiredo, Fabiano BorgesMeireles, Marcelo VasconcelosAmendoeira, Maria Regina Reis082.487.477-35http://lattes.cnpq.br/66355785401455192023-12-21T18:44:11Z2023-12-21T18:44:11Z2012-03-26CHAMBARELLI, Melissa Carvalho Machado do Couto. Cryptosporidium em bezerros destinados à exploração leiteira no Estado do Rio de Janeiro: padronização de técnicas moleculares, caracterização genotípica e influência do manejo na infecção. 2012. 123 f. Tese (Doutorado em Ciências Veterinárias) - Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2012.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9780A criptosporidiose bovina é de grande relevância para a pecuária brasileira, principalmente em animais jovens. Bovinos infectados com Cryptosporidium podem apresentar um baixo desempenho produtivo além de eliminar grande quantidade de formas infectantes no ambiente, especialmente aqueles que apresentam um quadro clínico de diarréia. Os objetivos do trabalho foram: comparar duas técnicas de extração de DNA utilizando um kit comercial e um protocolo adaptado por pesquisadores; analisar diversas temperaturas de anelamento para as reações de PCR-Nested para os genes alvo 18S e GP60, além de dois tipos de coloração de fragmentos de DNA em gel de agarose (brometo de etídio e gelred); determinar a ocorrência de espécies e subtipos de Cryptosporidium em bezerros com até um ano de idade, através da técnica de PCR para os genes alvos 18S e GP60 e analisar a influencia de modificações no manejo no percentual de infecção em bezerros. Os resultados da padronização demostraram uma maior grau de pureza do kit comercial, tendo sido ainda estabelecido novas temperaturas para uma otimização das técnicas, além da maior sensibilidade e baixa toxicidade do corante gelred. Após o sequenciamento foi observada a presença de três espécies de Cryptosporidium infectando bezerros em diferentes faixas etárias. Na fase pré-desmame (< 2 meses) 10% dos animais encontravam-se infectados por C. parvum, enquanto que os bezerros na fase pósdesmame (≥ 2 meses) apresentaram-se infectados por C. andersoni (15%) e C. ryanae (2%). Nesse estudo também foi observado que a implantação de algumas mudanças no manejo da propriedade pode ser de grande ajuda na tentativa de diminuir a disseminação da doença entre os animais e reduzir a contaminação ambiental.CNPq - Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e TecnológicoBovine cryptosporidiosis is of great relevance for Brazilian livestock, especially in young animals. Calves infected by Cryptosporidium may present low productivity, eliminating a great amount of infectious forms in the environment, especially those with clinical diarrhea. The aims of this study were: compare two DNA extraction techniques using a commercial kit and a researchers adapted protocol; analyze several annealing temperatures used in the PCRNested reactions for the gene target 18S and GP60, in addition to two types of DNA fragments staining in agarose gel (ethidium bromide and gelred); determine the occurrence of Cryptosporidium species and subtypes in calves up to one year of age, throughout PCR technique for the gene targets 18S and GP60 and analyze the influence of management modifications in the percentage of infection in calves. The standardization results demonstrate a higher sensitivity of the commercial kit and gelred, with the establishment of new temperatures for a better performance of the applied techniques. After sequencing, three species of Cryptosporidium were observed infecting calves at different ages. At pre-weaning fase (< 2 months) 10% of animals were infected by C. parvum, while 15% and 2% of animals in post-weaning fase (≥ 2 months) were infected by C. andersoni and C. ryanae respectively. Moreover, it was also possible to notice in this study that the implementation of some changes at the farm management could be of great help for reducing the dissemination of the disease between the animals and the environmental contamination.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Ciências VeterináriasUFRRJBrasilInstituto de VeterináriaCryptosporidiumbezerro, manejotécnicas molecularesfilogeniaCryptosporidiumcalfmanagementmolecular techniquesphylogenyMedicina VeterináriaCryptosporidium em bezerros destinados à exploração leiteira no Estado do Rio de Janeiro: padronização de técnicas moleculares, caracterização genotípica e influência do manejo na infecçãoCryptosporidium in dairy calves in Rio de Janeiro State: Standardization of Molecular Techniques, Genotypic Characterization and Influence of Management in Infectioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisABE, N.; MATSUBAYASHI, M.; KIMATA, I.; ISEKI, M. Subgenotype analysis of Cryptosporidium parvum isolates from humans and animals in Japan using the 60-kDa glycoprotein gene sequences. Parasitology Research, v. 99, n. 3, p. 303-305, 2006. ALVES, M.; XIAO, L.; ANTUNES, F.; MATOS, O. Distribution of Cryptosporidium subtypes in humans and domestic and wild ruminants in Portugal. Parasitology Research, v. 99, n.3 ,p. 287-292, 2006. AYRES, M.; Jr AYRES, M.; AYRES, D.L.; SANTOS, A.S. BioEstat 4.0 – Aplicações estatísticas nas áreas das ciências biológicas e médicas, 4. Ed. Belém: IOEPA, 2005. 324 p. BAJER, A. Cryptosporidium and Giardia spp. infections in humans, animals and the environment in Poland. Parasitology Research, v. 104, n.1 , p. 1-17, 2008. BARTA, J.R.; THOMPSON, A. What is Cryptosporidium? Reappraising its biology and phylogenetic affinities. Trends in Parasitology, v. 22, n. 10, p. 463-468, 2006. BARTELS, C. J. M.; HOLZHAUER, M.; JORRITSMA, R.; SWART, W.A.J.M.; LAM, T.J.G.M. Prevalence, prediction and risk factors on enteropathogens in normal and non-normal faeces of young Dutch dairy calves. Preventive Veterinary Medicine, v. 93, n.2-3 , p. 162-169, 2010. BECHER, K.A.; ROBERTSON,I.D.; FRASER, D.M.; PALMER, D.G; THOMPSON, R.C.A. Molecular epidemiology of Giardia and Cryptosporidium infections in dairy calves originating from three sources in Western Australia. Veterinary Parasitology, v. 123, n.1-2 , p.1-9, 2004. BLEARS, M.J.; POKOMY, N.J.; CARRENO, R.A.; CHEN, S.; DE GRANDIS, S.A.; LEE, H.; TREVORS, J.T. DNA fingerprinting of Cryptosporidium parvum isolates using amplified fragment length polymorphism (AFLP). Journal of Parasitology, v. 86, n. 4, p. 838-841, 2000. BOYER, D.G.; KUCZYNSKA, E. Prevalence and concentration of Cryptosporidium oocysts in beef cattlenpaddock soils and forage. Foodborn Pathogens and Disease, v. 7, n. 8, p. 893-900, 2010. BROGLIA, A.; RECKINGER, S.; CACCIÓ, S.M.; NÖCKLER, K. Distribution of Cryptosporidium parvum subtypes in calves in Germany. Veterinary Parasitology, v. 154, n. 1-2, p. 8-13, 2008. BROOK, E.; HART, C.A.; FRENCH, N.; CHRISTLEY, R. Prevalence and risk factors for Cryptosporidium spp. infection in young calves. Veterinary Parasitology, v. 152, n. 1-2, p. 46-52, 2008. CARDOSA, J.M.S.; SILVEIRA, F.L.; ARAÚJO, A.J.U.S.; CARVALHO, J.C.; KANAMURA, H.Y. Ocorrência de Cryptosporidium spp. em um rebanho bovino leiteiro no município de Caçapava, Estado de São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, Suplemento n. 1, p. 239-242, 2008. 113 CARRENO, R.A.; MARTIN, D.S.; BARTA, J.R. Cryptosporidium is more closely related to the gregarines tha to coccidian as shown by phylogenetic analysis of apicomplexan parasites inferred using small-subunit ribosomal RNA gene sequences. Parasitology Research, v. 85, n. 11, p. 899-904, 1999. CASTRO-HERMIDA, J.A.; ALMEIDA, A.; GONZÁLEZ-WARLETA, M.; COSTA, J.M.C.; RUMBO-LORENZO, C.; MEZO.; M. Occurrence of Cryptosporidium parvum and Giardia duodenalis in healthy adult domestic ruminants. Parasitology Research, v. 101, n. 5, p. 1443-1448, 2007. CASTRO-HERMIDA, J.A.; GARCÍA-PRESEDO, I; ALMEIDA, A.; GONZÁLEZ-WARLETA, M.; COSTA, J.M.C.; MEZO, M. Detection of Cryptosporidium spp. and Giardia duodenalis in surface water: A health risk for humans and animals. Water Research, v. 43, n. 17, p. 4133-4142, 2009. CEVALLOS, A.M.; ZHANG, X.; WALDOR, M.K.; JAISON, S.; ZHOU, X.; TZIPORI, S.; NEUTRA, M.R.; WARD, H.D. Molecular cloning and expression of a gene encoding Cryptosporidium parvum glycoproteins gp40 and gp15. Infection and Immunity, v. 68, n. 7, p. 4108-4116, 2000. CHAKO, C.Z.; TYLER, J.W.; SCHULTZ, L.G.; CHIGUMA, L.; BEERNTSEN, B.T. Cryptosporidiosis in people: It’s not just about the cows. Journal of Veterinary Internal Medicine, v. 24, n. 1, p. 37-43, 2010. CHALMERS, R.M. Advances in diagnosis: Is microscopy still the benchmark? In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 147-157. CHALMERS, R.M.; GILES, M. Zoonotic cryptosporidiosis in the UK – challenges for control. Journal of Applied Microbiology, v. 109, n. 5, p. 1487-1497, 2010. CHALMERS, R.M.; SMITH, R.; ELWIN, K; CLIFTON-HADLEY, F.A.; GILES, M. Epidemiology of anthroponotic and zoonotic human cryptosporidiosis in England and Wales, 2004-2006. Epidemiology and Infection, v. 139, n. 5, p. 700-712, 2011. CHIARI, L.; VALLE, J.V.R.; RESENDE, R.M.S. Comparação entre três métodos de extração de DNA genômico para análises moleculares em Stylosanthes guianensis. Embrapa Gado de Corte-Circular Técnica, v. 36, p. 1-6, 2009. Disponível em: <http://www.cnpgc.embrapa.br/publicacoes/ct/ct36/CT36.pdf>. Acesso em: 20 de outubro de 2010. COKLIN, T.; UEHLINGER, F.D.; FARBER, J.M.; BARKEMA, H.W.; O’HANDLEY, R.M.; DIXON, B.R. