Estudo epidemiológico de Borrelia burgdorferi, Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale em búfalos (Bubalus bubalis) do Estado do Rio de Janeiro
Autor(a) principal: | |
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Data de Publicação: | 2011 |
Tipo de documento: | Tese |
Idioma: | por |
Título da fonte: | Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ |
Texto Completo: | https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9737 |
Resumo: | O crescente interesse econômico sobre a bubalinocultura tem estimulado pesquisas a respeito da saúde bubalina. O presente estudo teve como objetivo verificar a frequência sorológica e molecular dos agentes Borrelia burgdorferi, Babesia bigemina, Babesia bovis e Anaplasma marginale em búfalos do estado do Rio de Janeiro. Dezessete propriedades foram selecionadas, sendo pelo menos uma por microrregião com criatório bubalino no estado do Rio de Janeiro, nas quais o sangue dos bubalinos foi coletado por amostragem não probabilística. Foram utilizadas 316 amostras de soro e 295 amostras de DNA analisadas pelas técnicas de ELISA indireto e PCR, respectivamente. Para B. burgdorferi apenas as amostras de DNA dos 12 animais com maior soropositividade no ELISA foram submetidas à técnica de PCR. O teste sorológico revelou que 59,2% dos animais foram positivos para B. burgdorferi, 51,3% para B. bovis, 45,9% para B. bigemina e 42,0% para A. marginale. Não foi observada associação entre o sexo dos bubalinos e as frequências de animais positivos para todos os agentes (p>0,05), mas as fêmeas apresentaram maior capacidade de produção de IgG contra infecções por B. burgdorferi, B. bigemina e A. marginale (p<0,05). A idade dos animais mostrou influência sobre a frequência de animais soropositivos e a intensidade de resposta imune para todos os agentes, pois ambas aumentaram progressivamente até o animal atingir 36 meses de idade. A partir dos sete meses de idade, foram observados maiores índices de densidade óptica contra todos os agentes analisados, o que pode indicar o início da imunidade ativa. A PCR para amplificação do gene flgE de Borrelia sp., resultou em uma amostra positiva, cujo sequenciamento revelou 99% de homologia com B. burgdorferi. Para B. bigemina a técnica de PCR utilizada, com sensibilidade para detectar até 58 parasitos/μL de sangue, revelou apenas um animal positivo. A PCR utilizada nas análises para B. bovis, com sensibilidade para detectar até 21 parasitos/μL de sangue, não revelou nenhum positivo em um piloto inicial realizado com amostras de 36 bubalinos altamente soropositivos e 36 negativos no ELISA. A partir deste resultado, não foram testadas as demais amostras de DNA para B. bovis. A técnica de PCR para A. marginale foi eficiente para animais com até 7,33 parasitos/μL de sangue, revelando uma frequência de 5,42% (16/295) de bubalinos positivos. Para todos os agentes, não houve associação entre os resultados da sorologia e da PCR. O percentual de bubalinos do estado do Rio de Janeiro sororreagentes a B. burgdorferi e a existência de um búfalo PCR positivo para este agente sugerem a presença deste espiroquetídeo, ou outro similar antigênica e molecularmente, nesta população animal. Babesia bigemina, B. bovis e A. marginale estão presentes na população estudada, encontrando-se em baixas parasitemias, em grande parte não detectáveis pelas técnicas de PCR simples utilizadas. |
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Corrêa, Fabíola do NascimentoFonseca, Adivaldo Henrique da475.018.557-49http://lattes.cnpq.br/4411441162862608McIntosh, DouglasRibeiro, Múcio Flávio BarbosaYoshinare, Natalino HajimeFaccini, Joâo Luiz HorácioSalles, Roberto de Souza081.149.207-93http://lattes.cnpq.br/23690207064953002023-12-21T18:43:20Z2023-12-21T18:43:20Z2011-07-06CORRÊA, Fabíola do Nascimento. Estudo epidemiológico de Borrelia burgdorferi, Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale em búfalos (Bubalus bubalis) do Estado do Rio de Janeiro. 2011. 116 f. Tese (Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/9737O crescente interesse econômico sobre a bubalinocultura tem estimulado pesquisas a respeito da saúde bubalina. O presente estudo teve como objetivo verificar a frequência sorológica e molecular dos agentes Borrelia burgdorferi, Babesia bigemina, Babesia bovis e Anaplasma marginale em búfalos do estado do Rio de Janeiro. Dezessete propriedades foram selecionadas, sendo pelo menos uma por microrregião com criatório bubalino no estado do Rio de Janeiro, nas quais o sangue dos bubalinos foi coletado por amostragem não probabilística. Foram utilizadas 316 amostras de soro e 295 amostras de DNA analisadas pelas técnicas de ELISA indireto e PCR, respectivamente. Para B. burgdorferi apenas as amostras de DNA dos 12 animais com maior soropositividade no ELISA foram submetidas à técnica de PCR. O teste sorológico revelou que 59,2% dos animais foram positivos para B. burgdorferi, 51,3% para B. bovis, 45,9% para B. bigemina e 42,0% para A. marginale. Não foi observada associação entre o sexo dos bubalinos e as frequências de animais positivos para todos os agentes (p>0,05), mas as fêmeas apresentaram maior capacidade de produção de IgG contra infecções por B. burgdorferi, B. bigemina e A. marginale (p<0,05). A idade dos animais mostrou influência sobre a frequência de animais soropositivos e a intensidade de resposta imune para todos os agentes, pois ambas aumentaram progressivamente até o animal atingir 36 meses de idade. A partir dos sete meses de idade, foram observados maiores índices de densidade óptica contra todos os agentes analisados, o que pode indicar o início da imunidade ativa. A PCR para amplificação do gene flgE de Borrelia sp., resultou em uma amostra positiva, cujo sequenciamento revelou 99% de homologia com B. burgdorferi. Para B. bigemina a técnica de PCR utilizada, com sensibilidade para detectar até 58 parasitos/μL de sangue, revelou apenas um animal positivo. A PCR utilizada nas análises para B. bovis, com sensibilidade para detectar até 21 parasitos/μL de sangue, não revelou nenhum positivo em um piloto inicial realizado com amostras de 36 bubalinos altamente soropositivos e 36 negativos no ELISA. A partir deste resultado, não foram testadas as demais amostras de DNA para B. bovis. A técnica de PCR para A. marginale foi eficiente para animais com até 7,33 parasitos/μL de sangue, revelando uma frequência de 5,42% (16/295) de bubalinos positivos. Para todos os agentes, não houve associação entre os resultados da sorologia e da PCR. O percentual de bubalinos do estado do Rio de Janeiro sororreagentes a B. burgdorferi e a existência de um búfalo PCR positivo para este agente sugerem a presença deste espiroquetídeo, ou outro similar antigênica e molecularmente, nesta população animal. Babesia bigemina, B. bovis e A. marginale estão presentes na população estudada, encontrando-se em baixas parasitemias, em grande parte não detectáveis pelas técnicas de PCR simples utilizadas.Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, BrasilThe increasing economic interest on the buffalo breeding activity has stimulated research regarding the health buffalo. This study aimed to determine the frequency of serological and molecular agents Borrelia burgdorferi, Babesia bigemina, Babesia bovis and Anaplasma marginale in buffaloes in Rio de Janeiro state. Seventeen properties were selected, with at least one per micro region with buffalo breeding in Rio de Janeiro state, where the blood was collected from the buffalo by non-probability sampling. Were used 316 serum samples and 295 DNA samples analyzed by ELISA and PCR techniques, respectively. For B. burgdorferi, only DNA samples from 12 animals with a higher seropositivity in the ELISA were subjected to PCR. Serologic testing revealed that 59.2% of the animals were positive for B. burgdorferi, 51.3% for B. bovis, 45.9% for B. bigemina and 42.0% for A. marginale. There was no association between the sex of the buffalo and the frequencies of animals positive for all agents (p>0.05), but females had higher capacity to produce IgG against infection by B. burgdorferi, B. bigemina and A. marginale (p<0.05). The age of the animals showed influence on the frequency of seropositive animals and intensity of immune response to all agents, since both increased progressively until the age of 36 months of age. After seven months of age showed higher levels of optical density against all agents tested, which may indicate the onset of active immunity. The PCR for gene amplification flgE of Borrelia sp. resulted in one positive sample, whose sequencing revealed 99% homology with B. burgdorferi. For B. bigemina, the PCR technique with sensitivity to detect up to 58 parasites/μL of blood was used and revealed only one positive animal. The PCR used in analysis for B. bovis, with sensitivity to detect up to 21 parasites/μL of blood, has not revealed any positive in an initial pilot conducted with samples from 36 buffaloes highly seropositive and 36 negative by ELISA. From this result, not the other DNA samples were tested for B. bovis. The PCR for A. marginale was effective for animals up to 7.33 parasites/μL blood, revealing a frequency of 5.42% (16/295) of positive buffaloes. For all agents, there was no association between the results of serology and PCR. The percentage of buffaloes in Rio de Janeiro state seropositive to B. burgdorferi and the existence of one buffalo PCR positive for this agent suggest the presence this spirochete, or other similar antigenic and molecular level, this animal population. Babesia bigemina, B. bovis and A. marginale are present at low parasitemia in the population studied, most often not detectable by simple PCR used.application/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Ciências VeterináriasUFRRJBrasilInstituto de VeterináriaBúfaloELISAPCRbuffaloELISAPCRMedicina VeterináriaEstudo epidemiológico de Borrelia burgdorferi, Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale em búfalos (Bubalus bubalis) do Estado do Rio de JaneiroAn Epidemiological Study of Borrelia burgdorferi, Babesia bovis, Babesia bigemina and Anaplasma marginale in Buffaloes (Bubalus bubalis) of Rio de Janeiro State.info:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisABEL, I. S.; MARZAGÃO, G.; YOSHINARI, N. H.; SCHUMAKER, T. T. S. Borrelia-like spirochetes recovered from ticks and small mammals collected in the Atlantic Forest Reserve, Cotia county, state of São Paulo, Brazil. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 95, n. 5, p. 621-624, 2000. ABCB – Associação Brasileira de Criadores de Búfalos. Disponível em: <www.bufalo.com.br> Acesso em: 7 out. 2010. ALMERAULT, T. E.; ROBY, T. O. A rapid card agglutination test for bovine anaplasmosis. Journal of American Veterinary Medicine Association, v. 153, n. 12, p. 1828-1834, 1968. ALMERIA, S.; CASTELLÀ, J.; FERRER, D.; ORTUÑO, A.; ESTRADA-PEÑA, A.; GUTIÉRREZ, J.F. Bovine piroplasms in Minorca (Balearic Islands, Spain): a comparison of PCR-based and light microscopy detection. Veterinary Parasitology, v. 99, n. 3, p. 249–259, 2001. ALEKSHUN, M.; KASHLEV, M.; SCHWARTZ, I. Molecular cloning and characterization of Borrelia burgdorferi rpoB. Gene, v. 186, n. 2, p. 227–235, 1997. ALLEMAN, A. R., PALMER, G. H., MCGUIRE, T. C., MCELWAIN, T. F., PERRYMAN, L. E., BARBET, A. F. Anaplasma marginale major surface protein-3 (MSP-3) is encoded by a polymorphic multigene family. Infection and Immunity, v. 65, n. 1, p. 156–163, 1997. ALMEIDA, M. B.; TORTELLI, F. P.; RIET-CORREA, B.; FERREIRA, J. L. M.; SOARES, M. P.; FARIAS, N. A. R.; RIET-CORREA, F.; SCHILD, A. L. Tristeza parasitária bovina na região sul do Rio Grande do Sul: estudo retrospectivo de 1978-20051. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 26, n. 4, p. 237-242, 2006. ALTSCHUL SF, GISH W, MILLER W, MYERS EW, LIPMAN DJ. Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology, v. 215, n. 3, p. 403–10, 1990. ANDERSON, J. F. Mammalian and avian reservoirs for Borrelia burgdorferi. Annals New York Academy of Sciences, v. 25, n. 8, p. 1495-1497, 1988. ANTONIASSI, N. A. B.; CORRÊA, A. M. R.; SANTOS, A. S.; PAVARINI, S. P.; SONNE, L.; BANDARRA, P. M.; DRIEMEIER, D. Surto de babesiose cerebral em bovinos no estado do Rio Grande do Sul. Ciência Rural, v.39, n. 3, p. 933-936, 2009. ARAÚJO, F. R.; MADRUGA, C. R.; ALMEIDA, M. A. O.; LEAL, C. R. B.; MIGUITA, M. Levantamento sorológico de Babesia bovis e Babesia bigemina no estado da Bahia pela imunofluorescência indireta e teste de conglutinação rápida. Revista Brasileira Parasitologia Veterinária, v. 6, n. 2, p. 111–115, 1997. ARAÚJO, F. R.; MADRUGA, C. R.; BASTOS, P. A. S.; MARQUES, A. P. C. Frequência de anticorpos anti Anaplasma marginale em rebanhos leiteiros da Bahia. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 50, n. 3, p. 243-246, 1998. 68 ARAÚJO, F. R.; MELO, V. S. P.; RAMOS, C. A. N.; MADRUGA, C. R.; SOARES, C. O.; KESSLER, R. H.; ALMEIDA, N. F.; ARAÚJO, G. S.; TORRES JR, R. A. A.; FRAGOSO, S. P.; ARAUCO, P. R. C.; BACANELLI, G.; OLIVEIRA, M. B.; SANTOS, L. R. Development of enzymelinked immunoadsorbent assays based on recombinant MSP1a and MSP2 of Anaplasma marginale. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 100, n. 7, p. 765-769, 2005. ARTILES, J.; ALVES-BRANCO, F. P. J.; MARTINS, J. R.; CORREA, L. B.; SAPPER, M. F. M. Prevalência de Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale no município de Bagé, RS. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, n. 2, supl. 2, p. 179, 1995. AUSTIN, F. E. Maintenance of infective Borrelia burgdorferi Sh-2-82 in 4% oxygen- 5% carbon dioxide in vitro. Canadian Journal of Microbiology, v. 39, n. 12, p. 1103-1110, 1993. AYRES, M.; AYRES JUNIOR, M.; AYRES, D. L.; SANTOS, A. S. BioEstat: aplicações estatísticas nas áreas das ciências biomédicas. 2007. 380p. Disponível em: <http://euler.mat.ufrgs.br/~giacomo/Manuais-softw/Manual-BioEstat.pdf> Acesso em: 13 out. 2010. BABES, V. Sur l‘he´moglobinurie bacte´rienne du boeuf. Comptes Rendus de l'Académie des sciences, v. 107, p. 692–694, 1888. BACON, R. M.; BIGGERSTAFF, B. J.; SCHRIEFER, M. E.; GILMORE, R. D.; PHILIPP, M. T.; STEERE, A. C.; WORMSER, G. P.; MARQUES, A. R.; JOHNSON, B. J. Serodiagnosis of Lyme disease by kinetic Elisas using recombinant VlsE1 or peptide antigens of Borrelia burgdorferi compared with two-tiered testing using whole-cell lysates. Journal of Infectious Diseases, v. 187, n. 8, p. 1187–1199, 2003. BARBET, A. F.; PALMER, G. H.; MYLER, P. J.; MCGUIRE, T. C. Characterization of an immunoprotective protein complex of Anaplasma marginale by cloning and expression of the gene coding for polypeptide Am105L. Infection and Immunity, v. 55, n. 10, p. 2428-2435, 1987. BARBET, A. F.; ALLRED, D. R. The msp1 beta multigene family of Anaplasma marginale: nucleotide sequence analysis of an expressed copy. Infection and Immunity, v. 59, n. 3, p. 971-976, 1991. BARBOSA, M. F. R.; COSTA, J. O.; TAFURI, W. L. Transmissão congênita de Babesia bovis: relato de um caso em Minas Gerais – Brasil. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 46, n. 5, p. 519-526, 1994. BARBOUR, A. G.; HAYES, S. F. Biology of Borrelia species. Clinical Microbiology Reviews, v.50, n. 4, p. 381-400, 1986. BARREIRA, J. D.; ROSSI, M. I. D.; SILVA, G. V. O.; PIRES, F. A.; MASSARD, C. L. Caracterização morfológica e aspectos biológicos das formas evolutivas de Babesia bigemina (Smith; Kilborne, 1893) (Protozoa: Babesiidae) em Boophilus microplus (Canestrini, 1887). Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 14, n. 1, p. 1-6, 2005. BARROS-BATTESTI, D. M. Estudos de carrapatos e pequenos mamíferos silvestres naturalmente infectados com espiroquetas semelhantes à Borrelia, no município de 69 Itapevi, estado de São Paulo. Tese Doutorado, Universidade de São Paulo, São Paulo-SP. 116p., 1998. BARROS-BATTESTI, D. M.; YOSHINARI, N. H.; BONOLDI, V. L. N.; GOMES, A. C. Parasitism by Ixodes didelphidis and I. loricatus (Acari: Ixodidae) on Small Wild Mammals from an Atlantic Forest in the State of Sao Paulo, Brazil. Journal of Medical Entomology, v. 37, n. 6, p. 820-927, 2000. BARROS-BATTESTI, D. M., ARZUA, M., BECHARA, G. H. Carrapatos de Importância Médico-Veterinária da Região Neotropical – Um guia ilustrado para identificação de espécies. 1 ed. São Paulo: Vox/ICTTD-3/Butantan, 2006. 223p. BARROS, S. L.; MADRUGA, C. R.; ARAÚJO, F. R.; MENK, C. F.; ALMEIDA, M. A. O.; MELO, E. P. S.; KESSLER, R. H. Serological survey of Babesia bovis, Babesia bigemina, and Anaplasma marginale antibodies in cattle from the semi-arid region of the state of Bahia, Brazil, by enzyme-linked immunosorbent assays. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 100, n. 6, p. 613-617, 2005. BARRY, D. N.; PARKER, R. J.; DE VOS, A. J.; DUNSTER, P.; RODWELL, B. J. A microplate enzyme-linked immunosorbent assay for measuring antibody to Anaplasma marginale in cattle serum. Australian Veterinary Journal, v. 63, n. 3, p. 76-79, 1986. BENACH, J. L.; COLEMAN, J. L.; SKINNER, R. A.; BOSLER, E. M. Adult Ixodes dammini on rabbits: a hypothesis for the development and transmission of Borrelia burgdorferi. The Journal of Infectious Diseases, v. 155, n. 6, p. 1300-1306, 1987. BENNETT, C. E. Ticks and Lyme disease. Advances in Parasitology, v. 36, p. 343-405, 1995. BENXIU, J.; COLLINS, M. Seroepidemiologic survey of Borrelia burgdorferi exposure of dairy cattle in Wisconsin. American Journal of Veterinary Research, v. 55, n. 9, p. 1228-1231, 1994. BERNARDES, O. Bubalinocultura no Brasil: situação e importância econômica. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v. 31, n. 3, p. 293-298, 2007. BERTO, R. S.; FAUSTINO, M. A. G.; MELO, L. E. H.; ALVES, L. C.; MADRUGA, C. R.; ALMEIDA, M. A. O.; RAMOS, C. A. N.; TENÓRIO, T. G. S.; SILVA, F. F. Frequência de anticorpos IgG anti - Babesia bovis e anti - Babesia bigemina em bovinos no Município do Paudalho, Zona da Mata do estado de Pernambuco. Medicina Veterinária, v. 2, n. 3, p. 9-12, 2008. BOCK, R. E.; KINGSTON, T. G.; DE VOS, A. J.; Effect of breed of cattle on transmission rate and innate resistence to infection with Babesia bovis, Babesia bigemina transmitted by Boophilus microplus. Australian Veterinary Journal, v. 77, n. 7, p. 461-464, 1999. BOCK, R. E.; JACKSON, L.; DE VOS, A.; JORGENSEN, W. Babesiosis of cattle. Parasitology, v. 129, n. 1, p. S247-S269, 2004. BOONCHIT, S.; XUAN, X.; YOKOYAMA, N.; GOFF, W. L.; WAGNER, G.; IGARASHI, I. Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay with recombinant rhoptry-associated 70 protein 1 antigen against Babesia bovis for the detection of specific antibodies in cattle. Journal of Clinical Microbiology, v. 40, n. 10, p. 3771–3775, 2002. BÖSE, R.; JORGENSEN, W. K.; DALGLIESH, R. J.; FRIEDHOFF, K. T.; DE VOS, A. J. Current state and future trends in the diagnosis of babesioses. Veterinary Parasitology, v. 57, n. 1-3, p. 61-74, 1995. BOSLER, E. M. Tick vectors and hosts. In: COYLE, P. K. Lyme Disease. Boston: Mosby Year Book, 1993. p. 18-26. BOWIE, M. V.; DE LA FUENTE, J.; KOCAN, K. M.; BLOUIN, E. F.; BARBET, A. F. Conservation of major surface protein 1 genes of Anaplasma marginale during cyclic transmission between ticks and cattle. Gene, v. 282, n. 1-2, p. 95–102, 2002. BRACARENSE, A. P. F. L.; VIDOTTO, O.; CRUZ, G. D. Transmissão congênita de Babesia bovis. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 53, n. 4, p. 479-481, 2001. BRAYTON, K. A.; KAPPMEYER, L. S.; HERNDON, D. R.; DARK, M. J.; TIBBALS, D. L.; PAMER, G. H.; MCGUIRE, T. C.; KNOWLES JR., D. P. Complete genome sequencing of Anaplasma marginale reveals that the surface is skewed to two superfamilies of outer membrane proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, v. 102, n. 3, p. 844–849, 2005. BRAZ, J. R, C. J.; RIBEIRO, M. F.; LIMA, J. D.; PASSOS, L. M. Development of an ELISA system for detection of anti-Anaplasma marginale antibodies in cattle in Brazil. Journal of Veterinary Medicine, v. B47, n. 4, p. 241–248, 2000. BROWN, W. C.; NORIMINE, J.; KNOWLES, D. P.; GOFF, W. L. Immune control of Babesia bovis infection. Veterinary Parasitology, v. 138, n. 1-2, p. 75-87, 2006. BUCHWALD, A. Ein Fall von diffuser idiopathischer Hautatrophie. Derm Vierteljahresschr, v. 10, p. 553-554, 1883. BUENING, G. M.; BARBET, A.; MYLER, P.; MAHAN, S.; NENE, V.; MCGUIRE, T. C. Characterization of a repetitive DNA probe for Babesia bigemina. Veterinary Parasitology, v. 36, n. 1-2, p. 11-20, 1990. BULING, A.; CRIADO-FORNELIO, A.; ASENZO, G.; BENITEZ, D.; BARBA-CARRETERO, J. C.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. A quantitative PCR assay for the detection and quantification of Babesia bovis and B. bigemina. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p. 16-25, 2007. BURGDORFER, W.; BARBUR, A. G.; HAYES, S. F. Lyme disease: a tick-borne spirochetosis? Science, v.216, n. 4552, p. 1317-1319, 1982. BURGESS, E. C.; AMUNDSON, T. E.; DAVIS, J. P.; KASLOW, R. A.; EDELMAN, R. Experimental inoculation of Peromyscus spp. With Borrelia burgdorferi: evidence of contact transmission. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 35, n. 2, p. 355-359, 1986. 71 BURGESS, E. C.; GENDRON-FITZPATRICK, A.; WRIGHT, W. O. Arthritis and systemic disease caused by Borrelia burgdorferi in a cow. Journal of American Veterinary Medicine Association, v. 191, n. 11, p. 1468-1470, 1987. BURGESS, E. C. Borrelia burgdorferi infection in Wisconsin horses and cows. Annals New York Academy of Sciences, v. 539, n. 1, p. 235-243, 1988. BUSHMICH, S. L. Lyme Borreliosis in Domestic Animals. Journal of Spirochaetal and Ticks-Borne Diseases, v. 1, n. 1. p. 24-28, 1994. BUTLER, J. F.; DENMARK, H. A. Tick (Acari: Ixodidae) vectors of Lyme disease organisms (Borrelia burgdorferi) in Florida. Fla Department of Agriculture and Consumer Service Division of Plant Industry. The Entomology. 1990. Circular nº 326. CALLOW, L. L. Observations on tick-transmitted spirochaetes of cattle in Australia and South Africa. British Veterinary Journal, v. 123, n. 11, p. 492-497, 1967. CALLOW, L. L.; PARKER, R. J.; RODWELL, B. J.; OTTLEY, M. L. Piroplasmosis in buffaloes and its serological diagnosis based on a homology between buffalo and bovine immunoglobulins. Australian Veterinary Journal, v. 52, n. 1, p. 40-41, 1976. CALLOW, L. L. Animal health in Australia. Protozoal and rickettsial diseases. Canberra: Australian Government Publishing Service, 1984. v. 5. 264 p. CAPUTA, A. C.; MURTAUGH, M. P.; BEY, R. F.; LOKEN, K. I. 110-Kilodalton recombinant protein which is immunoreactive with sera from humans, dogs, and horses with Lyme borreliosis. Journal of Clinical Microbiology, v. 29, n. 11, p. 2418-2423, 1991. CARELLI, G.; DECARO, N.; LORUSSO, A.; ELIA, G.; LORUSSO, E.; MARI, V.; CECI, L.; BUONAVOGLIA, C. Detection and quantification of Anaplasma marginale DNA in blood samples of cattle by real-time PCR. Veterinary Microbiology, v. 124, n. 1-2, p. 107–114, 2007. CHARLES, D. D.; JOHNSON, E. R. Liveweight gains and carcass composition of buffalo (Bubalus bubalis) steers on four feeding regimes. Australian Journal of Agricultural Research, v. 26, n. 2, p. 407-413, 1972. CHAUVIN, A.; MOREAU, E.; BONNET, S.; PLANTARD, O.; MALANDRIN, L. Babesia and its hosts: adaptation to long-lasting interactions as a way to achieve efficient transmission. Veterinary Research, v. 40, n. 2, p. 37, 2009. COCKRILL, W. R. O búfalo em ascensão: animal doméstico fundamental, criação, proteção e saúde animal. In: RAMOS, A. A.; VILLARES, J. B.; MOURA, J. C.(Ed.). Os búfalos. Piracicaba: Fundação de Estudos Agrários Luiz de Queiroz, 1981. p. 01-54. COMSTEDT, P.; BERGSTRÖM, S.; OLSEN, B.; GARPMO, U.; MARJAVAARA, L.; MEJLON, H.; BARBOUR, A. G.; BUNIKIS, J. Migratory Passerine Birds as Reservoirs of Lyme Borreliosis in Europe. Emerging Infectious Disease, v. 12, n. 8, p. 1085-1095, 2006. CORONADO, A. Is Boophilus microplus the main vector of Anaplasma marginale? Technical note. Revista Científica FCV-LUZ, v. 11, n. 5, p. 408–411, 2001. 