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy calves from 11 farms in Prince Edward Island, Canada. Veterinary Parasitology, v.160, n. 3-4, p. 323-326, 2009. COKLIN, T.; FARBER, J.M.; PARRINGTON, L.J.; COKLIN, Z.; ROSS, W.H.; DIXON, B.R. Temporal changes in the prevalence and shedding patterns of Giardia duodenalis cysts and Cryptosporidium spp. oocysts in a herd of dairy calves in Ontario. The Canadian Veterinary Journal, v. 51, n. 8, p. 841-846, 2010. 114 COSENDEY, R.; FIUZA, V.R.S.; OLIVEIRA, F.C.R. Importância do manejo na criptosporidiose em criações de ovinos. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, Suplemento n. 1, 209-214, 2008. DAS, G.; CHANGKIJA, B.; SARKAR, S.; DAS, P. Genotyping of Cryptosporidium parvum isolates in bovine population in Kolkata and characterization of new bovine genotypes. Research in Veterinary Science, v. 91, n. 2, p. 246-250, 2011. DE WAELE, V.; SPEYBROECK, N.; BERKVENS, D.; MULCAHY, G.; MURPHY, T.M. Control of cryptosporidiosis in neonatal calves: Use of halofuginone lactate in two different calf rearing systems. Preventive Veterinary Medicine, v. 96, n. 3-4, p. 143-151, 2010. DE WAELE, V.; BERZANO, M.; BERKVENS, D.; SPEYBROECK, N.; LOWERY, C.; MULCAHY, G.M.; MURPHY, T.M. Age-stratified Bayesian analysis to estimate sensitivity and specificity of four diagnostic tests for the detection of Cryptosporidium spp. oocysts in neonatal calves. Journal of Clinical Microbiology, v. 49, n. 1, p. 76-84, 2011. DEL COCO, V.F.; CÓRDOBA, M.A.; BASUALDO, J.A. Cryptosporidium infection in calves from a rural área of Buenos Aires, Argentina. Veterinary Parasitlogy, v. 158, n. 1-2, p. 31-35, 2008. DÍAZ, P.; QUÍLEZ, J.; CHALMERS, R.M.; PANADERO, R.; LÓPEZ, C.; SÁNCHEZ-ACEDO, C.; MORRONDO, P.; DÍEZ-BAÑOS, P. Genotype and subtype analysis of Cryptosporidium isolates from calves and lambs in Galicia (NW Spain). Parasitology, v. 137, n. 8, p. 1187-1193, 2010. DIXON, B.; PARRINGTON, L.; COOK, A.; PINTAR, K.; POLLARI, F.; KELTON.; FARBER, J. The potential for zoonotic transmission of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. from beef and dairy cattle in Ontario, Canada. Veterinary Parasitology, v.175, n. 1-2, p. 20-26, 2011. FALL, A.; THOMPSON, R.C.A.; HOBBS, R.; MORGAN-RYAN, U. Morphology is not a reliable tool for delimiting species within Cryptosporidium. The Journal of Parasitology, v. 89, n. 2, p. 399-402, 2003. FARIZAWATI, S.; LIM, Y.A.L.; AHMAD, R.A.; FATIMAH, C.T.N.I.; SITI-NOR, Y. Contribution of cattle farms towards river contamination with Giardia cysts and Cryptosporidium oocysts in Sungai Langat Basin. Tropical Biomedicine, v. 22, n. 2, p. 89-98, 2005. FAYER, R.; MORGAN, U.; UPTON, S.J. Epidemiology of Cryptosporidium: transmission, detection and identification. International Journal for Parasitology, v. 30, n. 12-13, p. 1305-1322, 2000. FAYER, R.; TROUT, J.M.; XIAO, L.; MORGAN, U.M;LAL, A.A; DUBEY, J.P. Cryptosporidium canis n. sp. from domestic dogs. The Journal of Parasitology, v. 87, n. 6, p. 1415-1422, 2001. 115 FAYER, R.; SANTÍN, M.; XIAO, L. Cryptosporidium bovis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos taurus). The Journal of Parasitology, v. 91, n. 3, p. 624-629, 2005. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; GREINER, E. Prevalence of species and genotypes of Cryptosporidium found in 1-2-yaer-old dairy cattle in eastern United States. Veterinary Parasitology, v.135, n. 2, p. 105-112, 2006. FAYER, R. General biology. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 1-42. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Prevalence of Cryptosporidium species and genotypes in mature dairy cattle on farms in eastern United States compared with younger cattle from the same locations. Veterinary Parasitology, v.145, n. 3-4, p. 260-266, 2007. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium ryanae n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos Taurus). Veterinary Parasitology, v.156, n. 3-4, p. 191-198, 2008. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium in cattle: From observing to understanding. In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 12-24. FAYER, R. Taxonomy and species delimitation in Cryptosporidium. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 90-97, 2010. FAYER, R.; SANTÍN, M.; DARGATZ, D. Species of Cryptospotidium detected in weaned cattle on cow-calf operations in the United States. Veterinary Parasitology, v.170, n. 3-4, p. 187-192, 2010a. FAYER, R.; SANTÍN, M.; MACARISIN, D. Cryptosporidium ubiquitum n. sp. in animals and humans. Veterinary Parasitology, v.172, n. 1-2, p. 23-32, 2010b. FEITOSA, F.L.F.; SHIMAMURA, G.M.; ROBERTO, T.; MEIRELES, M.V.; NUNES, C.M.; CIARLINI, P.C.; BORGES, A.S. Prevalência de criptosporidiose em bezerros na região de Araçatuba, estado de São Paulo, Brasil. Ciência Rural, v.34, n.1, p. 189-193, 2004 FEITOSA, F.L.F.; SHIMAMURA, G.M.; ROBERTO, T.; MENDES, L.C.N.; PEIRÓ, J.R.; FÉRES, F.C.; BOVINO, F.; PERRI, S.H.V.; MEIRELES, M.V. Importância de Cryptosporidium spp. como causa de diarréia em bezerros. Pesquisa Veterinária Brasileira, v.28, n. 10, p. 452-456, 2008. FELTUS, D.C.; GIDDINGS, C.W.; SCHNECK, B.L.; MONSON, T.; WARSHAUER, D.; MCEVOY, J.M. Evidence supporting zoonotic transmission of Cryptosporidium spp. in Wisconsin. Journal of Clinical Microbiology, v. 44, n. 12, p. 4303-4308, 2006. FENG, Y.; ORTEGA, Y.; HE, G.; DAS, P.; XU, M.; ZHANG, X.; FAYER, R.; GATEI, W.; CAMA, V.; XIAO, L. Wide geographic distribution of Cryptosporidium bovis and the deer-like genotype in bovines. Veterinary Parasitology, v.144, n. 1-2, p. 1-9, 2007. 116 FIUZA, V.R.; ALMEIDA, A.J.; FRAZÃO-TEIXEIRA, E.; SANTIN, M.; FAYER, R.; OLIVEIRA, F.C. Occurrence of Cryptosporidium andersoni in brazilian cattle. The Journal of Parasitology, v. 97, n. 5, p. 952-953, 2011. GARCIA, L.S.; BRUCKNER, D.A.; BREWER, T.C.; SHIMIZU, R.Y. Techniques for the recovery and identification of Cryptosporidium oocysts from stool specimens. Journal of Clinical Microbiology, v. 18, n. 1, p. 185-190, 1983. GEURDEN, T.; BERKVENS, D.; MARTENS, C.; CASAERT, S.; VERCRUYSSE, J.; CLAEREBOUT, E. Molecular epidemiology with subtype analysis of Cryptosporidium in calves in Belgium. Parasitology, v.134, Pt. 14, p. 1981-1987, 2007. GEURDEN, T.; THOMAS, P.; CASAERT, S.; VERCRUYSSE, J.; CLAEREBOUT, E. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia in lambs and goat kids in Belgium. Veterinary Parasitology, v.155, n. 1-2, p. 142-145, 2008. GOUJON, M.; MCWILLIAM, H.; LI, W.; VALENTIN, F.; SQUIZZATO, S.; PAERN, J.; LOPEZ, R. A new bioinformatics analysis tools framework at EMBL-EBI. Nucleic acids research, v. 38, suplemento W, p. w695-699, 2010. GRINBERG, A.; LEARMONTH, J.; KWAN, E.; POMROY, W.; VILLALOBOS, N.L.; GIBSON, I.; WIDMER, G. Genetic diversity and zoonotic potential of Cryptosporidium parvum causing foal diarrhea. Journal of Clinical Microbiology, v. 46, n. 7, p. 2396-2398, 2008. GULLIKSEN, S.M.; JOR, E.; LIE, K.I.; HAMNES, I.S.; LØKEN, T.; ÅKERSTEDT, J; ØSTERÅS, O. Enteropathogens and risk factors for diarrhea in Norwegian dairy calves. Journal of Dairy Science, v. 92, n. 10, p. 5057-5066, 2009. HALFELD-VIEIRA, B.A.; SOUZA, R.M.; FIGUEIRA, A.R.; BOARI, A.J. Identificação de Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli e X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans através da técnica de PCR. Fitopatologia Brasileira, v. 26, n. 4, p. 737-740, 2001. HAJDUŠEK, O.; DITRICH, O.; ŠLAPETA, J. Molecular identification of Cryptosporidium spp. in animal and human hosts from the Czech Republic. Veterinary Parasitology, v.122, n. 3,p. 183-192, 2004. HARP, J.A.; GOFF, J.P. Strategies for the control of Cryptosporidium parvum infection in calves. Journal of Dairy Science, v. 81, n. 1, p. 289-294, 1998. HILL, A.; NALLY, P.; CHALMERS, R.M.; PRITCHARD, G.C.; GILES, M. Quantitative risk assessment for zoonotic transmission of Cryptosporidium parvum infection attributable to recreational use on farmland. Zoonose and Public Health, v. 58, n. 5, p. 323-333, 2011. HUANG, Q.; FU, W. Comparative analysis of the DNA staining efficiencies of different fluorescent dyes in preparative agarose gel electrophoresis. Clinical Chemistry and LaboratoryMedicine, v. 43, n. 8, p. 841-842, 2005. HUANG, Q.; BAUM, L.; FU, W. Simple and practical staining of DNA with GelRed in agarose gel electrophoresis. Clinical Laboratory, v. 56, n. 3-4, p. 149-152, 2010. 117 HUBER, F.; BOMFIM, T.C.; GOMES, R.S. Comparação da eficiência da coloração pelo método da safranina a quente e da técnica de centrífugo-flutuação na detecção de oocistos de Cryptosporidium em amostras fecais de animais domésticos. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 13, n. 2, p. 81-84, 2004. HUBER, F. Caracterização genotípica e estudo filogenético de Cryptosporidium spp. obtidos de diferentes hospedeiros. 2007. 60f. Tese (Doutorado em Ciências Veterinárias) – Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica. 2007. HUBER , F.; SILVA, S.; BOMFIM, T.C.B.; TEIXEIRA, K.R.S.; BELLO, A.R. Genotypic characterization and phylogenetic analysis of Cryptosporidium sp. from domestic animals in Brazil. Veterinary Parasitology, v. 150, n. 1-2, p. 65-74, 2007. HUNTER, P.R.; THOMPSON, R.C.A.; The zoonotic transmission of Giardia and Cryptosporidium. International Journal for Parasitology, v. 35, n. 11-12, p. 1181-1190, 2005. Instituto Brasileiro de Geografia e estatística. Anuário estatístico. Brasília: IBGE, 2006. Disponível em: < http://www.ibge.gov.br>. Acesso em: 13 de julho de 2010. Instituto Brasileiro de Geografia e estatística. Anuário estatístico. Brasília: IBGE, 2009. Disponível em: < http://www.ibge.gov.br> Acesso em: 13 de julho de 2010. JEX, A.R.; GASSER, R.B.; Analysis of the genetic diversity within Cryptosporidium hominis and Cryptosporidium parvum from imported and autochtonous cases of human cryptosporidiosis by mutation scanning. Electrophoresis, v. 29, n. 20, p. 4119-4129, 2008. KÁLMÁN, I.; DĂRĂBUŞ, G. Distribution of Cryptosporidium species, Genotypes and C. parvum subtypes in cattle in European countries. Scientica Parasitologica, v.12, n. 1, p. 1-9, 2011. KAR, S.; GAWLOWSKA, S.; DAUGSCHIES, A.; BANGOURA, B. Quantitative comparison of different purification and detection methods for Cryptosporidium parvum oocysts. Veterinary Parasitology, v.177, n. 3-4, p. 366-370, 2011. KESHAVARZ, A.; HAGHIGHI, A.; ATHARI, A.; KAZEMI, B.; ABADI, A.; MOJARAD, N. Prevalence and molecular characterization of bovine Cryptosporidium in Qazvin province, Iran. Veterinary Parasitology, v.160, n. 3-4, p. 316-318, 2009. KHAN, S.M.; DEBNATH, C.; PRAMANIK, A.K.; XIAO, L.; NOZAKI, T.; GANGULY, S. Molecular characterization and assessment of zoonotic transmission of Cryptosporidium from dairy cattle in West Bengal, India. Veterinary Parasitology, v.171, n. 1-2, p. 41-47, 2010. KVÁČ, M.; KOUBA, M.; VÍTOVEC, J.; Age-related and housing-dependence of Cryptosporidium infection of calves from dairy and beef herds in South Bohemia, Czech Republic. Veterinary Parasitology, v.137, n. 3-4, p. 202-209, 2006. KVÁČ, M.; ONDRÁČKOVÁ, Z.; KVĚTOŇOVÁ, D.; SAK, B.; VÍTOVEC, J. Infectivity and pathogenicity of Cryptosporidium andersoni to a novel host, southern 118 multimmate mouse (Mastomys coucha). Veterinary Parasitology, v.143, n. 3-4, p. 229-233, 2007. KVÁČ, M.; HROMADOVÁ, N.; KVĚTOŇOVÁ, D.; ROST, M.; SAK, B. Molecular characterization of cryptosporidium spp. in pre-weaned dairy calves in Czech Republic: Absence of C. ryanae and management-associated distribution of C. andersoni, C. bovis and C. parvum subtypes. Veterinary Parasitology, v.177, n. 3-4, p. 378-382, 2011. LANGKJᴁR, R.B.; VIGRE, H.; ENEMARK, H.L.; MADDOX-HYTTEL, C. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium and Giardia from pigs and cattle in Denmark. Parasitology, v. 137, Pt. 3, p. 339-350, 2007. LARKIN, M.A.; BLACKSHIELDS, G.; BROWN, N.P.; CHENNA, R.; MCGETTIGAN, P.A.; MCWILLIAM, H.; VALENTIN, F.; WALLACE, I.M.; WILM, A.; LOPEZ, R.; THOMPSON, J.D.; GIBSON, T.J.; HIGGINS, D.G. ClustalW and ClustalX version 2. Bioinformatics, v.23, n. 21, p. 2947-2948, 2007. LEANDER, B.S.; CLOPTON, R.E.; KEELING, P.J. Phylogeny of gregarines (Apicomplexa) as inferred from small-subunit rDNA and β-tubulin. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 53, Pt. 1, p. 345-354, 2003. LENG, X.; MOSIER, D.A.; OBERST, R.D. Simplified method for recovery and PCR detection of Cryptosporidium DNA from bovine feces. Applied and Environmental Microbiology, v. 62, n. 2, p. 643-647, 1996. LEONI , F.; AMAR, C.; NICHOLS, G.; PEDRAZA-DÍAZ, S.; MCLAUCHLIN, J. Genetic analysis of Cryptosporidium from 2414 humans with diarrhea in England between 1985 and 2000. Journal of Medical Microbiology, v. 55, Pt. 6, p. 703-707, 2006. LINDSAY, D.S.; UPTON, S.J.; OWENS, D.S.; MORGAN, U.M.; MEAD, J.R.; BLAGBURN, B.L. Cryptosporidium andersoni n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporiidae) from cattle, Bos taurus. The Journal of Eukaryotic Microbiology, v.47, n. 1, p. 91-95, 2000. LIU, A.; WANG, R.; LI, Y.; ZHANG, L.; SHU, J.; ZHANG, W.; FENG, Y.; XIAO, L.; LING, H. Prevalence and distribution of Cryptosporidium spp. in dairy cattle in Heilongjiang Province, China. Parasitology Research, v. 105, n. 3, p. 797-802, 2009. LUCENA, R.B.; PIEREZAN, F.; KOMMERS, G.D.; IRIGOYEN, L.F.;FIGHERA, R.A.; BARROS, C.S.L. Doenças de bovinos no Sul do Brasil: 6.706 casos. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 30, n. 5, p. 428-434, 2010. MAGI, B.; CANOCCHI, V.; TORDINI, G.; CELLESI, C. BARBERI, A. Cryptosporidium infection: diagnostic techniques. Parasitology Research, v.98, n. 2, p. 150-152, 2006. MAIKAI, B.V.; UMOH, J.U.; KWAGA, J.K.; LAWAL, I.A.; MAIKAI, V.A.; CAMA, V.; XIAO, L. Molecular characterization of Cryptosporidium spp. in native breeds of cattle in Kaduna State, Nigeria. Veterinary Parasitology, v. 178, n. 3-4, p. 241-245, 2011. 119 MEIRELES, M.V. Cryptosporidium infection in Brazil: implications for veterinary medicine and public health. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 19, n. 4, p. 197-204, 2010. MEIRELES, M.V.; OLIVEIRA, F.P.; TEIXEIRA, W.F.P.; COELHO, W.M.D.; MENDES, L.C.N. Molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy calves from the state of São Paulo, Brazil. Parasitology Research, v. 109, n. 3, p. 949-951, 2011. MENDONÇA, C.; ALMEIDA, A.; CASTRO, A.; DELGADO, M.L.; SOARES, S.; COSTA, J.M.C.; CANADA, N. Molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia isolates from cattle from Portugal. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p.47-50, 2007. MORGAN, U.M.; THOMPSON, R.C.A. PCR detection of Cryptosporidium: The way foward? Parasitology Today, v. 14, n. 6, p.241-245, 1998. MORGAN, U.M.; XIAO, L.; MONIS, P.; SULAIMAN, I.; PAVLASEK, I.; BLAGBURN, B.; OLSON, M.; UOTON, S.J.; KHRAMTSOV, N.; LAL, A.; ELLIOT, A.; THOMPSON, R.C.A. Molecular and phylogenetic analysis of Cryptosporidium muris from various hosts. Parasitology, v. 120, Pt. 5, p. 457-464, 2000. MORGAN-RYAN, U.M.; FALL, A.; WARD, L.A.; HIJJAWI, N.; SULAIMAN, I.; FAYER, R.; THOMPSON, R.C.A.; OLSON, M.; LAL, A.; XIAO, L. Cryptosporidium hominis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) from Homo sapiens. The Journal of Eukaryotic Microbiology, v. 49, n.6, p. 433-440, 2002. MORSE, T.D.; NICHOLS, R.A.B.; GRIMASON, A.M.; CAMPBELL, B.M.; TEMBO, K.C.; SMITH, H.V. Incidence of cryptosporidiosis species in paediatric patients in Malawi. Epidemiology and Infection, v. 135, n. 8, p. 1307-1315, 2007. MUHID, A.; ROBERTSON, I.; NH, J.; RYAN, U. Prevalence of and management factors contributing to Cryptosporidium sp. infection in pre-weaned and post-weaned calves in Johor Malaysia. Experimental Parasitology, v. 127, n. 2, p. 534-538, 2011. NAZEMALHOSSEINI-MOJARAD, E.; HAGHIGHI, A.; TAGHIPOUR, N.; KESHAVARZ, A.; MOHEBI, S.R.; ZALI, M.R.; XIAO, L. Subtype analysis of Cryptosporidium parvum and Cryptosporidium hominis isolates from humans and cattle in Iran. Veterinary Parasitology, v. 179, n. 1-3 ,p. 250-252, 2011. NG, J.; EASTWOOD, K.; DURRHEIM, D.; MASSEY, P.; WALKER, B.; ARMSON, A.; RYAN, U. Evidence supporting zoonotic transmission of Cryptosporidium in rural New South Wales. Experimental Parasitology, v. 119, n. 1, p. 192-195, 2008. NICHOLS, G. Epidemiology. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 79-118. NYDAM, D.V.; MOHAMMED, H.O. Quantitative risk assessment of Cryptosporidium species infection in dairy calves. Journal of Dairy Science, v. 88, n. 11, p. 3932-3943, 2005. ONDRÁČKOVÁ, Z.; KVÁC, M.; SAK, B; KVĚTOŇOVÁ, D.; ROST, M. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy cattle in South 120 Bohemia, the Czech Republic. Veterinary Parasitology, v. 165, n. 1-2 ,p. 141-144, 2009. PANCIERA, R.J.; THOMASSEN, R.W.; GARNER, F.M. Cryptosporidial infection in a calf. Veterinary Pathology, v.8, p.479-484, 1971. PENG, M.M.; MATOS, O.; GATEI, W.; DAS, P.; STANTIC-PAVLINIC, M.; BERN, C.; SULAIMAN, I.M.; GLABERMAN, S.; LAI, A.A.; XIAO, L. A comparison of Cryptosporidium subgenotypes from several geographic regions. The Journal of Eukaryotic Microbiology, Suplemento, p. 28S-31S, 2001. PENG, M.M.; WILSON, M.L.; HOLLAND, R.E.; MESHNICK, S.R.; LAL, A.A.; XIAO, L. Genetic diversity of Cryptosporidium spp. in cattle in Michigan: implications for understanding the transmission dynamics. Parasitology Research, v. 90, n. 3, p. 175-180, 2003. QUÍLEZ, J.; TORRES, E.; CHALMERS, R.M.; HADFIELD, S.J.; DEL CACHO, E.; SÁNCHEZ-ACEDO, C. Cryptosporidium genotypes and subtypes in lambs and goat kids in Spain. Applied and Environmental Microbiology, v. 74, n. 19, p. 6026-6031, 2008. ROMANO, E.; BRASILEIRO, A.C.M.; Extração de DNA de plantas: Soluções para problemas comumente encontrados. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento, ano. 2, n. 9, p. 40-43, 1999. Disponível em: <http://www.biotecnologia.com.br/revista/bio09/extracao.pdf>. Acesso em: 20 de outubro de 2010. RYAN, U.M.; BATH, C.; ROBERTSON, I.; READ, C.; ELLIOT, AILEEN, E.; MCINNES, L.; TRAUB, R.; BESIER, B. Sheep may not be an important zoonotic reservoir for Cryptosporidium and Giardia parasites. Applied and Environmental Microbiology, v. 71, n. 9, p. 4992-4997, 2005. SAFETY REPORT OF GELRED AND GELGREEN. In: Nucleic Acid Detection Technologies. Biotium (Eds), 2008. Disponível em: <http://www.biotium.com>. Acesso em: 17 de dezembro de 2010. SAMBROOK. J.; RUSSEL, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 3.ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory, 2001. p. SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; XIAO, L.; ZHOU, L.; GREINER, E.; FAYER, R. Prevalence and age-related variation of Cryptosporidium species and genotypes in dairy calves. Veterinary Parasitology, v. 122, n. 2, p. 103-117, 2004. SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Livestock. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007.p. 451-484. SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; FAYER, R. A longitudinal study of Cryptosporidiosis in dairy cattle from birth to 2 years of age. Veterinary Parasitology, v. 155, n. 1-2 ,p. 15-23, 2008. SEVÁ, A.P.; FUNADA, M.R.; SOUZA, S.O.; NAVA, A.; RICHTZENHAIN, L.J.; SOARES, R.M. Occurrence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. isolated from domestic animals in a rural area surrounding Atlantic dry forest fragments 121 in Teodoro Sampaio municipality, state of São Paulo, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 19, n. 4, p. 249-253. SILVA, D.G.; SILVA, D.R.; SILVA, P.R.L.; CÍCERO, E.A.S.; FERRAZ, A.L.J.; LEMOS, M.V.F.; FAGLIARI, J.J. Avaliação da reação em cadeia da polimerase e do isolamento bacteriológico convencional na detecção de Salmonella Dublin em amostras de fezes de bezerros infectados experimentalmente. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 62, n. 3, p. 752-756, 2010. SILVA-JUNIOR, F.A; CARVALHO, A.H.O.; ROCHA, C.M.B.M.; GUIMARÃES, A.M. Fatores de risco associados à infecção por Cryptosporidium spp. e Giardia duodenalis em bovinos leiteiros na fase de cria e recria na mesorregião de Campos das Vertentes de Minas Gerais. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 31, n. 8, p. 690-696, 2011. SILVERLÅS, C.; NÄSLUND, K.; BJÖRKMAN, C.; MATTSSON, J.G. Molecular characterization of Cryptosporidium isolates from Swedish dairy cattle in relation to age, diarrhea and region. Veterinary Parasitology, v. 169, n. 3-4, p. 289-295, 2010a. SILVERLÅS, C.; VERDIER, K.; EMANUELSON, U.; MATTSSON, J.G.; BJÖRKMAN, C. Cryptosporidium infection in herds with and without calf diarrheal problems. Parasitology Research, v. 107, n. 6, p. 1435-1444, 2010. ŠLAPETA, J. Centenary of the genus Gryptosporidium: From morphological to molecular species identification. In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 31-50. SMITH, H. Diagnostics. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 173-208. SMITH, R.P.; CHALMERS, R.M.; MUELLER-DOBLIES, D.; CLIFTON-HADLEY, F.A.; ELWIN, K.; WATKINS, J.; PAIBA, G.A.; HADFIELD, S.J.; GILES, M. Investigation of farms linked to human patients with cryptosporidiosis in England and Wales. Preventive Veterinary Medicine, v. 94, n. 1-2, p. 9-17, 2010. SOBA, B.; LOGAR, J. Genetic classification of Cryptosporidium isolates from humans and calves in Slovenia. Parasitology, v. 135, n. , p. 1263-1270, 2008. STARKEY, S.R.; ZEIGLER, P.E.; WADE, S.E.; SCHAAF, S.L.; MOHAMMED, H.O. Factors associated with shedding of Cryptosporidium parvum versus Cryptosporidium bovis among dairy cattle in New York. Journal of the American Veterinary Medical Association, v. 229, n. 10, p. 1623-1626, 2006. STOCKDALE, H.D.; SPENCER, J.A; BLAGBURN, B.L. Prophylaxis and chemotherapy. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 255-288. SULAIMAN, I.M.; HIRA, P.R.; ZHOU, L.; AL-ALI, F.M.; AL-SHELAHI, F.A.; SHWEIKI, H.M.; IQBAL, J.; KHALID, N.; XIAO, L. Unique endemicity of cryptosporidiosis in children in Kuwait. Journal of Clinical Microbiology, v. 43, n. 6, p. 2805-2809, 2005. 122 SZONYI, B.; KANG’ETHE, E.K.; MBAE, C.K.; KAKUNDI, E.M.; KAMWATI, S.K.; MOHAMMED, H.O. First report of Cryptosporidium deer-like genotype in Kenyan cattle. Veterinary Parasitology, v. 153, n. 1-2, p. 172-175, 2008. TAMURA, K.; PETERSON, D.; PETERSON, N.; STECHER, G.; NEI, M.; KUMAR, S. Mega 5: Molecular evolutionary genetics analyses using Maximum Likelyhood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony methods. Molecular Biology and Evolution, v. 28, n. 10, p. 2731-2739, 2011. THOMAZ, A.; MEIRELES, M.V.; SOARES, R.M.; PENA, H.F.J.; GENNARI, S.M. Molecular identification of Cryptosporidium spp. from fecal samples of felines, canines and bovines in the state of São Paulo, Brazil. Veterinary Parasitology, v. 150, n. 4, p. 291-296, 2007. THOMPSON, H.P.; DOOLEY, J.S.G.; KENNY, J.; MCCOOY, M.; LOWERY, C.J.; MOORE, J.E.; XIAO, L. Genotypes and subtypes of Cryptosporidium spp. in neonatal calves in Northern Ireland. Parasitology Research, v. 100, n. 3, p. 619-624, 2007. TYZZER, E.E. A sporozoan found in the peptic glands of the common mouse. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, v. 5, p.12-13, 1907. TYZZER, E.E. Cryptosporidium parvum (sp. nov.), a coccidium found in the small intestine of common mouse. Archives fur Protistenkunde, v. 26, p. 394-412, 1912. UPTON, S.J.; CURRENT, W.L. The species of Cryptosporidium (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) infecting mammals. The Journal of Parasitology, v. 71, n. 5, p. 625-629, 1985. WIELINGA, P.R.; VRIES, A.; VAN DER GOOT, T.H.; MANK, T; MARS, M.H.; KORTBEEK, L.M.; VAN DER GIESSEN, J.W.B. Molecular epidemiology of Cryptosporidium in humans and cattle in the Netherlands. International Journal of Parasitology, v. 38, n. 7, p. 809-817, 2008. WANG, R.; ZHANG, L.; NING, C.; FENG, Y.; JIAN, F.; XIAO, L.; LU, B.; AI, W.; DONG, H. Multilocus phylogenetic analysis of Cryptosporidium andersoni (Apicomplexa) isolated from a bactrian camel (Camelus bactrianus) in China. Parasitology Reasearch, v. 102, n. 5, p. 915-920, 2008. WANG, R.; WANG, H.; SUN, Y.; ZHANG, L.; JIAN, F.;QI, M.; NING, C.; XIAO, L. Characteristics of Cryptosporidium transmission in preweaned dairy cattle in Henan, China. Journal of Clinical Microbiology, v. 49, n. 3, p. 1077-1082, 2011a. WANG, R.; MA, G.; ZHAO, J.; LU, Q.; WANG, H.; ZHANG, L.; JIAN, F.; NING, C.; XIAO, L. Cryptosporidium andersoni is the predominant species in post-weaned and adult dairy cattle in China. Parasitology International, v. 60, n. 1, p. 1-4, 2011b. XIAO, L.; MORGAN, U.M.; LIMOR, J.; ESCALANTE, A.; ARROWOOD, M.; SHULAW, W.; THOMPSON, R.C.A.; FAYER, R.; LAL, A.A. Genetic diversity within Cryptosporidium parvum and related Cryptosporidium species. American Society for Microbiology, v. 65, n. 8, p. 3386-3391, 1999a. XIAO, L.; ESCALANTE, L.; YANG, C.; SULAIMAN, I.; ESCALANTE, A.A.; MONTALI, R.J.; FAYER, R.; LAL, A. Phylogenetic analysis of Cryptosporidium 123 parasites based on the small-subunit rRNA gene locus. Applied and Environmental Microbiology, v. 65, n. 4, p. 1578-1583, 1999b. XIAO, L.; SINGH, A.; LIMOR, J.; GRACZYK, T.K.; GRADUS, S.; LAL, A. Molecular characterization of Cryptosporidium oocysts in samples of raw surface water and wastewater. Applied and Environmental Microbiology, v. 67, n. 3, p. 1097-1101, 2001. XIAO, L.; RYAN, U.M. Molecular epidemiology. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 119-172. XIAO, L.; FAYER, R. Molecular characterization of species and genotypes of Cryptosporidium and Giardia and assessment of zoonotic transmission. International Journal for Parasitology, v. 38, n. 11, p 1239-1255, 2008. XIAO, L.; FENG, Y. Zoonotic cryptosporidiosis. FEMS Immunology and Medical Microbiology, v. 52, n. 3, p. 309-323, 2008. XIAO, L. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: An update. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 80-89, 2010.https://tede.ufrrj.br/retrieve/14779/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/17430/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/23786/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/30128/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/36510/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/42940/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/49256/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/55802/2012%20-%20Melissa%20Carvalho%20Machado%20do%20Couto%20Chambarelli.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/3508Submitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2020-05-09T00:20:26Z No. of bitstreams: 1 2012 - Melissa Carvalho Machado do Couto Chambarelli.pdf: 3091557 bytes, checksum: 7efb867e87d385ac736b15f4c5061363 (MD5)Made available in DSpace on 2020-05-09T00:20:26Z (GMT). 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description A criptosporidiose bovina é de grande relevância para a pecuária brasileira, principalmente em animais jovens. Bovinos infectados com Cryptosporidium podem apresentar um baixo desempenho produtivo além de eliminar grande quantidade de formas infectantes no ambiente, especialmente aqueles que apresentam um quadro clínico de diarréia. Os objetivos do trabalho foram: comparar duas técnicas de extração de DNA utilizando um kit comercial e um protocolo adaptado por pesquisadores; analisar diversas temperaturas de anelamento para as reações de PCR-Nested para os genes alvo 18S e GP60, além de dois tipos de coloração de fragmentos de DNA em gel de agarose (brometo de etídio e gelred); determinar a ocorrência de espécies e subtipos de Cryptosporidium em bezerros com até um ano de idade, através da técnica de PCR para os genes alvos 18S e GP60 e analisar a influencia de modificações no manejo no percentual de infecção em bezerros. Os resultados da padronização demostraram uma maior grau de pureza do kit comercial, tendo sido ainda estabelecido novas temperaturas para uma otimização das técnicas, além da maior sensibilidade e baixa toxicidade do corante gelred. Após o sequenciamento foi observada a presença de três espécies de Cryptosporidium infectando bezerros em diferentes faixas etárias. Na fase pré-desmame (< 2 meses) 10% dos animais encontravam-se infectados por C. parvum, enquanto que os bezerros na fase pósdesmame (≥ 2 meses) apresentaram-se infectados por C. andersoni (15%) e C. ryanae (2%). Nesse estudo também foi observado que a implantação de algumas mudanças no manejo da propriedade pode ser de grande ajuda na tentativa de diminuir a disseminação da doença entre os animais e reduzir a contaminação ambiental.
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M.; HOLZHAUER, M.; JORRITSMA, R.; SWART, W.A.J.M.; LAM, T.J.G.M. Prevalence, prediction and risk factors on enteropathogens in normal and non-normal faeces of young Dutch dairy calves. Preventive Veterinary Medicine, v. 93, n.2-3 , p. 162-169, 2010. BECHER, K.A.; ROBERTSON,I.D.; FRASER, D.M.; PALMER, D.G; THOMPSON, R.C.A. Molecular epidemiology of Giardia and Cryptosporidium infections in dairy calves originating from three sources in Western Australia. Veterinary Parasitology, v. 123, n.1-2 , p.1-9, 2004. BLEARS, M.J.; POKOMY, N.J.; CARRENO, R.A.; CHEN, S.; DE GRANDIS, S.A.; LEE, H.; TREVORS, J.T. DNA fingerprinting of Cryptosporidium parvum isolates using amplified fragment length polymorphism (AFLP). Journal of Parasitology, v. 86, n. 4, p. 838-841, 2000. BOYER, D.G.; KUCZYNSKA, E. Prevalence and concentration of Cryptosporidium oocysts in beef cattlenpaddock soils and forage. Foodborn Pathogens and Disease, v. 7, n. 8, p. 893-900, 2010. BROGLIA, A.; RECKINGER, S.; CACCIÓ, S.M.; NÖCKLER, K. Distribution of Cryptosporidium parvum subtypes in calves in Germany. Veterinary Parasitology, v. 154, n. 1-2, p. 8-13, 2008. BROOK, E.; HART, C.A.; FRENCH, N.; CHRISTLEY, R. Prevalence and risk factors for Cryptosporidium spp. infection in young calves. Veterinary Parasitology, v. 152, n. 1-2, p. 46-52, 2008. CARDOSA, J.M.S.; SILVEIRA, F.L.; ARAÚJO, A.J.U.S.; CARVALHO, J.C.; KANAMURA, H.Y. Ocorrência de Cryptosporidium spp. em um rebanho bovino leiteiro no município de Caçapava, Estado de São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, Suplemento n. 1, p. 239-242, 2008. 113 CARRENO, R.A.; MARTIN, D.S.; BARTA, J.R. Cryptosporidium is more closely related to the gregarines tha to coccidian as shown by phylogenetic analysis of apicomplexan parasites inferred using small-subunit ribosomal RNA gene sequences. Parasitology Research, v. 85, n. 11, p. 899-904, 1999. CASTRO-HERMIDA, J.A.; ALMEIDA, A.; GONZÁLEZ-WARLETA, M.; COSTA, J.M.C.; RUMBO-LORENZO, C.; MEZO.; M. Occurrence of Cryptosporidium parvum and Giardia duodenalis in healthy adult domestic ruminants. Parasitology Research, v. 101, n. 5, p. 1443-1448, 2007. CASTRO-HERMIDA, J.A.; GARCÍA-PRESEDO, I; ALMEIDA, A.; GONZÁLEZ-WARLETA, M.; COSTA, J.M.C.; MEZO, M. Detection of Cryptosporidium spp. and Giardia duodenalis in surface water: A health risk for humans and animals. Water Research, v. 43, n. 17, p. 4133-4142, 2009. CEVALLOS, A.M.; ZHANG, X.; WALDOR, M.K.; JAISON, S.; ZHOU, X.; TZIPORI, S.; NEUTRA, M.R.; WARD, H.D. Molecular cloning and expression of a gene encoding Cryptosporidium parvum glycoproteins gp40 and gp15. Infection and Immunity, v. 68, n. 7, p. 4108-4116, 2000. CHAKO, C.Z.; TYLER, J.W.; SCHULTZ, L.G.; CHIGUMA, L.; BEERNTSEN, B.T. Cryptosporidiosis in people: It’s not just about the cows. Journal of Veterinary Internal Medicine, v. 24, n. 1, p. 37-43, 2010. CHALMERS, R.M. Advances in diagnosis: Is microscopy still the benchmark? In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 147-157. CHALMERS, R.M.; GILES, M. Zoonotic cryptosporidiosis in the UK – challenges for control. Journal of Applied Microbiology, v. 109, n. 5, p. 1487-1497, 2010. CHALMERS, R.M.; SMITH, R.; ELWIN, K; CLIFTON-HADLEY, F.A.; GILES, M. Epidemiology of anthroponotic and zoonotic human cryptosporidiosis in England and Wales, 2004-2006. Epidemiology and Infection, v. 139, n. 5, p. 700-712, 2011. CHIARI, L.; VALLE, J.V.R.; RESENDE, R.M.S. Comparação entre três métodos de extração de DNA genômico para análises moleculares em Stylosanthes guianensis. Embrapa Gado de Corte-Circular Técnica, v. 36, p. 1-6, 2009. Disponível em: <http://www.cnpgc.embrapa.br/publicacoes/ct/ct36/CT36.pdf>. Acesso em: 20 de outubro de 2010. COKLIN, T.; UEHLINGER, F.D.; FARBER, J.M.; BARKEMA, H.W.; O’HANDLEY, R.M.; DIXON, B.R. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy calves from 11 farms in Prince Edward Island, Canada. Veterinary Parasitology, v.160, n. 3-4, p. 323-326, 2009. COKLIN, T.; FARBER, J.M.; PARRINGTON, L.J.; COKLIN, Z.; ROSS, W.H.; DIXON, B.R. Temporal changes in the prevalence and shedding patterns of Giardia duodenalis cysts and Cryptosporidium spp. oocysts in a herd of dairy calves in Ontario. The Canadian Veterinary Journal, v. 51, n. 8, p. 841-846, 2010. 114 COSENDEY, R.; FIUZA, V.R.S.; OLIVEIRA, F.C.R. Importância do manejo na criptosporidiose em criações de ovinos. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, Suplemento n. 1, 209-214, 2008. DAS, G.; CHANGKIJA, B.; SARKAR, S.; DAS, P. Genotyping of Cryptosporidium parvum isolates in bovine population in Kolkata and characterization of new bovine genotypes. Research in Veterinary Science, v. 91, n. 2, p. 246-250, 2011. DE WAELE, V.; SPEYBROECK, N.; BERKVENS, D.; MULCAHY, G.; MURPHY, T.M. Control of cryptosporidiosis in neonatal calves: Use of halofuginone lactate in two different calf rearing systems. Preventive Veterinary Medicine, v. 96, n. 3-4, p. 143-151, 2010. DE WAELE, V.; BERZANO, M.; BERKVENS, D.; SPEYBROECK, N.; LOWERY, C.; MULCAHY, G.M.; MURPHY, T.M. Age-stratified Bayesian analysis to estimate sensitivity and specificity of four diagnostic tests for the detection of Cryptosporidium spp. oocysts in neonatal calves. Journal of Clinical Microbiology, v. 49, n. 1, p. 76-84, 2011. DEL COCO, V.F.; CÓRDOBA, M.A.; BASUALDO, J.A. Cryptosporidium infection in calves from a rural área of Buenos Aires, Argentina. Veterinary Parasitlogy, v. 158, n. 1-2, p. 31-35, 2008. DÍAZ, P.; QUÍLEZ, J.; CHALMERS, R.M.; PANADERO, R.; LÓPEZ, C.; SÁNCHEZ-ACEDO, C.; MORRONDO, P.; DÍEZ-BAÑOS, P. Genotype and subtype analysis of Cryptosporidium isolates from calves and lambs in Galicia (NW Spain). Parasitology, v. 137, n. 8, p. 1187-1193, 2010. DIXON, B.; PARRINGTON, L.; COOK, A.; PINTAR, K.; POLLARI, F.; KELTON.; FARBER, J. The potential for zoonotic transmission of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. from beef and dairy cattle in Ontario, Canada. Veterinary Parasitology, v.175, n. 1-2, p. 20-26, 2011. FALL, A.; THOMPSON, R.C.A.; HOBBS, R.; MORGAN-RYAN, U. Morphology is not a reliable tool for delimiting species within Cryptosporidium. The Journal of Parasitology, v. 89, n. 2, p. 399-402, 2003. FARIZAWATI, S.; LIM, Y.A.L.; AHMAD, R.A.; FATIMAH, C.T.N.I.; SITI-NOR, Y. Contribution of cattle farms towards river contamination with Giardia cysts and Cryptosporidium oocysts in Sungai Langat Basin. Tropical Biomedicine, v. 22, n. 2, p. 89-98, 2005. FAYER, R.; MORGAN, U.; UPTON, S.J. Epidemiology of Cryptosporidium: transmission, detection and identification. International Journal for Parasitology, v. 30, n. 12-13, p. 1305-1322, 2000. FAYER, R.; TROUT, J.M.; XIAO, L.; MORGAN, U.M;LAL, A.A; DUBEY, J.P. Cryptosporidium canis n. sp. from domestic dogs. The Journal of Parasitology, v. 87, n. 6, p. 1415-1422, 2001. 115 FAYER, R.; SANTÍN, M.; XIAO, L. Cryptosporidium bovis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos taurus). The Journal of Parasitology, v. 91, n. 3, p. 624-629, 2005. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; GREINER, E. Prevalence of species and genotypes of Cryptosporidium found in 1-2-yaer-old dairy cattle in eastern United States. Veterinary Parasitology, v.135, n. 2, p. 105-112, 2006. FAYER, R. General biology. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 1-42. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Prevalence of Cryptosporidium species and genotypes in mature dairy cattle on farms in eastern United States compared with younger cattle from the same locations. Veterinary Parasitology, v.145, n. 3-4, p. 260-266, 2007. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium ryanae n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos Taurus). Veterinary Parasitology, v.156, n. 3-4, p. 191-198, 2008. FAYER, R.; SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Cryptosporidium in cattle: From observing to understanding. In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 12-24. FAYER, R. Taxonomy and species delimitation in Cryptosporidium. Experimental Parasitology, v. 124, n. 1, p. 90-97, 2010. FAYER, R.; SANTÍN, M.; DARGATZ, D. Species of Cryptospotidium detected in weaned cattle on cow-calf operations in the United States. Veterinary Parasitology, v.170, n. 3-4, p. 187-192, 2010a. FAYER, R.; SANTÍN, M.; MACARISIN, D. Cryptosporidium ubiquitum n. sp. in animals and humans. Veterinary Parasitology, v.172, n. 1-2, p. 23-32, 2010b. FEITOSA, F.L.F.; SHIMAMURA, G.M.; ROBERTO, T.; MEIRELES, M.V.; NUNES, C.M.; CIARLINI, P.C.; BORGES, A.S. Prevalência de criptosporidiose em bezerros na região de Araçatuba, estado de São Paulo, Brasil. Ciência Rural, v.34, n.1, p. 189-193, 2004 FEITOSA, F.L.F.; SHIMAMURA, G.M.; ROBERTO, T.; MENDES, L.C.N.; PEIRÓ, J.R.; FÉRES, F.C.; BOVINO, F.; PERRI, S.H.V.; MEIRELES, M.V. Importância de Cryptosporidium spp. como causa de diarréia em bezerros. Pesquisa Veterinária Brasileira, v.28, n. 10, p. 452-456, 2008. FELTUS, D.C.; GIDDINGS, C.W.; SCHNECK, B.L.; MONSON, T.; WARSHAUER, D.; MCEVOY, J.M. Evidence supporting zoonotic transmission of Cryptosporidium spp. in Wisconsin. Journal of Clinical Microbiology, v. 44, n. 12, p. 4303-4308, 2006. FENG, Y.; ORTEGA, Y.; HE, G.; DAS, P.; XU, M.; ZHANG, X.; FAYER, R.; GATEI, W.; CAMA, V.; XIAO, L. Wide geographic distribution of Cryptosporidium bovis and the deer-like genotype in bovines. Veterinary Parasitology, v.144, n. 1-2, p. 1-9, 2007. 116 FIUZA, V.R.; ALMEIDA, A.J.; FRAZÃO-TEIXEIRA, E.; SANTIN, M.; FAYER, R.; OLIVEIRA, F.C. Occurrence of Cryptosporidium andersoni in brazilian cattle. The Journal of Parasitology, v. 97, n. 5, p. 952-953, 2011. GARCIA, L.S.; BRUCKNER, D.A.; BREWER, T.C.; SHIMIZU, R.Y. Techniques for the recovery and identification of Cryptosporidium oocysts from stool specimens. Journal of Clinical Microbiology, v. 18, n. 1, p. 185-190, 1983. GEURDEN, T.; BERKVENS, D.; MARTENS, C.; CASAERT, S.; VERCRUYSSE, J.; CLAEREBOUT, E. Molecular epidemiology with subtype analysis of Cryptosporidium in calves in Belgium. Parasitology, v.134, Pt. 14, p. 1981-1987, 2007. GEURDEN, T.; THOMAS, P.; CASAERT, S.; VERCRUYSSE, J.; CLAEREBOUT, E. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia in lambs and goat kids in Belgium. Veterinary Parasitology, v.155, n. 1-2, p. 142-145, 2008. GOUJON, M.; MCWILLIAM, H.; LI, W.; VALENTIN, F.; SQUIZZATO, S.; PAERN, J.; LOPEZ, R. A new bioinformatics analysis tools framework at EMBL-EBI. Nucleic acids research, v. 38, suplemento W, p. w695-699, 2010. GRINBERG, A.; LEARMONTH, J.; KWAN, E.; POMROY, W.; VILLALOBOS, N.L.; GIBSON, I.; WIDMER, G. Genetic diversity and zoonotic potential of Cryptosporidium parvum causing foal diarrhea. Journal of Clinical Microbiology, v. 46, n. 7, p. 2396-2398, 2008. GULLIKSEN, S.M.; JOR, E.; LIE, K.I.; HAMNES, I.S.; LØKEN, T.; ÅKERSTEDT, J; ØSTERÅS, O. Enteropathogens and risk factors for diarrhea in Norwegian dairy calves. Journal of Dairy Science, v. 92, n. 10, p. 5057-5066, 2009. HALFELD-VIEIRA, B.A.; SOUZA, R.M.; FIGUEIRA, A.R.; BOARI, A.J. Identificação de Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli e X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans através da técnica de PCR. Fitopatologia Brasileira, v. 26, n. 4, p. 737-740, 2001. HAJDUŠEK, O.; DITRICH, O.; ŠLAPETA, J. Molecular identification of Cryptosporidium spp. in animal and human hosts from the Czech Republic. Veterinary Parasitology, v.122, n. 3,p. 183-192, 2004. HARP, J.A.; GOFF, J.P. Strategies for the control of Cryptosporidium parvum infection in calves. Journal of Dairy Science, v. 81, n. 1, p. 289-294, 1998. HILL, A.; NALLY, P.; CHALMERS, R.M.; PRITCHARD, G.C.; GILES, M. Quantitative risk assessment for zoonotic transmission of Cryptosporidium parvum infection attributable to recreational use on farmland. Zoonose and Public Health, v. 58, n. 5, p. 323-333, 2011. HUANG, Q.; FU, W. Comparative analysis of the DNA staining efficiencies of different fluorescent dyes in preparative agarose gel electrophoresis. Clinical Chemistry and LaboratoryMedicine, v. 43, n. 8, p. 841-842, 2005. HUANG, Q.; BAUM, L.; FU, W. Simple and practical staining of DNA with GelRed in agarose gel electrophoresis. Clinical Laboratory, v. 56, n. 3-4, p. 149-152, 2010. 