72 CORRÊA, F. N. Pesquisa de anticorpos homólogos anti-Borrelia burgdorferi em búfalos (Bubalus bubalis) do estado do Pará. Dissertação Mestrado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro, 36p., 2007. COSTA, C. L.; KOHAYAGAWA, A.; DELL‘PORTO, A.; BOMFIM, S. R. M. Determinação dos níveis de anticorpos anti-Babesia spp. em bezerros bubalinos (Bubalus bubalis), desde o nascimento até um ano de idade. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 6, n. 2, p. 117-121, 1997. CRAFT, J. E.; FISCHER, D. K.; SHIMAMOTO, G. T.; STEERE, A. C. Antigens of Borrelia burgdorferi recognized during Lyme Disease. The Journal of Clinical Investigation, v. 78, n. 4, p. 934-939, 1986. CORRIER, D. E,; GUZMAN, S. The effect of natural exposure to Anaplasma and Babesia infections on native calves in an endemic area of Colombia. Tropical Animal Health Production, v. 9, n. 1, p. 47-51, 1977. DALAGNOL, C. A.; MARTINS, E.; MADRUGA, C. R. Prevalência de anticorpos contra Babesia bovis, Babesia bigemina, Anaplasma marginale em bovinos de corte da região de clima Cfb. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, n. 2, supl. 1, p. 220, 1995. DALGLIESH, R. J.; STEWART, N. P. The use of tick transmission by Boophilus microplus to isolate pure strains of Babesia bovis, Babesia bigemina and Anaplasma marginale from cattle with mixed infections. Veterinary Parasitology, v. 13, n. 4, p. 317-323, 1983. DALGLIESH, R. J.; JORGENSEN, W. K.; DE VOS, A. J. Australian frozen vaccines for the control of babesiosis and anaplasmosis in cattle: A review. Tropical Animal Health Production, v. 22, n. 1, p. 44-52, 1990. D‘ANDREA, L. A. Z.; SARTOR, I. F.; MADRUGA, C. R.; FREITAS, S. B. Z.; KROLL, L. B. E KRONKA, S. N. Condição imunológica de bovinos das raças Holandesa e Nelore frente a Babesia bovis e B. bigemina em duas regiões do estado de São Paulo. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 26, n. 2, p. 74-78, 2006. DANTRAKOOL, A.; SOMBOON, P.; HASHIMOTO, T.; SAITO-ITO, A. Identification of a New Type of Babesia Species in Wild Rats (Bandicota indica) in Chiang Mai Province, Thailand. Journal of Clinical Microbiology, v. 42, n. 2, p. 850-854, 2004. DE LA FUENTE, J.; VAN DEN BUSSCHE, R. A.; KOCAN, K. M. Molecular phylogeny and biogeography of North American isolates of Anaplasma marginale (Rickettsiaceae: Ehrlichieae). Veterinary Parasitology, v. 97, n. 1, p. 65–76, 2001. DE LA FUENTE, J.; NARANJO, V.; RUIZ-FONS, F.; VICENTE, J.; ESTRADA-PEÑA, A. N.; ALMAZÁN, C.; KOCAN, K. M.; MARTÍN, M. P.; GORTÁZAR, C. Prevalence of tick-borne pathogens in ixodid ticks (Acari: Ixodidae) collected from wild boar (Sus scrofa) and Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) in central Spain. European Journal of Wildlife Research, v. 50, n. 4, p. 187–196, 2004a. DE LA FUENTE, J.; PASSOS, L. M. F.; VAN DEN BUSSCHE, R. A.; RIBEIRO, M. F. B.; FACURY-FILHO, E. J.; KOCAN, K. M. Genetic diversity and molecular phylogeny of 73 Anaplasma marginale isolates from Minas Gerais, Brazil. Veterinary Parasitology, v. 121, n. 3-4, p. 307–316, 2004b. DE LA FUENTE, J.; LEW, A.; LUTZ, H.; MELI, M. L.; HOFMANN-LEHMANN, R.; SHKAP, V.; MOLAD, T.; MANGOLD, A. J.; ALMAZÁN, C.; NARANJO, V.; GORTÁZAR, C.; TORINA, A.; CARACAPPA, S.; GARCÍA-PÉREZ, A. L.; BARRAL, M.; OPORTO, B.; CECI, L.; CARELLI, G.; BLOUIN, E. F.; KOCAN, K. M. Genetic diversity of Anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Animal Health Research Reviews, v. 6, n. 1, p. 75–89, 2005. DE LA FUENTE, J.; RUYBAL, P.; MTSHALI, M. S.; NARANJO, V.; SHUQING, L.; MANGOLD, A. J.; RODRIGUEZ, S. D.; JIMENEZ, R.; VICENTE, J.; MORETTAL, R.; TORINA, A.; ALMAZAN, C.; MBATI, P. M.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; FARBER, M.; ROSARIO-CRUZ, R.; GORTAZAR, C.; KOCAN, K. M. Analysis of world strains of Anaplasma marginale using major surface protein 1a repeat sequences. Veterinary Microbiology, v. 119, n. 2-4, p. 382–390, 2007. DOBY, J. M.; BIGAIGNON, G.; AUBERT, M.; IMBERT, G. Ectoparasites of the fox and Lyme borrelioses. Research on Borrelia burgdorferi in ixodid ticks and fleas (Siphonaptera). Bulletin de la Societe Francaise de Parasitologie, v. 9, n. 1, p. 279-288, 1991. DOMINGUEZ, M.; ZABAL, O.; WILKOWSKY, S.; ECHAIDE, I.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; ASENZO, G.; RODRÍGUEZ, A.; ZAMORANO, P.; FARBER, M.; SUAREZ, C.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. Use of a Monoclonal Antibody against Babesia bovis Merozoite Surface Antigen-2c for the Development of a Competitive ELISA Test. Annals New York Academy of Sciences, v. 1026, n. 1, p. 165–170, 2004. DORWARD, D. W.; SCHWAN, T. G.; GARON, C. F. Immune capture and detection o Borrelia burgdorferi antigens in urine, blood or tissues from infected ticks, mice, dogs and humans. Journal of Clinical Microbiology, v. 29, n. 6, p. 1162-1170, 1991. DRESSLER, F.; WHALEN, J. A.; REINHARDT, B. N.; STEERE, A. C. Western blotting in the serodiagnosis of Lyme disease. The Journal of Infectious Diseases, v. 167, n. 12, p. 392-400, 1993. DUMLER, J. S., BARBET, A. F., BEKKER, C. P. J., DASCH, G. A., PALMER, G. H., RAY, S. C., RIKIHISA, Y., RURANGIRWA, F. R. Reorganization of the genera in the families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and ‗‗HGE agent‘‘ as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 51, n. 6, p. 2145–2165, 2001. DUZGUN, A.; SCHUNTNER, C. A.; WRIGHT, I. G.; LEATCH, G.; WALTISBUHL, D. J. A sensitive ELISA technique for the diagnosis of Anaplasma marginale infections. Veterinary Parasitology, v. 29, n. 1, p. 1-7, 1988. EISEN, L.; LANE, R. Vectors of Borrelia burgdorferi sensu lato. In: GRAY J.; KAHL O.; LANE R.; STANEK G. Lyme borreliosis biology, epidemiology and control. Wallingford: Cabi Publishing, 2002. p. 91–115. 74 EL-GHAYSH, A.; SUNDQUIST, B.; CHRISTENSSON, D. A.; HILALI, M.; NASSAR, A. M. Observations on the use of ELISA for detection of Babesia bigemina specific antibodies. Veterinary Parasitology, v. 62, n. 1-2, p. 51-61, 1996. ENGSTROM, S. M.; SHOOP, E.; JOHNSON, R. C. Immunoblot interpretation criteria for serodiagnosis of early Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 33, n. 2, p 419-427, 1995. ERIKS, I. S.; PALMER, G. H.; MCGUIRRE, T. C.; ALLRED, D. R.; BARBET, A. F. Detection and quantitation of Anaplasma marginale in carrier cattle by using a nucleic acid probe. Journal Clinical Microbiology, v. 27, n. 2, p. 279-284, 1989. EWING, S. A., Transmission of Anaplasma marginale by arthropods. In: HIDALGO, R.J., JONES, E.W. PROCEEDINGS OF THE 7TH NATIONAL ANAPLASMOSIS CONFERENCE. Annals…Mississippi: Mississippi State University, 1981. p. 395–423. FAHRIMAL, Y.; GOFF, W. L.; JASMER, D. P. Detection of Babesia bovis carrier cattle by using polymerase chain reaction amplification of parasite DNA. Journal of Clinical Microbioloigy, v. 30, n. 6, p. 1373-1379, 1992. FAJARDO, F. A. A piroplasmose bovina no Rio de Janeiro. Revista de Medicina, v.4, n. 18, p. 315-319, 1901. FARIAS, N. A. Tristeza parasitária bovina. In: RIET-CORREA, F.; SHILD, A. L.; LEMOS, R. A. A.; BORGES, J. R. J. Doenças de Ruminantes e Equídeos. 3.ed. Santa Maria: Pallotti, 2007, v.1, p.524-532. FERREIRA, A. M.; SUZART, S.; VIDOTTO, O.; KNOWLES, D. P.; VIDOTTO, M. C. Use of repetitive DNA elements to define genetic relationships among Anaplasma marginale isolates. FEMS Microbiology Letters, v. 197, n. 2, p. 139–143, 2001. FERRERI, L.; BENITEZ, D.; DOMINGUEZ, M.; RODRIGUEZ, A.; ASENZO, G.; MESPLET, M.; FLORIN-CHRISTENSEN, M.; SCHNITTGER, L. Water Buffalos as Carriers of Babesia bovis in Argentina. Animal Biodiversity and Emerging Diseases: Annals of the New York Academy of Sciences, v. 1149, n. 1, p. 149-151, 2008. FIGUEROA, J. V.; CHIEVES, L. P.; JOHNSON, G. S.; BUENING, G. M. Detection of Babesia bigemina-infected Carriers by Polymerase Chain Reaction Amplification. Journal of Clinical Microbioloigy, v. 30, n. 10, p. 2576-2582, 1992. FIGUEROA, J. V.; CHIEVES, L. P.; JOHNSON, G. S.; BUENING, G. M. Multiplex polymerase chain reaction based assay for the detection of Babesia bigemina, Babesia bovis and Anaplasma marginale DNA in bovine blood. Veterinary Parasitology, v. 50, n. 1-2, p. 69-81, 1993. FIGUEROA, J. V., ALVAREZ, J. A., RAMOS, J. A., ROJAS, E. E., SANTIAGO, C., MOSQUEDA, J. J., VEGA, C. A., BUENING, G. M. Bovine babesiosis and anaplasmosis follow-up on cattle relocated in an endemic area for hemoparasitic diseases. Annals of the New York Academy of Sciences, v. 849, n. 1, p. 1–10, 1998. 75 FILGUEIRA, A. L.; TROPPE, B. M.; GONTIJO FILHO, P. P. Doença de Lyme. Rio Dermatológico, v. 2, n. 1, p. 1, 1989. FRANQUE, M. P. Perfil da Pecuária Leiteira e Aspectos Epidemiológicos do Complexo Tristeza Parasitária Bovina na Mesorregião Sul Espirito-santense, ES. Tese de Doutorado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. 115p., 2010. FRANZOLIN-NETO, R; DELL‘PORTO, A.; LACAZ RUIZ, R. Anaplasmosis and babesiosis: a clinical case in Buffalo (Bubalus bubalis) calf in Brazil. Buffalo Bulletin, v. 8, n. 3, p. 54-68, 1989. FRASER C.; CASJENS S.; HUANG W.; SUTTON G.; CLAYTON R.; LATHIGRA R.; WHITE, O.; KETCHUM, K. A.; DODSON, R.; HICKEY, E. K.; GWINN, M.; DOUGHERTY, B.; TOMB, J. F.; FLEISCHMANN, R. D.; RICHARDSON, D.; PETERSON, J.; KERLAVAGE, A. R.; QUACKENBUSH, J.; SALZBERG, S.; HANSON, M.; VUGT, R. V.; PALMER, N.; ADAMS, M. D.; GOCAYNE, J.; WEIDMAN, J.; UTTERBACK, T.; WATTHEY, L.; MCDONALD, L.; ARTIACH, P.; BOWMAN, C.; GARLAND, S.; FUJII, C.; COTTON, M. D.; HORST, K.; ROBERTS, K.; HATCH, B.; SMITH, H. O.; VENTER, J. C. Genomic sequence of a Lyme disease spirochaete, Borrelia burgdorferi. Nature, v. 390, n. 6660, p. 580–586, 1997. FRENCH, D. F., MCELWAIN, T. F., MCGUIRE, T. C., PALMER, G. H. Expression of Anaplasma marginale major surface protein 2 variants during persistent cyclic rickettsemia. Infection and Immunity, v. 66, n. 3, p. 1200–1207, 1998. FREY, A.; CANZIO, J. D.; ZURAKOWSKI, D. A statistically defined endpoint titer determination method for immunoassays. Journal of Immunological Methods, v. 221, n. 1-2, p. 35-41, 1998. FUKUNAGA, M.; OKADA, K.; NAKAO, M.; KONISHI, T.; SATO, Y. Borrelia tanukii sp. nov. and Borrelia turdae sp. nov. found from ixodid ticks in Japan: rapid species identification by 16SrRNA gene-targeted PCR analysis. Microbiology and immunology, v. 40, n. 11, p. 877–881, 1996. FUTSE, J. E.; UETI, M. W.; KNOWLES JR, D. P.; PALMER, G. H. Transmission of Anaplasma marginale by Boophilus microplus: retention of vector competence in the absence of vector-pathogen interaction. Journal of Clinical Microbiology, v. 41, n. 8, p. 3829–3834, 2003. FRIEDHOFF, K. T. Transmission of Babesia. In: M. RISTIC (Ed). Babesiosis of Domestic Animals and Man. Florida: CRC Press, 1988. pp. 23-52. GALIZA, G. J. N.; SILVA, M. L. C. R.; DANTAS, A. F. M.; SIMÕES, S. V. D.; RIET-CORREA, E. F. Doenças do sistema nervoso de bovinos no semiárido nordestino. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 30, n. 3, p. 267-276, 2010. GALO, K. R. Frequência de anticorpos anti- Borrelia burgdorferi em equinos na mesorregião metropolitana de Belém, estado do Pará. 2006. Dissertação Mestrado, Universidade Federal do Pará, Castanhal, Pará. 48p, 2006. 76 GILL, J. S.; MCLEAN, R. G.; SHRINER, R. B.; JOHNSON, R. C. Serologic surveillance for the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi, in Minnesota by using white-tailed deer as sentinel animals. Journal of Clinical Microbiology, v. 32, n. 2, p. 444-451, 1994. GOMES, R. A. Resposta imune-humoral de búfalos (Bubalus bubalis) infectados naturalmente por Babesia bovis, B. bigemina e Anaplasma marginale. Tese de Doutorado. Universidade Estadual de São Paulo. Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Jaboticabal. 92p., 2007. GOMES, R. A.; MACHADO, R. Z.; STARKE-BUZETTI, W. A.; BONESSO, M. A. Resposta imune-humoral de búfalos (Bubalus bubalis) contra Anaplasma marginale (Theiler, 1910). Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, n. 2, p. 73-80, 2008. GONÇALVES, P. M.; PASSOS, L. M. F. Utilização do teste ELISA (sistema biotina-avidina) para detecção de anticorpos anti-Babesia bovis. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, supl. 1, p. 216, 1995. GONÇALVES, P. M. Epidemiology and control of bovine babesioses and anaplasmosis in southeast region of Brazil. Ciência Rural, v. 30, n. 1, p.187-194, 2000. GONZALES, E. F.; LONG, R. F.; TODOROVIC, R. A. Comparisons of the complement fixation, indirect fluorescent antibody, and card agglutination tests for the diagnosis of bovine anaplasmosis. American Journal of Veterinary Research, v. 39, n. 9, p. 1538-1541, 1978. GORDILLO, G.; TORRES, J.; SOLÓRZANO, F.; CEDILLO-RIVERA, R.; TAPIA-CONYER, R.; MUÑOZ, O. Serologic evidences suggesting the presence of Borrelia burgdorferi infection in Mexico. Archives of Medical Research, v. 30, n. 1, p. 64-68, 1999. GORDON, J. L.; SIBLEY, L. D. Comparative genome analysis reveals a conserved family of actin-like proteins in apicomplexan parasites. BMC Genomics, v. 6, n. 1, p. 179, 2005. GREENE, R. T.; WALKER, R. L.; NICHOLSON, W. L.; HEIDNER, H. W.; LEVINE, J. F.; BURGESS, E. C.; WYAND, M.; BREITSCHWERDT, E. B.; BERKHOFF, H. A. Immunoblot analysis of immunoglobulin G response to the Lyme disease agent (Borrelia burgdorferi) in experimental and naturally exposed dogs. Journal of Clinical Microbiology, v. 26, n. 4, p. 648-653, 1988. GRODZICKI, R. L.; STEERE, A. C. Comparison of imunoblotting and indirect enzyme-linked immunosorbent assay using different antigen preparations for diagnosing early Lyme Disease. The Journal of Infectious Diseases, v. 157, n. 4, p. 790-797, 1988. GUEDES JR, D. S.; ARAÚJO, F. R.; SILVA, F. J. M.; RANGEL, C. P.; BARBOSA, J. D.; FONSECA, A. H. Frequency of antibodies to Babesia bigemina, B. bovis, Anaplasma marginale, Trypanosoma vivax and Borrelia burgdorferi in cattle from the northeastern region of the state of Pará, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, n. 2, p. 105-109, 2008. GUGLIELMONE, A. A. Epidemiology of babesiosis and anaplasmosis in South and Central America. Veterinary Parasitology, v. 57, n. 1, p. 109–119, 1995. 77 GUIDO, M. C.; DELL‘PORTO, A.; FUJII, T. U.; ARTES, R. Prevalence of hemoparasites in buffaloes from Ribeira Valley south coast of São Paulo, Brazil State-Brazil. In: WORLR BUFFALO CONGRESS: 4th, 1994, São Paulo. Proceedings...São Paulo: 1994. p. 325-327. GUSTAFSON, J. M.; BURGESS, E. C.; WACHAL, M. D.; STEINBERG, H. Intrauterine transmission of Borrelia burgdorferi in dogs. American Journal of Veterinary Research, v. 54, n. 6, p. 882-890, 1993. HABELA, M.; SOLANO, A.; ANTON, J. M.; BOTICARIO, D.; MORENO, F.; ROL, J. A. Aislamiento, identificación y transmisión experimental de Babesia bigemina en Extremadura (España). In: CONGRESO IBÉRICO DE PARASITOLOGÍA: IV, 1995, Santiago de Compostela. Libro de resúmenes... Santiago de Compostela: 1995. p. 104–105. HADANI, A.; GUGLIELMONE, A. A.; BERMÚDEZ, A. C. Deteccion de espiroquetas del genero Borrelia en bovinos de la provincia de Salta, Argentina. Revista de Medicina Veterinaria Argentina, v. 66, n. 5, p. 292-294, 1985. HOOGSTRAAL, H. Argasid and nuttalliellid ticks as parasites and vectors. Advances in Parasitology, v. 24, n. 1, p. 135-238, 1985. HODGSON, J.H. Biology and transmission of Babesia bigemina in Boophilus microplus. Annals New York Academy of Sciences, v. 653, n. 1, p. 42-51, 1992. HUNFELD, K. P.; HILDEBRANDT, A.; GRAY, J. S. Babesiosis: Recent insights into an ancient disease. International Journal for Parasitology, v. 38, n. 11, p. 1219–1237, 2008. HUNGERFORD, L. L.; SMITH, R. D. Variations in seroprevalence and host factors for bovine anaplasmosis in Illinois. Veterinary Research Community, v. 21, n. 1, p. 9-18, 1997. HYDE, F. W.; JOHNSON, R. C.; WHITE, T. J.; SHELBURNE, C. E. Detecting of antigens in urine of mice and humans infected with Borrelia burgdorferi, etiologic agent of Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 27, n. 1, p. 58-61, 1989. IBGE – Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em: <www.ibge.gov.br > Acesso em: 05 jun 2007. IICA - Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura. Técnicas para el diagnóstico de babesioses y anaplasmosis bovina. San José: IICA, 1987. 79p. IRVIN, A. D.; OMWOYO, P.; PURNELL, R. E.; PIERCE, M. A.; SCHIEMANN, B. Blood parasites of the impala (Aepyceros melampus) in the Serengeti National Park. The Veterinary Record, v. 93, n. 7, p. 200-203, 1973. ISHIKAWA, M. M.; FONSECA, A. H.; SOARES, C. O.; MASSARD, C. L.; YOSHINARI, N. H. Padronização de ensaio imunoenzimático ELISA indireto para pesquisa de anticorpos IgG contra Borrelia burgdorferi em bovinos. Revista Brasileira de Medicina Veterinária, v. 19, n. 4, p.166-168, 1997. ISHIKAWA, M. M. Epidemiologia da borreliose de Lyme em bovinos na região sudeste do Brasil e padronização do diagnóstico sorológico. Dissertação de Mestrado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. 51p., 1996. 78 ISHIKAWA, M. M. Perfil da produção de anticorpos anti-Borrelia burgdorferi em bovinos e estudo de infecções simultâneas com diferentes estímulos antigênicos, em condições experimental e natural. Tese de Doutorado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. 80p., 2000. JACOBO, R. A., CIPOLINI, M. F., STORANI, C. A., MARTÍNEZ, D. E., MARTÍNEZ, E. I. Infeción con el complejo tristeza em búfalos. Comunicaciones Científicas y Tecnológicas, Universidad Nacional del Nordeste, Corrientes, resumen: V-063, 2005. Disponível em: http://www.unne.edu.ar/Web/cyt/com2005/4-Veterinaria/V-063. Acesso em: 15 nov. 2010. JAMES, J. C. S.; CORONADA, A.; LOPEZ, W.; MELENDEZ, R.; RISTIC, M. Seroepidemiology of bovine anaplasmosis and babesiosis in Venezuela. Tropical Animal Health Production, v. 17, n. 1, p. 9-18, 1985. JOHNSON, R. C.; SCHIMID, G. P.; HYDE, F. W.; STEIGERWALT, A. G.; BRENNER, D. J. Borrelia burgdorferi sp. Nov. etiologic agent of Lyme disease. International Journal of Systematic Bacteriology, v. 34, p. 496, 1984. JONSSON, N. N. The producyivity effects of cattle tick (Boophilus microplus) infestation on cattle, with particular reference to Bos indicus and their crosses. Veterinary Parasitology, v. 137, n. 1-2, p. 1-10, 2006. JOPPERT, A. M. Estudo soro-epidemiológico da infecção por Borrelia burgdorferi em cães da região de Cotia, São Paulo. Dissertação de Mestrado, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia-Universidade de São Paulo, São Paulo. 83p, 1995. JWANG, B.; DEWING, P.; FIKRIG, E.; FLAVELL, R. A. The Hook Protein of Borrelia burgdorferi, Encoded by the flgE Gene, Is Serologically Recognized in Lyme Disease. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology, v. 2, n. 5, p. 609–615, 1995. KANO, F. S., VIDOTTO, O., PACHECO, R. C., VIDOTTO, M. C. Antigenic characterization of Anaplasma marginale isolates from different regions of Brazil. Veterinary Microbiology, v. 87, n. 2, p. 131–138, 2002. KARCH H., HUPPERTZ H.I., BÖHME M., SCHMIDT H., WIEBECKE D. & SCHWARZKOFF A. Demonstration of Borrelia burgdorferi DNA in urine samples from healthy humans whose sera contain B.burgdorferi-specific antibodies. Journal of Clinical Microbiology, v. 32, n. 9, p. 2312-2314, 1994. KAWABATA, H., MASUZAWA, T.; YANAGIHARA, Y. Genomic analysis of Borrelia japonica sp. nov. isolated from Ixodes ovatus in Japan. Microbiology and Immunology, v. 37, n. 11, p. 843–848, 1993. KESSLER, R.H.; MADRUGA, C.R.; SCHENK, M.A.M.; RIBEIRO, O.C. Babesiose cerebral por Babesia bovis (Babes, 1888; Starcovici, 1893) em bezerros, no estado de Mato Grosso do Sul. Pesquisa Agropecuaria Brasileira, v. 18, n. 8, p. 931-935, 1983. KESSLER, R. H.; MADRUGA, C. R.; JESUS, E. F.; SEMPREBOM, D. V. Isolation of pure strains of Babesia bovis and Babesia bigemina and Anaplasma marginale from cattle in an enzootic area, preliminary test. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 22, n. 7, p. 747-752, 1987. 79 KESSLER, R. H. Considerações sobre a transmissão de Anaplasma marginale. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 21, n. 4, p. 177-179, 2001. KIESER, S. T., ERIKS, I. E., PALMER, G. H. Cyclic rickettsemia during persistent Anaplasma marginale infection in cattle. Infection and Immunity, v. 58, n. 4, p. 1117–1119, 1990. KIM, C.; ISEKI, H.; HERBAS, M. S.; YOKOYAMA, N.; SUZUKI, H.; XUAN, X.; FUJISAKI, K.; IGARASHI, I. Development of Taqman-Based Real-Time PCR Assays for Diagnostic Detection of Babesia bovis and Babesia bigemina. American Journal of Tropical Medicine and Hygie, v. 77, n. 5, p. 837–841, 2007. KNOWLES, D. P.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; PALMER, G.; MCGUIRE, T.; STILLER, D.; MCELWAIN, T. Antibody against an Anaplasma marginale MSP5 epitope common to tick and erythrocyte stages identifies persistently infected cattle. Journal of Clinical Microbiology, v. 34, n. 9, p. 2225-2230, 1996. KOCAN, K. M.; GOFF, W. L.; STILLER, D.; CLAYPOOL, P. L.; EDWARDS, W.; EWING, S. A.; HAIR, J. A.; BARRON, S. J. Persistence of Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae) in male Dermacentor andersoni (Acari: Ixodidae) transferred successively from infected to susceptible cattle. Journal of Medical Entomology, v. 29, n. 4, p. 657–668, 1992a. KOCAN, K. M.; STILLER, D.; GOFF, W. L.; CLAYPOOL, P. L.; EDWARDS, W.; EWING, S. A.; MCGUIRE, T. C.; HAIR, J. A.; BARRON, S. J. Development of Anaplasma marginale in male Dermacentor andersoni transferred from infected to susceptible cattle. American Journal of Veterinary Research, v. 53, n. 4, p. 499–507, 1992b. KOCAN, K. M., DE LA FUENTE, J., GUGLIELMONE, A. A., MELENDÉZ, R. D. Antigens and alternatives for control of Anaplasma marginale infection in cattle. Clinical Microbiology Reviews, v. 16, n. 4, p. 698–712, 2003. KOCAN, K.M., DE LA FUENTE, J., BLOUIN, E.F., GARCIA-GARCIA, J.C. Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae): recent advances in defining host-pathogen adaptations of a tick-borne rickettsia. Parasitology, v. 129, n. 1, p. S285–S300, 2004a. KOCAN, K.M., DE LA FUENTE, J.C., GOLSTEYN THOMAS, E.J., VAN DEN BUSSCHE, R.A., HAMILTON, R.G., TANAKA, E.E., DRUHAN, S.E., KOCAN, K.M. Recent studies on the characterization of Anaplasma marginale isolated from North American bison. Annals New York Academy of Sciences, v. 1026, n. 1, p. 114–117, 2004b. KOCAN, K.M.; DE LA FUENTE, J.C.; BLOUIN, E. F.; COETZEE, J. F.; EWING, S. A. The natural history of Anaplasma marginale. Veterinary Parasitology, v. 167, n. 2-4, p. 95–107, 2010. KRIEG, N. R.; HOLT, J. G. Bergey’s Manual of Sitematic Bacteriology. 8. ed. v. 1, Baltimore: Williams e Wilkins, 1984. 2255 p. KUTTLER, K. L. Anaplasma infections in wild and domestic ruminants: a review. Journal of Wildlife Diseases, v. 20, n. 1, p. 12–20, 1984. 80 KUTTLER, K. L. ―Bovine Babesiosis.‖ In Foreign Animal Diseases ―The gray Book‖ - 1998. Disponívelem:<http://www.cesa.net/library/Foreign%20Animal%20Diseases-The%20Gray% 20Book-1998-6th%20Edition.pdf> Acesso em: 15 nov. 2010. LANE, R. S.; BURGDORFER, W. Transovarial and transstadial passage of Borrelia burgdorferi in the western black-legged tick, Ixodes pacificus (Acari: Ixodidade). American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 37, n. 1, p. 188-192, 1987. LANE, R. S.; MANWEILER, S. A. Borrelia coriaceae its tick vector, Ornithodorus coriaceus (Acari: Argasidae) with emphasis on transstadial and transovarial infections. Journal of Medical Entomology, v. 25, n. 3, p. 172-177, 1988. LAÚ, H. D. Doenças em búfalos no Brasil – Diagnóstico, epidemiologia e controle. Belém: Embrapa, 1999. 202p. LE FLECHE, A.; POSTIC, D.; GIRARDET, K.; PETER, O.; BARANTON, G. Characterization of Borrelia lusitaniae sp. nov. by 16S ribosomal DNA sequence analysis. International Journal of Systematic Bacteriology, v. 47, n. 4, p. 921–925, 1997. LEW, A. E.; BOCK, R. E.; MINCHIN, C. M.; MASAKA, S. A msp1α polymerase chain reaction assay for specific detection and differentiation of Anaplasma marginale isolates. Veterinary Microbiology, v. 86, n. 4, p. 325–335, 2002. LEW, A.; JORGENSEN, W. Molecular approaches to detect and study the organisms causing bovine tick borne diseases: babesiosis and anaplasmosis. African Journal of Biotechnology, v. 4, n. 4, p. 292-302, 2005. LIANG, F. T.; YAN, J.; MBOW, M. L.; SVIAT, S. L.; GILMORE, R. D.; MAMULA, M.; FIKRIG, E. Borrelia burgdorferi Changes Its Surface Antigenic Expression in Response to Host Immune Responses. Infection and Immunity, v. 72, n. 10, p. 5759-5767, 2004. LIU, Z.; ZHAO, J.; MA, L.; YAO, B. Babesia orientalis sp. nov., a parasite of buffaloes (Bubalus bubalis) in China. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, v. 28, n. 1, p. 84-89, 1997. LINHARES, G. F. C.; SANTANA, A. P.; LAUEMAN, L. H.; MADRUGA, C. R. Assessment of iniciadores designed from the small ribosomal subunit RNA for specific discrimination between Babesia bigemina and Babesia bovis by PCR. Ciência Animal Brasileira, v. 3, n. 2, p. 27-32, 2002. LOPES, C. W. G. Ocorrência de protófitas em ruminantes e suínos domésticos, ainda não descritos no Brasil. Dissertação de Mestrado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. 52p., 1976. LÖHR, C. V.; RURANGIRWA, F. R.; MCELWAIN, T. F.; STILLER, D.; PALMER, G. H. Specific expression of Anaplasma marginale major surface protein 2 salivary gland variants occurs in the midgut and is an early event during tick transmission. Infection and Immunity, v. 70, n. 1, p. 114–120, 2002. 81 LOWRY, O. H.; ROSERBROUGH, N. J.; FARR, A. L.; RANDALL, R. J. Protein Measurement with the Folin Phenol Reagent. The Journal of Biological Chemistry, v. 193, n. 2, p. 265-275, 1951. MCCOSKER, P. J. The global importance of babesiosis. In M RISTIC, J. P. Krier (eds), Babesiosis. New York: Academic Press, 1981. p. 1-24. MADRUGA, C. R.; GOMES, R. F.; SCHENK, M. A. M. Etiologia de algumas doenças de bezerros de corte no estado de Mato Grosso do Sul. Campo Grande: Embrapa-CNPGC, 1984. 27p. (Circular Técnica 15) MADRUGA, C. R.; KESSLER, R. H.; SCHENK, M. A. M.; LIMA, J. G.; GOMES, R. C. C.; BERNE, M. E. A. Diagnóstico da tristeza parasitária bovina no estado do Mato Grosso do Sul: Inquérito de opinião. Campo Grande: Embrapa-CNPGC, 1986. 32p. (Circular Técnica 18) MADRUGA, C. R.; HONER, M. R.; ANDREOTTI, R.; ARAÚJO, F. R.; SANTARÉM, V. Simulação e sorologia no mapeamento da instabilidade endêmica das babesioses: um estudo nas regiões do Boqueirão e Cariri, estado da Paraíba. In: SEMINÁRIO BRASILEIRO DE PARASITOLOGIA VETERINÁRIA. Anais... Londrina, 1993. MADRUGA, C. R.; ARAÚJO, F. R.; MARQUES, A. P. C.; CARVALHO, C. M. E.; CUSINATO, F. Q.; CROSSI, A. J.; KESSLER, R. H.; MIGUITA, M. Desenvolvimento de uma prova de imunoadsorção enzimática para detecção de anticorpos conta Babesia bovis. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 4, p. 167-170, 2000a. MADRUGA, C. R.; MARQUES, A. P. C.; LEAL, C. R. B.; CARVALHO, C. M. E.; ARAÚJO, F. R.; KESSLER, R. H. Evaluation of enzyme-linked immunosorbent assay to detect antibodies against Anaplasma marginale. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 3, p. 109-112, 2000b. MADRUGA, C. R.; MARQUES, A. P. C.; ARAÚJO, F. R.; MIGUITA, M.; CARVALHO, C. M. E.; ARAÚJO, F. S.; UMAKI, A. C. S.; CROSSI, A. J.; QUEIRÓZ, R. A. Evaluation of an ELISA for detection of antibodies to Babesia bigemina in cattle and it‘s application in an epidemiological survey in Brazil. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 21, n. 2, p. 72-76, 2001. MADUREIRA, R. C. Frequência de anticorpos homólogos anti-Borrelia burgdorferi em equinos dos municípios de Três Rios, Vassouras e Valença, estado do Rio de Janeiro. 2004. 40f. Dissertação de Mestrado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. MADUREIRA, R. C. Sorologia para Borrelia burgdorferi para equinos do estado do Pará e caracterização genotípica de isolados de Borrelia spp. 2007. 73f. Tese Doutorado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. MAGNARELLI, L. A.; MEEGAN, J. M.; ANDERSON, J. F.; CHAPPELL, W. A. Comparison of an indirect fluorescent-antibody test with an enzyme-linked immunosorbent assay for serological studies of Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 20, n. 2, p. 181-184, 1984. 82 MAGNARELLI, L. A.; ANDERSON, J. F.; JOHNSON, R. C. Cross-reactivity in Serological Tests for Lyme Disease and Other Spirochaetal Infections. The Journal of Infectious Disease, v. 156, n. 1, p. 183-187, 1987. MAGNARELLI, L. A.; ANDERSON, J. F. Ticks and biting insects infected with the etiologic agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi. Journal of Clinical Microbiology, v. 26, n. 8, p. 1482-1486, 1988. MAGNARELLI, L. A.; MILLER, J. N.; ANDERSON, J. F.; RIVIERE, G. R. Cross-reactivity of nonspecific treponemal antibody in serologic tests for Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 28, n. 6, p.1276-1279, 1990. MAGNARELLI, L. A.; FLAVELL, R. A.; PADULA, S. J.; ANDERSON, J. F.; FIRKRIG, E. Serologic diagnosis of canine and equine borrelioses: use of recombinant antigens in enzyme-linked immunosorbent assays. Journal of Clinical Microbiology, v. 35, n. 1, p. 169-173, 1997. MAGNARELLI, L. A.; ANDERSON, J. F. Enzyme-linked immunosorbent assays for the detection of class-specific immunoglobulins to Borrelia burgdorferi. American Journal of Epidemiology, v. 127, n. 4, p. 818-825, 1998. MAGNARELLI, L. A.; BUSHMICH, S. L.; SHERMAN, B. A.; FIKRIG, E. A comparison of serologic tests for the detection of serum antibodies to whole-cell and recombinant Borrelia burgdorferi antigens in cattle. The Canadian Veterinary Journal, v. 45, n. 8, p. 667-674, 2004. MAGNARELLI, L. A.; WILLIAMS, S. C.; FIKRIG, E. Seasonal prevalence of serum antibodies to whole cell and recombinant antigens of Borrelia burgdorferi and Anaplasma phagocytophilum in white-tailed deer in Connecticut. Journal of Wildlife Diseases, v. 46, n. 3, p. 781–790, 2010. MAHONEY, D. F.; ROSS, D. R. Epizootiological factors in the control of bovine babesiosis. Australian Veterinary Journal, v. 48, n. 5, p. 292-298, 1972. MANTOVANI, E., COSTA, I. P., GAUDITANO, G., BONOLDI, V. L., HIGUCHI, M. L., YOSHINARI, N. H. Description of Lyme disease-like syndrome in Brazil. Is it a new tick borne disease or Lyme disease variation? Brazilian Journal Medical Biology Reearch, v. 40, n.1, p. 443-56, 2007. MANTOVANI, E. Identificação do agente etiológico da Doença de Lyme-símile brasileira (Síndrome Baggio-Yoshinari). 2010. 117f. Tese Doutorado, Universidade de São Paulo, São Paulo. MARANA, E. R. M.; DIAS, J. A.; FREIRE, R. L.; VICENTINI, J. C.; VIDOTTO, M. C.; VIDOTTO, O. Soroprevalência de Anaplasma marginale em bovinos da região Centro-Sul do estado do Paraná, Brasil, por um teste imunoenzimático competitivo utilizando proteína recombinante MSP5-PR1. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 18, n. 1, p. 20-26, 2009. MARCONI, R. T.; LIVERIS, D.; SCHWARTZ, I. Identification of novel insertion elements, restriction fragment length polymorphism patterns, and discontinuous 23S rRNA in Lyme 83 disease spirochetes: phylogenetic analyses of rRNA genes and their intergenic spacers in Borrelia japonica sp. nov. and genomic group 21038 (Borrelia andersonii sp. nov.) isolates. Journal of Clinical Microbiology, v. 33, n. 9, p. 2427–2434, 1995. MARTINS, J. R.; CERESER, V. H.; CORREA, B. L.; SMITH, R. D. Borrelia theileri: observação em carrapatos do gênero Boophilus microplus no município de Guaíba, RS, Brasil. Ciência Rural, v. 26, n. 3, p. 447-450, 1996. MASUZAWA, T.; TAKADA, N.; KUDEKEN, M.; FUKUI, T.; YANO, Y.; ISHIGURO, F.; KAWAMURA, Y.; IMAI, Y.; EZAKI, T. Borrelia sinica sp. nov., a Lyme disease-related Borrelia species isolated in China. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 51, n. 1, p. 1817–1824, 2001. MATHER, T. N.; FISH, D.; COUGHLIN, R. T. Competence of dogs as reservoirs for Lyme disease spirochetes (Borrelia burgdorferi). Journal of American Veterinary Medicine Association, v. 205, n. 2, p. 186-188, 1994. MATHIAS, L. A.; CHAVES, L. F.; GÍRIO, R. J. S.; DEL FAVA, C. Avaliação de um teste imunoenzimático competitivo no diagnóstico sorológico da brucelose em búfalos (Bubalus bubalis). Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 18, n. 3-4, p. 111-114, 1998. MATTON, P.; MELCKEBEKE, H. V. Bovine borrelioses: comparison on simple methods for detection of spirochaete in the blood. Tropical Animal Health Production, v. 22, n. 3, p. 147-152, 1990. MAY, C.; BENNET, D.; CARTER, S. D. Lyme disease in the dogs. The Veterinary Record, v. 126, n. 12, p. 293, 1990. MCELWAIN, T. F.; HINES, S. A.; PALMER, G. H. Persistence of antibodies against epitopes encoded by a single gene copy of the Babesia bovis merozoite surface antigen 1 (MSA-1). The Journal of Parasitology, v. 84, n. 2, p. 449-452, 1998. MELO, E. S. P.; ARAÚJO, F. R.; RAMOS, C. A. N.; SOARES, C. O.; ROSINHA, G. M. S.; ELISEI, C.; MADRUGA, C. R. ELISA com MSP5 recombinante truncada para detecção de anticorpos contra Anaplasma marginale em bovinos. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 27, n. 7, p. 301-306, 2007. MIRANPURI, G. S. Tick parasitising the Indian buffalo (Bubalus bubalis) and their possible role in disease transmission. Veterinary Parasitology, v. 27, n. 3-4, p. 357-362, 1988. MISHRA, A. K., REDDY, G. G. B.; RAO, J. R.; TEWARI, A. K. Detection of Babesia bigemina antibodies by Dot-Elisa in catlle and buffaloes. Acta Parasitologica, v. 43, n. 1, p. 43-45, 1998. MLADENOVIĆ, J.; CEKANAC, R.; STAJKOVIĆ, N.; KRSTIĆ, M. Risk of Lyme disease development after a tick bite. Vojnosanitetski Pregled, v. 67, n. 5, p. 369-74, 2010. MOLAD, T.; MAZUZ, M. L.; FLEIDEROVITZ, L.; FISH, L.; SAVITSKY, I.; KRIGEL, Y.; LEIBOVITZ, B.; MOLLOY, J. ; JONGEJAN, F.; SHKAP, V. Molecular and serological detection of A. centrale and A. marginale-infected cattle grazing within an endemic area. Veterinary Microbiology, v. 113, n. 1-2, p. 55–62, 2006. 84 MOLLOY, J. B.; BOWLES, P. M.; JESTON, P. J.; BRUYERES, A. G.; BOWDEN, J. M. Á; BOCK, R. E.; JORGENSEN, W. K.; BLIGHT, G. W.; DALGLIESH, R. J. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay for detection of antibodies to Babesia bigemina in cattle. Parasitology Research, v. 84, n. 8, p. 651-656, 1998. MOTALEB, M.; CORUM, L.; BONO, J.; ELIAS, A.; ROSA, P.; SAMUELS, D.; CHARON, N. Borrelia burgdorferi periplasmic flagella have both skeletal and motility functions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, v. 97, n. 20, p. 10899–10904, 2000. MOTER, S. E.; HOFMANN, H.; WALLISH, R.; SIMON, M. M.; KRAMER, M. D. Detection of Borrelia burgdorferi sensu lato in lesional skin of patients with erythema migrans and acrodermatitis chronic atrophicans by ospA-specific PCR. Journal of Clinical Microbiology, v. 32, n. 12, p. 2980-2988, 1994. MOURA, A. B.; VIDOTTO, O.; YAMAMURA, M. H.; VIDOTTO, M. C.; PEREIRA, A. B. Studies on the Anaplasma marginale Theiler, 1910 infection in Boophilus microplus (Canestrini, 1887) using ‗nested‘ PCR. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 12, n. 1, p. 27-32, 2003. MURALEEDHARAN, K.; SYED ZIAUDDIN, K.; GOPALASWAMY, K.; MURALEEDHAR, T.; SESHADRI, S. J. Some observations on clinical cases of Babesia bovis (Babes, 1888) Starcovici, 1893, in buffaloes (Bubalus bubalis). The Indian Veterinary Journal, v. 61, n. 1, p. 76-79, 1984. NEITZ, W. O. The transmission of Spirochaeta theileri to a Blesbuck (Damaliscus albifrons). Onderstepoort Journal of Veterinary Science and Animal Industry, v. 5, n. 1, p. 7, 1935. NDUNG‘U, L. W.; AGUIRRE, C.; RURANGIRWA, F. R.; MCELWAIN, T. F.; MCGUIRE, T. C.; KNOWLES, D.; PALMER, G. H. Detection of Anaplasma ovis infection in goats by major surface protein 5 competitive inhibition enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Clinical Microbiology, v. 33, n. 3, p. 675-679, 1995. NITHIKATHKUL, C.; POLSEELA, P.; CHANGSAP, B.; LEEMINGSAWAT, S. A Study of ixodid ticks on domestic animals in Samut Prakan Province, Thailand. Southeast Asian Journal Tropical Med Public Health, v. 33, supl. 3, p. 41-44, 2002. OBERLE, S. M.; PALMER, G. H.; BARBET, A. F. Expression and immune recognition of the conserved MSP4 outer membrane protein of Anaplasma marginale. Infection and Immunity, v. 61, n. 12, p. 5245-5251, 1993. OLEGARIO, L. A. O.; LIMA, R. F.; PICOLOTO, G.; FREITAS, A. S.; MADRUGA, C. R.; KESSLER, R. H.; ARAÚJO, F. R.; ROSINHA, G.; CRIADO-FORNELIO, A.