117 HUBER, F.; BOMFIM, T.C.; GOMES, R.S. Comparação da eficiência da coloração pelo método da safranina a quente e da técnica de centrífugo-flutuação na detecção de oocistos de Cryptosporidium em amostras fecais de animais domésticos. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 13, n. 2, p. 81-84, 2004. HUBER, F. Caracterização genotípica e estudo filogenético de Cryptosporidium spp. obtidos de diferentes hospedeiros. 2007. 60f. Tese (Doutorado em Ciências Veterinárias) – Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica. 2007. HUBER , F.; SILVA, S.; BOMFIM, T.C.B.; TEIXEIRA, K.R.S.; BELLO, A.R. Genotypic characterization and phylogenetic analysis of Cryptosporidium sp. from domestic animals in Brazil. Veterinary Parasitology, v. 150, n. 1-2, p. 65-74, 2007. HUNTER, P.R.; THOMPSON, R.C.A.; The zoonotic transmission of Giardia and Cryptosporidium. International Journal for Parasitology, v. 35, n. 11-12, p. 1181-1190, 2005. Instituto Brasileiro de Geografia e estatística. Anuário estatístico. Brasília: IBGE, 2006. Disponível em: < http://www.ibge.gov.br>. Acesso em: 13 de julho de 2010. Instituto Brasileiro de Geografia e estatística. Anuário estatístico. Brasília: IBGE, 2009. Disponível em: < http://www.ibge.gov.br> Acesso em: 13 de julho de 2010. JEX, A.R.; GASSER, R.B.; Analysis of the genetic diversity within Cryptosporidium hominis and Cryptosporidium parvum from imported and autochtonous cases of human cryptosporidiosis by mutation scanning. Electrophoresis, v. 29, n. 20, p. 4119-4129, 2008. KÁLMÁN, I.; DĂRĂBUŞ, G. Distribution of Cryptosporidium species, Genotypes and C. parvum subtypes in cattle in European countries. Scientica Parasitologica, v.12, n. 1, p. 1-9, 2011. KAR, S.; GAWLOWSKA, S.; DAUGSCHIES, A.; BANGOURA, B. Quantitative comparison of different purification and detection methods for Cryptosporidium parvum oocysts. Veterinary Parasitology, v.177, n. 3-4, p. 366-370, 2011. KESHAVARZ, A.; HAGHIGHI, A.; ATHARI, A.; KAZEMI, B.; ABADI, A.; MOJARAD, N. Prevalence and molecular characterization of bovine Cryptosporidium in Qazvin province, Iran. Veterinary Parasitology, v.160, n. 3-4, p. 316-318, 2009. KHAN, S.M.; DEBNATH, C.; PRAMANIK, A.K.; XIAO, L.; NOZAKI, T.; GANGULY, S. Molecular characterization and assessment of zoonotic transmission of Cryptosporidium from dairy cattle in West Bengal, India. Veterinary Parasitology, v.171, n. 1-2, p. 41-47, 2010. KVÁČ, M.; KOUBA, M.; VÍTOVEC, J.; Age-related and housing-dependence of Cryptosporidium infection of calves from dairy and beef herds in South Bohemia, Czech Republic. Veterinary Parasitology, v.137, n. 3-4, p. 202-209, 2006. KVÁČ, M.; ONDRÁČKOVÁ, Z.; KVĚTOŇOVÁ, D.; SAK, B.; VÍTOVEC, J. Infectivity and pathogenicity of Cryptosporidium andersoni to a novel host, southern 118 multimmate mouse (Mastomys coucha). Veterinary Parasitology, v.143, n. 3-4, p. 229-233, 2007. KVÁČ, M.; HROMADOVÁ, N.; KVĚTOŇOVÁ, D.; ROST, M.; SAK, B. Molecular characterization of cryptosporidium spp. in pre-weaned dairy calves in Czech Republic: Absence of C. ryanae and management-associated distribution of C. andersoni, C. bovis and C. parvum subtypes. Veterinary Parasitology, v.177, n. 3-4, p. 378-382, 2011. LANGKJᴁR, R.B.; VIGRE, H.; ENEMARK, H.L.; MADDOX-HYTTEL, C. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium and Giardia from pigs and cattle in Denmark. Parasitology, v. 137, Pt. 3, p. 339-350, 2007. LARKIN, M.A.; BLACKSHIELDS, G.; BROWN, N.P.; CHENNA, R.; MCGETTIGAN, P.A.; MCWILLIAM, H.; VALENTIN, F.; WALLACE, I.M.; WILM, A.; LOPEZ, R.; THOMPSON, J.D.; GIBSON, T.J.; HIGGINS, D.G. ClustalW and ClustalX version 2. Bioinformatics, v.23, n. 21, p. 2947-2948, 2007. LEANDER, B.S.; CLOPTON, R.E.; KEELING, P.J. Phylogeny of gregarines (Apicomplexa) as inferred from small-subunit rDNA and β-tubulin. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 53, Pt. 1, p. 345-354, 2003. LENG, X.; MOSIER, D.A.; OBERST, R.D. Simplified method for recovery and PCR detection of Cryptosporidium DNA from bovine feces. Applied and Environmental Microbiology, v. 62, n. 2, p. 643-647, 1996. LEONI , F.; AMAR, C.; NICHOLS, G.; PEDRAZA-DÍAZ, S.; MCLAUCHLIN, J. Genetic analysis of Cryptosporidium from 2414 humans with diarrhea in England between 1985 and 2000. Journal of Medical Microbiology, v. 55, Pt. 6, p. 703-707, 2006. LINDSAY, D.S.; UPTON, S.J.; OWENS, D.S.; MORGAN, U.M.; MEAD, J.R.; BLAGBURN, B.L. Cryptosporidium andersoni n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporiidae) from cattle, Bos taurus. The Journal of Eukaryotic Microbiology, v.47, n. 1, p. 91-95, 2000. LIU, A.; WANG, R.; LI, Y.; ZHANG, L.; SHU, J.; ZHANG, W.; FENG, Y.; XIAO, L.; LING, H. Prevalence and distribution of Cryptosporidium spp. in dairy cattle in Heilongjiang Province, China. Parasitology Research, v. 105, n. 3, p. 797-802, 2009. LUCENA, R.B.; PIEREZAN, F.; KOMMERS, G.D.; IRIGOYEN, L.F.;FIGHERA, R.A.; BARROS, C.S.L. Doenças de bovinos no Sul do Brasil: 6.706 casos. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 30, n. 5, p. 428-434, 2010. MAGI, B.; CANOCCHI, V.; TORDINI, G.; CELLESI, C. BARBERI, A. Cryptosporidium infection: diagnostic techniques. Parasitology Research, v.98, n. 2, p. 150-152, 2006. MAIKAI, B.V.; UMOH, J.U.; KWAGA, J.K.; LAWAL, I.A.; MAIKAI, V.A.; CAMA, V.; XIAO, L. Molecular characterization of Cryptosporidium spp. in native breeds of cattle in Kaduna State, Nigeria. Veterinary Parasitology, v. 178, n. 3-4, p. 241-245, 2011. 119 MEIRELES, M.V. Cryptosporidium infection in Brazil: implications for veterinary medicine and public health. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 19, n. 4, p. 197-204, 2010. MEIRELES, M.V.; OLIVEIRA, F.P.; TEIXEIRA, W.F.P.; COELHO, W.M.D.; MENDES, L.C.N. Molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy calves from the state of São Paulo, Brazil. Parasitology Research, v. 109, n. 3, p. 949-951, 2011. MENDONÇA, C.; ALMEIDA, A.; CASTRO, A.; DELGADO, M.L.; SOARES, S.; COSTA, J.M.C.; CANADA, N. Molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia isolates from cattle from Portugal. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p.47-50, 2007. MORGAN, U.M.; THOMPSON, R.C.A. PCR detection of Cryptosporidium: The way foward? Parasitology Today, v. 14, n. 6, p.241-245, 1998. MORGAN, U.M.; XIAO, L.; MONIS, P.; SULAIMAN, I.; PAVLASEK, I.; BLAGBURN, B.; OLSON, M.; UOTON, S.J.; KHRAMTSOV, N.; LAL, A.; ELLIOT, A.; THOMPSON, R.C.A. Molecular and phylogenetic analysis of Cryptosporidium muris from various hosts. Parasitology, v. 120, Pt. 5, p. 457-464, 2000. MORGAN-RYAN, U.M.; FALL, A.; WARD, L.A.; HIJJAWI, N.; SULAIMAN, I.; FAYER, R.; THOMPSON, R.C.A.; OLSON, M.; LAL, A.; XIAO, L. Cryptosporidium hominis n. sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) from Homo sapiens. The Journal of Eukaryotic Microbiology, v. 49, n.6, p. 433-440, 2002. MORSE, T.D.; NICHOLS, R.A.B.; GRIMASON, A.M.; CAMPBELL, B.M.; TEMBO, K.C.; SMITH, H.V. Incidence of cryptosporidiosis species in paediatric patients in Malawi. Epidemiology and Infection, v. 135, n. 8, p. 1307-1315, 2007. MUHID, A.; ROBERTSON, I.; NH, J.; RYAN, U. Prevalence of and management factors contributing to Cryptosporidium sp. infection in pre-weaned and post-weaned calves in Johor Malaysia. Experimental Parasitology, v. 127, n. 2, p. 534-538, 2011. NAZEMALHOSSEINI-MOJARAD, E.; HAGHIGHI, A.; TAGHIPOUR, N.; KESHAVARZ, A.; MOHEBI, S.R.; ZALI, M.R.; XIAO, L. Subtype analysis of Cryptosporidium parvum and Cryptosporidium hominis isolates from humans and cattle in Iran. Veterinary Parasitology, v. 179, n. 1-3 ,p. 250-252, 2011. NG, J.; EASTWOOD, K.; DURRHEIM, D.; MASSEY, P.; WALKER, B.; ARMSON, A.; RYAN, U. Evidence supporting zoonotic transmission of Cryptosporidium in rural New South Wales. Experimental Parasitology, v. 119, n. 1, p. 192-195, 2008. NICHOLS, G. Epidemiology. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 79-118. NYDAM, D.V.; MOHAMMED, H.O. Quantitative risk assessment of Cryptosporidium species infection in dairy calves. Journal of Dairy Science, v. 88, n. 11, p. 3932-3943, 2005. ONDRÁČKOVÁ, Z.; KVÁC, M.; SAK, B; KVĚTOŇOVÁ, D.; ROST, M. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. in dairy cattle in South 120 Bohemia, the Czech Republic. Veterinary Parasitology, v. 165, n. 1-2 ,p. 141-144, 2009. PANCIERA, R.J.; THOMASSEN, R.W.; GARNER, F.M. Cryptosporidial infection in a calf. Veterinary Pathology, v.8, p.479-484, 1971. PENG, M.M.; MATOS, O.; GATEI, W.; DAS, P.; STANTIC-PAVLINIC, M.; BERN, C.; SULAIMAN, I.M.; GLABERMAN, S.; LAI, A.A.; XIAO, L. A comparison of Cryptosporidium subgenotypes from several geographic regions. The Journal of Eukaryotic Microbiology, Suplemento, p. 28S-31S, 2001. PENG, M.M.; WILSON, M.L.; HOLLAND, R.E.; MESHNICK, S.R.; LAL, A.A.; XIAO, L. Genetic diversity of Cryptosporidium spp. in cattle in Michigan: implications for understanding the transmission dynamics. Parasitology Research, v. 90, n. 3, p. 175-180, 2003. QUÍLEZ, J.; TORRES, E.; CHALMERS, R.M.; HADFIELD, S.J.; DEL CACHO, E.; SÁNCHEZ-ACEDO, C. Cryptosporidium genotypes and subtypes in lambs and goat kids in Spain. Applied and Environmental Microbiology, v. 74, n. 19, p. 6026-6031, 2008. ROMANO, E.; BRASILEIRO, A.C.M.; Extração de DNA de plantas: Soluções para problemas comumente encontrados. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento, ano. 2, n. 9, p. 40-43, 1999. Disponível em: <http://www.biotecnologia.com.br/revista/bio09/extracao.pdf>. Acesso em: 20 de outubro de 2010. RYAN, U.M.; BATH, C.; ROBERTSON, I.; READ, C.; ELLIOT, AILEEN, E.; MCINNES, L.; TRAUB, R.; BESIER, B. Sheep may not be an important zoonotic reservoir for Cryptosporidium and Giardia parasites. Applied and Environmental Microbiology, v. 71, n. 9, p. 4992-4997, 2005. SAFETY REPORT OF GELRED AND GELGREEN. In: Nucleic Acid Detection Technologies. Biotium (Eds), 2008. Disponível em: <http://www.biotium.com>. Acesso em: 17 de dezembro de 2010. SAMBROOK. J.; RUSSEL, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 3.ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory, 2001. p. SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; XIAO, L.; ZHOU, L.; GREINER, E.; FAYER, R. Prevalence and age-related variation of Cryptosporidium species and genotypes in dairy calves. Veterinary Parasitology, v. 122, n. 2, p. 103-117, 2004. SANTÍN, M.; TROUT, J.M. Livestock. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007.p. 451-484. SANTÍN, M.; TROUT, J.M.; FAYER, R. A longitudinal study of Cryptosporidiosis in dairy cattle from birth to 2 years of age. Veterinary Parasitology, v. 155, n. 1-2 ,p. 15-23, 2008. SEVÁ, A.P.; FUNADA, M.R.; SOUZA, S.O.; NAVA, A.; RICHTZENHAIN, L.J.; SOARES, R.M. Occurrence and molecular characterization of Cryptosporidium spp. isolated from domestic animals in a rural area surrounding Atlantic dry forest fragments 121 in Teodoro Sampaio municipality, state of São Paulo, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 19, n. 4, p. 249-253. SILVA, D.G.; SILVA, D.R.; SILVA, P.R.L.; CÍCERO, E.A.S.; FERRAZ, A.L.J.; LEMOS, M.V.F.; FAGLIARI, J.J. Avaliação da reação em cadeia da polimerase e do isolamento bacteriológico convencional na detecção de Salmonella Dublin em amostras de fezes de bezerros infectados experimentalmente. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 62, n. 3, p. 752-756, 2010. SILVA-JUNIOR, F.A; CARVALHO, A.H.O.; ROCHA, C.M.B.M.; GUIMARÃES, A.M. Fatores de risco associados à infecção por Cryptosporidium spp. e Giardia duodenalis em bovinos leiteiros na fase de cria e recria na mesorregião de Campos das Vertentes de Minas Gerais. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 31, n. 8, p. 690-696, 2011. SILVERLÅS, C.; NÄSLUND, K.; BJÖRKMAN, C.; MATTSSON, J.G. Molecular characterization of Cryptosporidium isolates from Swedish dairy cattle in relation to age, diarrhea and region. Veterinary Parasitology, v. 169, n. 3-4, p. 289-295, 2010a. SILVERLÅS, C.; VERDIER, K.; EMANUELSON, U.; MATTSSON, J.G.; BJÖRKMAN, C. Cryptosporidium infection in herds with and without calf diarrheal problems. Parasitology Research, v. 107, n. 6, p. 1435-1444, 2010. ŠLAPETA, J. Centenary of the genus Gryptosporidium: From morphological to molecular species identification. In: ORTEGA-PIERRES, M.G.; CACCIÒ, S.; FAYER, R.; MANK, T.; SMITH, H.; THOMPSON, R.C.A. (Eds). Giardia and Cryptosporidium from molecules to disease. Oxfordshire: CABI, 2009. p. 31-50. SMITH, H. Diagnostics. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 173-208. SMITH, R.P.; CHALMERS, R.M.; MUELLER-DOBLIES, D.; CLIFTON-HADLEY, F.A.; ELWIN, K.; WATKINS, J.; PAIBA, G.A.; HADFIELD, S.J.; GILES, M. Investigation of farms linked to human patients with cryptosporidiosis in England and Wales. Preventive Veterinary Medicine, v. 94, n. 1-2, p. 9-17, 2010. SOBA, B.; LOGAR, J. Genetic classification of Cryptosporidium isolates from humans and calves in Slovenia. Parasitology, v. 135, n. , p. 1263-1270, 2008. STARKEY, S.R.; ZEIGLER, P.E.; WADE, S.E.; SCHAAF, S.L.; MOHAMMED, H.O. Factors associated with shedding of Cryptosporidium parvum versus Cryptosporidium bovis among dairy cattle in New York. Journal of the American Veterinary Medical Association, v. 229, n. 10, p. 1623-1626, 2006. STOCKDALE, H.D.; SPENCER, J.A; BLAGBURN, B.L. Prophylaxis and chemotherapy. In: FAYER, R.; XIAO, L. (Eds). Cryptosporidium and cryptosporidiosis. Florida: CRC Press, 2007. p. 255-288. SULAIMAN, I.M.; HIRA, P.R.; ZHOU, L.; AL-ALI, F.M.; AL-SHELAHI, F.A.; SHWEIKI, H.M.; IQBAL, J.; KHALID, N.; XIAO, L. Unique endemicity of cryptosporidiosis in children in Kuwait. Journal of Clinical Microbiology, v. 43, n. 6, p. 2805-2809, 2005. 122 SZONYI, B.; KANG’ETHE, E.K.; MBAE, C.K.; KAKUNDI, E.M.; KAMWATI, S.K.; MOHAMMED, H.O. First report of Cryptosporidium deer-like genotype in Kenyan cattle. Veterinary Parasitology, v. 153, n. 1-2, p. 172-175, 2008. TAMURA, K.; PETERSON, D.; PETERSON, N.; STECHER, G.; NEI, M.; KUMAR, S. Mega 5: Molecular evolutionary genetics analyses using Maximum Likelyhood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony methods. Molecular Biology and Evolution, v. 28, n. 10, p. 2731-2739, 2011. THOMAZ, A.; MEIRELES, M.V.; SOARES, R.M.; PENA, H.F.J.; GENNARI, S.M. Molecular identification of Cryptosporidium spp. from fecal samples of felines, canines and bovines in the state of São Paulo, Brazil. Veterinary Parasitology, v. 150, n. 4, p. 291-296, 2007. THOMPSON, H.P.; DOOLEY, J.S.G.; KENNY, J.; MCCOOY, M.; LOWERY, C.J.; MOORE, J.E.; XIAO, L. Genotypes and subtypes of Cryptosporidium spp. in neonatal calves in Northern Ireland. Parasitology Research, v. 100, n. 3, p. 619-624, 2007. TYZZER, E.E. A sporozoan found in the peptic glands of the common mouse. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, v. 5, p.12-13, 1907. TYZZER, E.E. Cryptosporidium parvum (sp. nov.), a coccidium found in the small intestine of common mouse. Archives fur Protistenkunde, v. 26, p. 394-412, 1912. UPTON, S.J.; CURRENT, W.L. The species of Cryptosporidium (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) infecting mammals. The Journal of Parasitology, v. 71, n. 5, p. 625-629, 1985. WIELINGA, P.R.; VRIES, A.; VAN DER GOOT, T.H.; MANK, T; MARS, M.H.; KORTBEEK, L.M.; VAN DER GIESSEN, J.W.B. Molecular epidemiology of Cryptosporidium in humans and cattle in the Netherlands. International Journal of Parasitology, v. 38, n. 7, p. 809-817, 2008. WANG, R.; ZHANG, L.; NING, C.; FENG, Y.; JIAN, F.; XIAO, L.; LU, B.; AI, W.; DONG, H. Multilocus phylogenetic analysis of Cryptosporidium andersoni (Apicomplexa) isolated from a bactrian camel (Camelus bactrianus) in China. Parasitology Reasearch, v. 102, n. 5, p. 915-920, 2008. WANG, R.; WANG, H.; SUN, Y.; ZHANG, L.; JIAN, F.;QI, M.; NING, C.; XIAO, L. Characteristics of Cryptosporidium transmission in preweaned dairy cattle in Henan, China. Journal of Clinical Microbiology, v. 49, n. 3, p. 1077-1082, 2011a. WANG, R.; MA, G.; ZHAO, J.; LU, Q.; WANG, H.; ZHANG, L.; JIAN, F.; NING, C.; XIAO, L. Cryptosporidium andersoni is the predominant species in post-weaned and adult dairy cattle in China. Parasitology International, v. 60, n. 1, p. 1-4, 2011b. XIAO, L.; MORGAN, U.M.; LIMOR, J.; ESCALANTE, A.; ARROWOOD, M.; SHULAW, W.; THOMPSON, R.C.A.; FAYER, R.; LAL, A.A. Genetic diversity within Cryptosporidium parvum and related Cryptosporidium species. American Society for Microbiology, v. 65, n. 8, p. 3386-3391, 1999a. XIAO, L.; ESCALANTE, L.; YANG, C.; SULAIMAN, I.; ESCALANTE, A.A.; MONTALI, R.J.; F
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