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. Comparison of semi-nested PCR and real time PCR for detection of Babesia bovis and Babesia bigemina in cattle. Parassitologia, v. 49, supl. 1, p. 99, 2007. OLIVEIRA, A. A.; DE PEDREIRA, P. A. S.; ALMEIDA, M. F. R. Doenças de bezerros. II. Epidemiologia da anaplasmose no estado de Sergipe. Arquivos Brasileiros de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 44, n. 5, p. 377-386, 1992. 85 OLIVEIRA, M. C. S.; OLIVEIRA-SEQUEIRA, T. C. G. Aspectos epidemiológicos da babesiose bovina em São Carlos, SP. Comunicado Técnico Embrapa Pecuária Sudeste, São Carlos, 6p., n. 49, jun. 2004. Disponível em:<http://www.cppse.embrapa.br/servicos/publicac aogratuita/boletim-de-pesquisa-desenvolvimento> Acesso em: 03 nov 2010. OLIVEIRA, M. C. S.; OLIVEIRA, H. N.; REGITANO, L. C. A.; ALENCAR, M. M.; NÉO, T. A.; SILVA, A. M. Estudo da infecção Babesia bigemina em bovinos de corte e carrapatos. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento. Embrapa Pecuária Sudeste, São Carlos, 26p., dez. 2007. Disponível em: <http://www.cppse.embrapa.br/servicos/publicacaogratuita/boletim-de-pesquisa-desenvolvimento/boletim12.pdf/view> Acesso em: 03 nov 2010. OLIVEIRA-SEQUEIRA, T. C. G.; OLIVEIRA, M. C. S.; ARAUJO JR, J. P.; AMARANTE, A. F. T. PCR-based detection of Babesia bovis and Babesia bigemina in their natural host Boophilus microplus and cattle. International Journal for Parasitology, v. 35, n. 1, p. 105–111, 2005. OSAKI, S. C.; VIDOTTO, O.; MARANA, E. R. M.; VIDOTTO, M. C.; YOSHIHARA, E.; PACHECO, R. C.; IGARASHI, M.; MINHO, A. P. Ocorrência de anticorpos anti Babesia bovis e estudo sobre a infecção natural em bovinos da raça nelore na região de Umuarama, Paraná, Brasil. Revista Brasileira Parasitologia Veterinária, v. 11, n. 2, p. 77-83, 2002. PACHECO, R. C.; VIDOTTO, O.;TAMEKUNI, K.; IGARASHI, M.; KAWASAKI, P.; PRUDÊNCIO, L. B.; MARANA, E. R. M., LUZ PEREIRA, A. Dinâmica da infecção natural pelo Anaplasma marginale em vacas e bezerros da raça Holandesa, na região de Londrina, estado do Paraná. Semina: Ciências Agrárias, v. 25, n. 3, p. 235-244, 2004. PALMER, G. H.; RURANGIRWA, F. R.; MCELWAIN, T.F. Strain composition of the ehrlichia Anaplasma marginale within persistently infected cattle, a mammalian reservoir for tick transmission. Journal of Clinical Microbiology, v. 39, n. 2, p. 631–635, 2001. PARKER, J. L.; WHITE, K. W. Lyme borreliosis in cattle and horses: a review of the literature. Cornell Veterinary, v. 82, n. 3, p. 253-274, 1992. PATARROYO, J.H., VARGAS, M.I., BICUDO, P.L. Description of lesions in cattle in a natural outbreak of Babesia bovis infection in Brazil. Veterinary Parasitology, v. 11, n. 4, p. 301-308, 1982. PATARROYO, J. H.; HENCKEL, D. J.; PRATES, A. A.; MAFRA, C. L. Antigenic profile of a pure isolate of Anaplasma marginale of Brazilian origin, using a Western blot technique. Veterinary Parasitology, v. 52, n. 1-2, p. 129-137, 1994. PATARROYO, J. H., VARGAS, M. I., RIBEIRO, M. F. B.; SANTOS, J. L.; FARIA, J. E. Anaplasma marginale: ultraestrutura de uma amostra de origem brasileira. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 39, n.4, p. 839-847, 1987. PENZHORN, B. L. Babesiosis of wild carnivores and ungulates. Veterinary Parasitology, v. 138, n. 1-2, p. 11–21, 2006. PEREIRA, M. A. Dinâmica da infecção por Anaplasma marginale, Babesia bovis e Babesia bigemina em bezerras de propriedades leiteiras da microrregião de Lavras, Sul 86 de Minas Gerais. 2006. 71 f. Dissertação Mestrado, Universidade Federal de Lavras, Lavras, Minas Gerais. PFISTER, H. W.; WILSKE, B.; WEBER, K. Lyme borreliosis: basic science and clinical aspects. The Lancet, v. 343, n. 8904, p. 1013-1016, 1994. POST, J. E.; SHAW, E. E.; WRIGHT, S. Suspected borreliosis in cattle. Annals New York Academy of Sciences, v. 539, n. 1, p. 488, 1986. POSTIC, D.; RAS, N. M.; LANE, R. S.; HENDSON, M.; BARANTON, G. Expanded diversity among Californian B borrelia isolates and description of Borrelia bissettii sp. nov. (formerly Borrelia group DN127). Journal of Clinical Microbiology, v. 36, n. 12, p. 3497–3504, 1998. POSTIC, D.; GARNIER, M.; BARANTON, G. Multilocus sequence analysis of atypical Borrelia burgdorferi sensu lato isolates—description of Borrelia californiensis sp. nov., and genomospecies 1 and 2. International Journal of Medical Microbiology, v. 297, n. 4, p. 263–271, 2007. RAJPUT, Z. I.; HU, S.; ARIJO, A. G.; HABIB, M.; KHALID, M. Comparative study of Anaplasma parasites in tick carrying buffaloes and cattle. Journal of Zhejiang University Science, v. 6, n. 11, p. 1057–1062, 2005. RAMOS, C. A. N.; ARAÚJO, F. R.; SOUZA, I. I. F.; OLIVEIRA, R. H. M.; ELISEI, C.; SOARES, C. O.; SACCO, A. M. S.; ROSINHA, G. M. S.; ALVES, L. C. Molecular and antigenic characterisation of ribosomal phosphoprotein P0 from Babesia bovis. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 104, n. 7, p. 998-1002, 2009. RAMOS, C. A. N.; ARAÚJO, F. R.; SOUZA, I. I. F.; GUEDES JR, D. S.; OLIVEIRA, R. H. M.; FARIAS, T. A.; OLIVEIRA, J. B.; ALVES, L. C.; FAUSTINO, M. A. G. Comparação entre diversos antígenos para o diagnóstico de Anaplasma marginale por ELISA. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 30, n. 1, p. 37-41, 2010. REDDY, G. R.; MORE, T.; SHARMA, S. P.; SINGH, L. N. The oxidant defense system in water-buffaloes (Bubalus bubalis) experimentally infected with Anaplasma marginale. Veterinary Parasitology, v. 27, n. 3-4, p. 245-249, 1988. RIBEIRO, M. F. B.; REIS, R. Prevalência da Anaplasmose em quatro regiões do estado de Minas Gerais. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 33, n. 1, p. 57-62, 1981. RIBEIRO, M. F. B.; LIMA, J. D.; GUIMARÃES, A. M.; SCATAMBURLO, M. A.; MARTINS N. E. Transmissão congênita da anaplasmose bovina. Arquivo Brasileiro Medicina Veterinária Zootecnia, v. 47, n. 3, p. 297- 304, 1995. RIBEIRO, M. F. B.; LIMA, J. D. Morphology and development of Anaplasma marginale in midgut of engorged female ticks of Boophilus microplus. Veterinary Parasitology, v. 61, n. 1, p. 31- 39, 1996. 87 RIBEIRO, M. F. B.; PASSOS, L. M. F.; GUIMARÃES, A. M. Ultraestructure of Anaplasma marginale with an inclusion appendage, isolated in Minas Gerais State, Braszil. Veterinary Parasitology, v. 70, n. 4, p. 271- 277, 1997. RICH, S. M.; ARMSTRONG, P. M.; SMITH, R. D.; TELFORD III, S. R. Lone star tick-infecting Borreliae are most closely related to the agent of bovine Borreliose. Journal of Clinical Microbiology, v. 39, n. 2, p. 494-497, 2001. RICHEY, E. J. Bovine anaplasmosis. In: HOWARD, R.J. (Ed.), Current Veterinary Therapy Food Animal Practice. Philadelphia: THE W.B. SAUNDERS CO., 1981. p. 767–772. RICHTER, D.; POSTIC, D.; SERTOUR, N.; LIVEY, I.; MATUSCHKA, F. R.; BARANTON, G. Delineation of Borrelia burgdorferi sensu lato species by multilocus sequence analysis and confirmation of the delineation of Borrelia spielmanii sp. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 56, n. 4, p. 873–881, 2006. RISTIC, M. Anaplasmosis. In: WEINMAN, D.; RISTIC, M. Infectious Blood Diseases of Man and Animals. vol. 2. Academic Press, New York: London, 1968. p. 473-542. RISTIC, M., Bovine anaplasmosis. In: KREIER, J. P. Parasitic Protozoa. vol. 4. Academic Press, New York: London, 1977. p. 235–249. ROBERTS, R. H.; LOVE, J. N. Infectivity of Anaplasma marginale After Ingestion by Potential Insect Vectors. American Journal of Veterinary Research, v. 38, n. 10, p. 1629-1630, 1977. ROCHA, U. F.; SERRA, O. P.; GROCK, R.; SERRA, R. G. Infestação natural de búfalos – Bubalus bubalis L., 1758 – dos estados de São Paulo e de Minas Gerais, Brasil, por Boophilus microplus (Canestrini, 1997) e por Anocentor nitens (Neumann, 1897), Acari, Ixodidae. Arquivos do Instituto Biológico, v. 86, n. 4, p. 197-199, 1969. RODRIGUES, A.; RECH, R. R.; BARROS, R. R.; FIGHERA, R. A.; BARROS, C. S. L. Babesiose cerebral em bovinos: 20 casos. Ciência Rural, v.35, n.1, p.121-125, 2005. ROGERS, A. B.; SMITH, R. D.; KAKOMA, I. Serologic cross-reactivity of antibodies against Borrelia theileri, Borrelia burgdorferi and Borrelia coriaceae in cattle. American Journal of Veterinary Research, v. 60, n. 6, p. 694-697, 1999. ROSA, B. R. T.; FERREIRA, M. M. G.; AVANTE, M. L.; FILHO, D. Z.; MARTINS, I. S.; PICCININ, A. Introdução de búfalos no Brasil e sua aptidão leiteira. Revista Científica Eletrônica de Medicina Veterinária, v. 4, n. 8, 2007. Disponível em: <www.agricultura.gov.br>. Acesso em: 13 nov. 2010. ROYCHOUDHURY, G. K.; GAUTAM, O. P. Experimental studies on the pathogenicity of Babesia bigemina in buffalo calves. Tropical animal Health and Production, v. 11, n. 2, p. 91-93, 1987. RUDENKO, N.; GOLOVCHENKO, M.; GRUBHOFFER, L.; OLIVER JR, J. H. Borrelia carolinensis sp. nov., a new (14th) member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex 88 from the southeastern region of the United States. Journal of Clinical Microbiology, v. 47, n. 1, p. 134–141, 2009a. RUDENKO, N.; GOLOVCHENKO, M.; LIN, T.; GAO, L.; GRUBHOFFER, L.; OLIVER JR, J. H. Delineation of a New Species of the Borrelia burgdorferi sensu lato Complex, Borrelia americana sp. nov. Journal of Clinical Microbiology, v. 47, n. 12, p. 3875–3880, 2009b. RUIZ, P. M. G.; PASSOS, L. M. F.; MACHADO, R. Z.; LIMA, J. D.; RIBEIRO, M. F. B. Development of an Enzyme-linked Immunosorbent Assay for Detection of IgM Antibodies to Babesia bigemina in Cattle. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 96, n. 2, p. 237-240, 2001. RUIZ, P. M. G.; PASSOS, L. M. F.; MARTINS, M. S.; PATARROYO, J. H.; RIBEIRO, M. F. B. Antigenic characterization of morphologically distinct Anaplasma marginale isolates using a panel of monoclonal antibodies. Veterinary Parasitology, v. 107, n. X, p. 169-177, 2002. SACCO, A. M. S.; KESSLER, R. H.; MADRUGA, C. R. Cepas atenuadas de Babesia bovis e Babesia bigemina e de Anaplasma centrale como imunógenos no controle da tristeza parasitária bovina. Ciência Rural, v. 31, n. 5, p. 849-855, 2001. SAL, M. S.; LI, C.; MOTALAB, M. A.; SHIBATA, S.; AIZAWA, S.; CHARON, N. W. Borrelia burgdorferi uniquely regulates its motility genes and has an intricate flagellar hook-basal body structure. Journal of Bacteriology, v. 190, n. 6, p. 1912–1921, 2008. SALLES, R. S.; FONSECA, A. H.; SCOFIELD, A.; MADUREIRA, R. C., YOSHINARI, N. H. Sorologia para Borrelia burgdorferi latu sensu em equinos no estado do Rio de Janeiro. A Hora Veterinária, v. 22, n. 127, p. 46-49, 2002. SANGER, F.; NICKLEN, S.; COULSON, A. R. DNA sequencing with chainterminating inhibbitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, v. 74, n. 12, p. 5463- 5467, 1977. SARTOR, I. F.; FACCINI, J. L. H.; KUCHEMBUCK, M. R. G.; CURI, P. R. Estudo comparativo da resistência ao carrapato Boophilus microplus (Canestrini) (Acari) em bovinos das raças Gir, Holandesa e mestiços ½ gir-holandês. Veterinária e Zootecnia, v. 4, n. 1, p. 25-33, 1992. SCHILD, A. L.; RUAS, J. L.; FARIAS, N. A.; GRECCO, F. B.; SOARES, M. P. Aspectos epidemiológicos de um surto de babesiose cerebral em bovinos em zona livre de carrapato. Ciência Rural, v. 38, n. 9, p. 2646-2649, 2008. SCHUNTNER, C. A.; LEATCH, G. Radioimmunoassay for Anaplasma marginale antibodies in cattle. American Journal of Veterinary Research, v. 49, n. 4, p. 504-507, 1988. SCOFIELD, A.; MARQUES, C. C.; BARBOSA, J. D.; FONSECA, A. H. Ocorrência de Borrelia sp. em búfalo (Bubalus bubalis) no município de Castanhal, estado do Pará. In: V CONGRESSO BRASILEIRO DE BUIATRIA. 2005, Búzios. Anais…Búzios: 2005. p. 130. 89 SHARMA, S. P. Characterization of Anaplasma marginale infection in buffaloes. The Indian Journal of Animal Sciences, v. 57, n. 2, p. 76-78, 1987. SHARMA, S. P.; AMANFU, W.; LOSHO, T. C. Bovine borreliosis in Botswana. Onderstepoort Journal of Veterinary Research, v. 67, n. 3, p. 221-223, 2000. SHIMADA, M. K.; YAMAMURA, M. H.; KAWASAKI, P. M.; TAMEKUNI, K.; IGARASHI, M.; VIDOTTO, O.; VIDOTTO, M. C. Detection of Anaplasma marginale DNA in Larvae of Boophilus microplus Ticks by Polymerase Chain Reaction. Annals New York Academy of Sciences, v. 1026, n. 1, p. 95–102, 2004. SILVA, V. M. G.; ARAÚJO, F. R.; MADRUGA, C. R. M.; SOARES, C. O.; KESSLER, R. H.; ALMEIDA, M. A. O.; FRAGOSO, S. P.; SANTOS, L. R.; RAMOS, C. A. N.; BACANELLI, G.; TORRES JÚNIOR, R. A. A. Comparison between indirect enzyme-linked immunosorbent assays for Anaplasma marginale antibodies with recombinant major surface protein 5 and initial body antigens. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 101, n. 5, p. 511-516, 2006. SILVA, M. A. M.L; RONCONI, A.; CORDEIRO, N.; BOSSI, D. E. P.; BERGALLO, H. G.; COSTA, M. C. C.; BALIEIRO, J. C. C.; VARZIM, F. L. S. B. Blood parasites, total plasma protein and packed cell volume of small wild mammals trapped in three mountain ranges of the Atlantic Forest in Southeastern Brazil. Brazilian Journal of Biology, v. 67, n. 3, p. 531-535, 2007a. SILVA, R. A.; CORRÊA, F. N.; BOTTEON, R. C. C. M.; BOTTEON, P. T. L. Infecção Natural por Hemoparasitos em bezerros submetidos à quimio-profilaxia aos 30 dias de idade. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 16, n. 3, p. 163 - 165, 2007b. SINGH, H., MISHRA, A. K., RAO, J. R., TEWARI, A. K. Seroprevalence of babesiosis in cattle and buffaloes by indirect fluorescent antibody test. Journal of Veterinary Parasitology, v. 21, n. 1, p. 1-4, 2007. SMITH, T.; KILBORNE, F. L. Investigation into the nature causation and prevention of Texas or Southern cattle fever. Bulletin 1. Washington: USDA, 1893. 301 p. SMITH, R. D.; BRENER, J.; OSORNO, M.; RISTIC, M. Pathobiology of Borrelia theileri in the tropical cattle tick, Boophilus microplus. Journal of Invertebrate Pathology, v. 32, n. 2, p. 182-190, 1978. SMITH, R. D.; MIRANPURI, G. S.; ADAMS, J. H.; AHRENS, E. H. Borrelia theileri: Isolation from ticks (Boophilus microplus) and tick–borne transmission between splenectomized calves. American Journal Veterinary Research, v. 46, n. 6, p. 1396-1398, 1985. SMITH, R. D.; ROGERS, A. B. Borrelia theileri: A review. Journal of Spirochetal and Tick-borne Diseases, v. 5, n. 4, p. 63-68, 1998. SOARES, C. O.; FONSECA, A. H.; ISHIKAWA, M. M.; MANERA, G. B.; SCOFIELD, A.; YOSHINARI, N. H. Sorologia para borreliose em cães procedentes da Baixada Fluminense, estado do Rio de Janeiro. Revista Brasileira de Medicina Veterinária, v. 21, n. 3, p. 111-114. 1999. 90 SOARES, C. O.; ISHIKAWA, M. M.; FONSECA, A. H.; YOSHINARI, N. H. Borrelioses, agentes e vetores. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 1, p. 1-19, 2000a. SOARES, C. O.; SOUZA, J. C. P.; MADRUGA, C. R.; MADUREIRA, R. C.; MASSARD, C. L.; FONSECA, A. H. Soroprevalência de Babesia bovis em bovinos na região Norte Fluminense. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 2, p. 75-79, 2000b. SOOD, S. K.; ZEMEL, L. S.; ILOWITE, N. T. Interpretation of immunoblot in pediatric Lyme arthritis. The Journal of Rheumatology, v. 22, n. 4, p. 758-761, 1995. SOUZA, J. C. P.; SOARES, C. O.; MASSARD, C. L.; SCOFIELD, A.; FONSECA, A. H. Soroprevalência de Anaplasma marginale em bovinos na mesorregião Norte Fluminense. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 3, p. 97-101, 2000a. SOUZA, J. C. P.; SOARES, C. O.; MASSARD, C. L.; SCOFIELD, A.; MADRUGA, C. R.; CUNHA, N. C.; MASSARD, C. L.; FONSECA, A. H. Soroprevalência de Babesia bigemina em bovinos na mesorregião Norte Fluminense. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 20, n. 1, p. 26-30, 2000b. SOUZA, A. P.; SURKAMP, V.; BELLATO, V.; SARTOR, A. A.; FARIAS, L. M. Prevalência de anticorpos anti-Babesia em bovinos no planalto norte de Santa Catarina. Revista de Ciência Agroveterinária, v. 1, n. 1, p. 21-23, 2002. STARCOVICI, C. Bemerkungen u¨ber den durch Babes entdeckten Blutparasiten und die durch denselben hervorgebrachten Krakheiten, die seuchenhafte Ha¨moglobinurie des Rindes (Babes), dans Texasfieber (Th. Smith) und der Carceag der Schafe (Babes). Zbl. Bakt., I. Abt., v. 14, p. 1–8, 1893. STARKE, W. A.; ROCHA, U. F.; MACHADO, R. Z.; ZOCOLLER, M. C. Prevalence and intensity of infestation by Boophilus microplus (Canestrini, 1887), under natural conditions, in buffalos in Mato Grosso do Sul State, Brazil. In: CONFERENCE OF THE WORLD ASSOCIATION FOR THE ADVANCEMENT OF VETERINARY PARASITOLOGY, 1985, Rio de Janeiro. Anais… Rio de Janeiro: Colégio Brasileiro de Parasitologia Veterinária, 1985. p. 10. STARKE, W. A.; EVANGELISTA, F. M. M.; ZOCOLLER, M. C. Comparative study of the natural infestion by Boophilus microplus tick between buffalo and cattle. In: WORLD BUFALLO CONGRESS, 1994, São Paulo. Anais…São Paulo: 1994. p. 102, 1994. STEERE, A. C.; MALAWISTA, S. E.; HARDIN, J. A.; RUDDY, S.; ASKENASE, P. W.; ANDINAN, W. A. Erythema chronicum migrans and Lyme arthritis. The enlarging clinical spectrum. Annals of Intern Medicine, v. 86, n. 6, p. 685, 1977a. STEERE, A. C.; MALAWISTA, S. E.; SNYDMAN, D. R.; SHOPE, R. E.; ANDINAN, W. A.; ROSS, M. R.; STEERE, R. M. Lyme arthritis: an epidemic of oligoarticular arthritis in children and adults in three Connecticut communities. The Arthritis Rheumatology, v. 20, n. 1, p. 7, 1977b. STEERE, A. C.; GRODZICKI, R. L.; KORNBLATT, A. N. The spirochaetal etiology of Lyme disease. The New England Journal of Medicine, v. 308, n. 13, p. 733-740, 1983. 91 STEERE, A. C. Lyme disease. The New England Journal of Medicine, v. 345, n. 2, p. 115-125, 2001. STICH, R.W.; KOCAN, K. M.; PALMER, G. H.; EWING, S. A.; HAIR, J. A.; BARRON, S. J. Transstadial and attempted transovarial transmission of Anaplasma marginale by Dermacentor variabilis. The American Journal Veterinary Research, v. 50, n. 8, p. 1377-1380, 1989. STEVENSON, B.; EL-HAGE, N.; HINES, M.; MILLER, J.; BABB, K. Differential binding of host complement inhibitor factor H by Borrelia burgdorferi Erp surface proteins: a possible mechanism underlying the expansive host range of Lyme disease spirochetes. Infection and Immunity, v. 70, n. 2, p. 491–497, 2002. SUAREZ, C. E.; PALMER, G. H.; JASMER, D. P.; HINES, S. A.; PERRYMAN, L. E.; MCELWAIN, T. F. Characterization of the gene encoding a 60-kilodalton Babesia bovis merozoite protein with conserved and surface exposed epitopes. Molecular and Biochemical Parasitology, v. 46, n. 1, p. 45-52, 1991. SUAREZ, C. E.; MCELWAIN, T. F.; ECHAIDE, I.; TORIONI DE ECHAIDE, S. T.; PALMER, G. H. Interstrain conservation of Babesia RAP-1 surface-exposed B-cell epitopes despite rap-1 genomic polymorphism. Infection and Immunity, v. 62, n. 8, p. 3576-3579, 1994. SUAREZ, C. E.; PALMER, G. H.; FLORIN-CHRISTENSEN, M.; HINES, S. A.; HOTZEL, I.; MCELWAIN, T. F. Organization, transcription, and expression of rhoptry associated protein genes in the Babesia bigemina rap-1 locus. Molecular and Biochemical Parasitology, v. 127, n. 2, p. 101-112, 2003. SWELLENGREBEL, N. H. Sur la cytologie comparée des spirochètes et des spirilles. Annales de l'Institut Pasteur, v. 21, p. 562-586, 1907. TEBELE, N.; PALMER, G.H. Crossprotective immunity between the Florida and a Zimbabwe stock of Anaplasma marginale. Tropical Animal Health Production, v. 23, n. 4, p. 197–202, 1991. THEILER, A. Anaplasma marginale (gen. and spec. nov.): the marginal points in the blood of cattle suffering from a specific disease. Report of the Government Veterinary Bacteriologist for the year 1908-1909. Pretoria : Government Printing and Stationary Office, 1910. 7-64 p. THOEN, C. O.; BLACKBURN, B.; MILLS, K.; LOMME, J.; HOPKINS, M. P. Enzyme-linked immunosorbent assay for detecting antibodies in cattle in a herd in which anaplasmosis was diagnosed. Journal of Clinical Microbiology, v. 11, n. 5, p. 499-502, 1980. TORINA, A.; AGNONE, A.; SIRECI, G.; MOSQUEDA, J. J.; BLANDA, V.; ALBANESE, I.; LA FARINA, M.; CERRONE, A.; CUSUMANO, F.; CARACAPPA, S. Characterization of the Apical Membrane Antigen-1 in Italian Strains of Babesia bigemina. Transboundary and Emerging Diseases, v. 57, n. 1-2, p. 52–56, 2010. TORIONI DE ECHAIDE, S.; KNOWLES, D. P.; MCGUIRE, T. C.; PALMER, G. H.; SUAREZ, C. E.; MCELWAIN, T. F. Detection of Cattle Naturally Infected with Anaplasma 92 marginale in a Region of Endemicity by Nested PCR and Competitive Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Using Recombinant Major Surface Protein 5. Journal of Clinical Microbiology, v. 36, n. 3, p. 777-782, 1998. TRINDADE, H. I.; SILVA, G. R. A.; TEIXEIRA, M. C. A.; SOUSA, M. G.; MACHADO, R. Z.; FREITAS, F. L. C.; ALMEIDA, K. S. Detection of antibodies against Babesia bovis and Babesia bigemina in calves from the region of Araguaína, State of Tocantins, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 19, n. 3, p. 169-173, 2010. UILENBERG, G. Highlights in recent research on tick-borne disease of domestic animals. The Journal of Parasitology, v. 72, n. 4, p. 485-491. 1986. UILENBERG, G. Babesia-A historical overview. Veterinary Parasitology, v. 138, n. 1-2, p. 3–10, 2006. VIDOTTO, O.; ANDRADE, G. M.; AMARAL, C. H. S.; BARBOSA, C. S.; FREIRE, R. L.; ROCHA, M. A.; VIDOTTO, M. C. Frequência de anticorpos contra Babesia bigemina, B. bovis e Anaplasma marginale em rebanhos leiteiros da região de Londrina, Paraná. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 45, n. 5, p. 655-659, 1997. VIDOTTO, M. C.; VIDOTTO, O.; ANDRADE, G. M.; PALMER, G.; MCELWAIN, T.; KNOWLES, D. P. Seroprevalence of Anaplasma marginale in cattle in Paraná State, Brazil, by MSP-5 competitive ELISA. Annals of New York Academy of Sciences, v. 849, n. 1, p. 424-426, 1998. VIDOTTO, O.; MARANA, E. R. M. Diagnóstico em anaplasmose bovina. Ciência Rural, v. 31, n. 2, p. 361-368, 2001. VISSER, E. S.; MCGUIRE, T. C.; PALMER, G. H.; DAVIS, W. C.; SHKAP, V.; PIPANO, E.; KNOWLES, D. P. The Anaplasma marginale msp5 gene encodes a 19-kilodalton protein conserved in all recognized Anaplasma species. Infection and Immunity, v. 60, n. 12, p. 5139–5144, 1992. VIVAS, R. I. R.; AGUILAR, F. C.; ALPIZAR, J. L. D.; GALERA, L. A. C.; CALDERÓN, J. J. S. Detección de espiroquetas del género Borrelia en hemolinfas de teleoginas de Boophilus microplus en el estado de Yucatán, México. The Veterinaria México, v.27, n. 2, p. 187-188, 1996. WANG, G.; VAN DAM, A. P.; LE FLECHE, A.; POSTIC, D.; PETER, O.; BARANTON, G.; DE BOER, R.; SPANJAARD, L.; DANKERT, J. Genetic and phenotypic analysis of Borrelia valaisiana sp. nov. (Borrelia genomic groups VS116 and M19). International Journal of Systematic Bacteriology, v. 47, n. 4, p. 926–932, 1997. WELLS, S. J.; TRENT, A. M.; ROBINSON, R. A.; KNUTSON, K. S.; BE, R. F. Association between clinical lameness and Borrelia burgdorferi antibody in dairy cows. American Journal Veterinary Research, v. 54, n. 3, p. 398-405, 1993. WILKOWSKY, S. E.; FARBER, M.; ECHAIDE, I.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; ZAMORANO, P. I.; DOMINGUEZ, M.; SUAREZ, C. E.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. Babesia bovis merozoite surface protein-2c (MSA-2c) contains highly immunogenic, 93 conserved B-cell epitopes that elicit neutralizationsensitive antibodies in cattle. Molecular and Biochemical Parasitology, v. 127, n. 2, p. 133-141, 2003. WILLADSEN, P. Mechanisms and genetics of host resistance to ticks. In: PROC. 3RD WORLD CONGRESS GENETICS APPLIED TO LIVESTOCK PRODUCTION, 1986, Lincon. Anais…Nebrasca, 1986. p. 571-580. WILSKE, B.; HABERMANN, C.; FINGLERLE, V.; HILLENBRAND, B.; JAURIS-HEIPKE, S.; LEHNERT, G.; PRADEL, I.; ROSSLER, D.; SCHOULTE-SPECHTEL, U. An improved recombinant IgG immunoblot for diagnosis of Lyme Borreliosis. The Medicine Microbiology and Immunology, v. 188, n. 3, p. 139-144, 1999. WRIGHT, I. G.; GOODGER, B. V.; BUFFINGTON, G. D.; CLARK, I. A.; PARRODI, F.; WALTISBUHL, D. J. Immunopathophysiology of babesial infections. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, v. 83, supl. 1, p.11-13, 1989. WRIGHT, I. G. Immunodiagnosis and immunoprophylaxis against the haemoparasites Babesia sp and Anaplasma sp in domestic animals. Revue Science Technology off International Epizootiology, v. 9, n. 2, p. 345-356, 1990. YOSHIHARA, E.; VIDOTTO, O.; YAMAMURA, M. H.; MARANA, E. R. M.; PACHECO, R.; SILVEIRA, A. P. Studies of natural infection with Anaplasma marginale in nelore cattle in the Umuarama municipality, Parana State, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 12, n. 1, p. 21-26, 2003. YOSHINARI, N. H.; STEERE, A. C.; COSSERMELLI, W. Revisão de borreliose de Lyme. Revista da Associação Médica Brasileira, v. 35, n. 1, p. 34-37, 1989. YOSHINARI, N. H.; OYAFUSO, L. K.; MONTEIRO, F. G. V.; BARROS, P. J. L.; CRUZ, F. C. M.; FERREIRA, L. G. E. BONASSER, F.; BAGGIO, D.; COSSERMELLI, W. Doença de Lyme: Relato de um caso observado no Brasil. Revista do Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina de São Paulo, v. 48, n. 4, p. 170-174, 1993a. YOSHINARI, N. H.; STEERE, A. C.; BARROS, P. J. L.; CRUZ, F. M. C.; MENDONÇA, M.; OYAFUSO, L. K.; LEVY, L.; COSSERMELLI, W. Lyme disease in Brazil: report of five cases. Revista Espanhola de Reumatologia, v. 20, supl. 1, p. 6, 1993b. YOSHINARI, N. H.; BARROS, P. J. L.; BONOLDI, V. L. N.; ISHIKAWA, M.; BATTESTI, D. M. B.; PIRANA, S.; FONSECA, A. H.; SCHUMAKER, T. T. Perfil da Borreliose de Lyme no Brasil. Revista do Hospital das Clinicas da Faculdade de Medicina de São Paulo, v. 52, n. 2, p. 111-117, 1997. YOSHINARI, N. H.; SOARES, C. O. FONSECA, A H.; SCOFIELD, A.; BATTESTI, D. B.; MADRUGA, C. R. Serology for Babesia bovis in human patients with Lyme-like disease syndrome, syphilis, septicemia and autoimmune diseases. In: XXI INTERNATIONAL CONGRESS OF ENTOMOLOGY, 2000, Foz do Iguaçu. Annals…Foz do Iguaçu: 2000. p. 820-820. YOSHINARI, N. H.; ABRÃO, M. G.; BONOLDI, V. L.; SOARES, C. O.; MADRUGA, C. R.; SCOFIELD, A.; MASSARD, C. L.; FONSECA, A. H. Coexistence of antibodies to tick- 94 borne agents of babesiosis and Lyme borreliosis in patients from Cotia county, State of São Paulo, Brazil. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 98, n. 3, p. 311-318, 2003. YOSHINARI, N. H.; MANTOVANI, E.; BONOLDI, V. L. N.; MARANGONI, R. G.; GAUDITANO, G. Doença de Lyme-símile brasileira ou Síndrome Baggio-Yoshinari: zoonose exótica e emergente transmitida por carrapatos. Revista da Associação Médica Brasileira, v. 56, n. 3, p. 363-369, 2010. ZARLENGA, D. S.; HIGGINS, J. PCR as a diagnostic and quantitative technique in veterinary parasitology. Veterinary Parasitology, v. 101, n. 3-4, p. 215-230, 2001. ZAUGG, J. L.; GOFF, W. L.; FOREYT, W.; HUNTER, D. L. Susceptibility of elk (Cervus elaphus) to experimental infection with Anaplasma marginale and A. ovis. Journal of Wildlife Diseases, v. 32, n. 1, p. 62–66, 1996. ZBINDEN, R.; GOLDENBERGER, D.; LUCCHINI, G. M.; ALTWEGG, M. Comparison of two methods for detecting intrathecal synthesis of Borrelia burgdorferi-specific antibodies and PCR for diagnosis of Lyme antibodies and PCR for diagnosis of Lyme neuroborreliosis. Journal of Clinical Microbiology, v. 32, n. 7, p. 1795-1798, 1994. ZHAN, L.; CHU, C.; ZUO, S.; WUA, X.; DUMLER, J. S.; JIA, N.; JIANG, B.; YANG, H.; CAO, W. Anaplasma phagocytophilum and Borrelia burgdorferi in rabbits from southeastern China. Veterinary Parasitology, v. 162, n. 3-4, p. 354–356, 2009. ZHONGLING, L., JUNLONG, Z. LIHUA, M.; BAOAN, Y. Studies on buffalo babesioses in Hubei Province, China. Tropical Animal Health and Production, v. 29, supl. 4, p. 33S-36S, 1997.https://tede.ufrrj.br/retrieve/9846/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/15956/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/22266/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/28652/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/35084/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/41466/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/47856/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/54282/2011%20-%20Fab%c3%adola%20do%20Nascimento%20Corr%c3%aaa.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/2704Submitted by Sandra Pereira (srpereira@ufrrj.br) on 2019-05-21T12:39:59Z No. of bitstreams: 1 2011 - Fabíola do Nascimento Corrêa.pdf: 1993334 bytes, checksum: 33d846d47a663ccd0a1d6afe81eba94b (MD5)Made available in DSpace on 2019-05-21T12:39:59Z (GMT). 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O crescente interesse econômico sobre a bubalinocultura tem estimulado pesquisas a respeito da saúde bubalina. O presente estudo teve como objetivo verificar a frequência sorológica e molecular dos agentes Borrelia burgdorferi, Babesia bigemina, Babesia bovis e Anaplasma marginale em búfalos do estado do Rio de Janeiro. Dezessete propriedades foram selecionadas, sendo pelo menos uma por microrregião com criatório bubalino no estado do Rio de Janeiro, nas quais o sangue dos bubalinos foi coletado por amostragem não probabilística. Foram utilizadas 316 amostras de soro e 295 amostras de DNA analisadas pelas técnicas de ELISA indireto e PCR, respectivamente. Para B. burgdorferi apenas as amostras de DNA dos 12 animais com maior soropositividade no ELISA foram submetidas à técnica de PCR. O teste sorológico revelou que 59,2% dos animais foram positivos para B. burgdorferi, 51,3% para B. bovis, 45,9% para B. bigemina e 42,0% para A. marginale. Não foi observada associação entre o sexo dos bubalinos e as frequências de animais positivos para todos os agentes (p>0,05), mas as fêmeas apresentaram maior capacidade de produção de IgG contra infecções por B. burgdorferi, B. bigemina e A. marginale (p<0,05). A idade dos animais mostrou influência sobre a frequência de animais soropositivos e a intensidade de resposta imune para todos os agentes, pois ambas aumentaram progressivamente até o animal atingir 36 meses de idade. A partir dos sete meses de idade, foram observados maiores índices de densidade óptica contra todos os agentes analisados, o que pode indicar o início da imunidade ativa. A PCR para amplificação do gene flgE de Borrelia sp., resultou em uma amostra positiva, cujo sequenciamento revelou 99% de homologia com B. burgdorferi. Para B. bigemina a técnica de PCR utilizada, com sensibilidade para detectar até 58 parasitos/μL de sangue, revelou apenas um animal positivo. A PCR utilizada nas análises para B. bovis, com sensibilidade para detectar até 21 parasitos/μL de sangue, não revelou nenhum positivo em um piloto inicial realizado com amostras de 36 bubalinos altamente soropositivos e 36 negativos no ELISA. A partir deste resultado, não foram testadas as demais amostras de DNA para B. bovis. A técnica de PCR para A. marginale foi eficiente para animais com até 7,33 parasitos/μL de sangue, revelando uma frequência de 5,42% (16/295) de bubalinos positivos. Para todos os agentes, não houve associação entre os resultados da sorologia e da PCR. O percentual de bubalinos do estado do Rio de Janeiro sororreagentes a B. burgdorferi e a existência de um búfalo PCR positivo para este agente sugerem a presença deste espiroquetídeo, ou outro similar antigênica e molecularmente, nesta população animal. Babesia bigemina, B. bovis e A. marginale estão presentes na população estudada, encontrando-se em baixas parasitemias, em grande parte não detectáveis pelas técnicas de PCR simples utilizadas. |
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CORRÊA, Fabíola do Nascimento. Estudo epidemiológico de Borrelia burgdorferi, Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale em búfalos (Bubalus bubalis) do Estado do Rio de Janeiro. 2011. 116 f. Tese (Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias) - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. |
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ABEL, I. S.; MARZAGÃO, G.; YOSHINARI, N. H.; SCHUMAKER, T. T. S. Borrelia-like spirochetes recovered from ticks and small mammals collected in the Atlantic Forest Reserve, Cotia county, state of São Paulo, Brazil. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 95, n. 5, p. 621-624, 2000. ABCB – Associação Brasileira de Criadores de Búfalos. Disponível em: <www.bufalo.com.br> Acesso em: 7 out. 2010. ALMERAULT, T. E.; ROBY, T. O. A rapid card agglutination test for bovine anaplasmosis. Journal of American Veterinary Medicine Association, v. 153, n. 12, p. 1828-1834, 1968. ALMERIA, S.; CASTELLÀ, J.; FERRER, D.; ORTUÑO, A.; ESTRADA-PEÑA, A.; GUTIÉRREZ, J.F. Bovine piroplasms in Minorca (Balearic Islands, Spain): a comparison of PCR-based and light microscopy detection. Veterinary Parasitology, v. 99, n. 3, p. 249–259, 2001. ALEKSHUN, M.; KASHLEV, M.; SCHWARTZ, I. Molecular cloning and characterization of Borrelia burgdorferi rpoB. Gene, v. 186, n. 2, p. 227–235, 1997. ALLEMAN, A. R., PALMER, G. H., MCGUIRE, T. C., MCELWAIN, T. F., PERRYMAN, L. E., BARBET, A. F. Anaplasma marginale major surface protein-3 (MSP-3) is encoded by a polymorphic multigene family. Infection and Immunity, v. 65, n. 1, p. 156–163, 1997. ALMEIDA, M. B.; TORTELLI, F. P.; RIET-CORREA, B.; FERREIRA, J. L. M.; SOARES, M. P.; FARIAS, N. A. R.; RIET-CORREA, F.; SCHILD, A. L. Tristeza parasitária bovina na região sul do Rio Grande do Sul: estudo retrospectivo de 1978-20051. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 26, n. 4, p. 237-242, 2006. ALTSCHUL SF, GISH W, MILLER W, MYERS EW, LIPMAN DJ. Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology, v. 215, n. 3, p. 403–10, 1990. ANDERSON, J. F. Mammalian and avian reservoirs for Borrelia burgdorferi. Annals New York Academy of Sciences, v. 25, n. 8, p. 1495-1497, 1988. ANTONIASSI, N. A. B.; CORRÊA, A. M. R.; SANTOS, A. S.; PAVARINI, S. P.; SONNE, L.; BANDARRA, P. M.; DRIEMEIER, D. Surto de babesiose cerebral em bovinos no estado do Rio Grande do Sul. Ciência Rural, v.39, n. 3, p. 933-936, 2009. ARAÚJO, F. R.; MADRUGA, C. R.; ALMEIDA, M. A. O.; LEAL, C. R. B.; MIGUITA, M. Levantamento sorológico de Babesia bovis e Babesia bigemina no estado da Bahia pela imunofluorescência indireta e teste de conglutinação rápida. Revista Brasileira Parasitologia Veterinária, v. 6, n. 2, p. 111–115, 1997. ARAÚJO, F. R.; MADRUGA, C. R.; BASTOS, P. A. S.; MARQUES, A. P. C. Frequência de anticorpos anti Anaplasma marginale em rebanhos leiteiros da Bahia. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 50, n. 3, p. 243-246, 1998. 68 ARAÚJO, F. R.; MELO, V. S. P.; RAMOS, C. A. N.; MADRUGA, C. R.; SOARES, C. O.; KESSLER, R. H.; ALMEIDA, N. F.; ARAÚJO, G. S.; TORRES JR, R. A. A.; FRAGOSO, S. P.; ARAUCO, P. R. C.; BACANELLI, G.; OLIVEIRA, M. B.; SANTOS, L. R. Development of enzymelinked immunoadsorbent assays based on recombinant MSP1a and MSP2 of Anaplasma marginale. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 100, n. 7, p. 765-769, 2005. ARTILES, J.; ALVES-BRANCO, F. P. J.; MARTINS, J. R.; CORREA, L. B.; SAPPER, M. F. M. Prevalência de Babesia bovis, Babesia bigemina e Anaplasma marginale no município de Bagé, RS. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, n. 2, supl. 2, p. 179, 1995. AUSTIN, F. E. Maintenance of infective Borrelia burgdorferi Sh-2-82 in 4% oxygen- 5% carbon dioxide in vitro. Canadian Journal of Microbiology, v. 39, n. 12, p. 1103-1110, 1993. AYRES, M.; AYRES JUNIOR, M.; AYRES, D. L.; SANTOS, A. S. BioEstat: aplicações estatísticas nas áreas das ciências biomédicas. 2007. 380p. Disponível em: <http://euler.mat.ufrgs.br/~giacomo/Manuais-softw/Manual-BioEstat.pdf> Acesso em: 13 out. 2010. BABES, V. Sur l‘he´moglobinurie bacte´rienne du boeuf. Comptes Rendus de l'Académie des sciences, v. 107, p. 692–694, 1888. BACON, R. M.; BIGGERSTAFF, B. J.; SCHRIEFER, M. E.; GILMORE, R. D.; PHILIPP, M. T.; STEERE, A. C.; WORMSER, G. P.; MARQUES, A. R.; JOHNSON, B. J. Serodiagnosis of Lyme disease by kinetic Elisas using recombinant VlsE1 or peptide antigens of Borrelia burgdorferi compared with two-tiered testing using whole-cell lysates. Journal of Infectious Diseases, v. 187, n. 8, p. 1187–1199, 2003. BARBET, A. F.; PALMER, G. H.; MYLER, P. J.; MCGUIRE, T. C. Characterization of an immunoprotective protein complex of Anaplasma marginale by cloning and expression of the gene coding for polypeptide Am105L. Infection and Immunity, v. 55, n. 10, p. 2428-2435, 1987. BARBET, A. F.; ALLRED, D. R. The msp1 beta multigene family of Anaplasma marginale: nucleotide sequence analysis of an expressed copy. Infection and Immunity, v. 59, n. 3, p. 971-976, 1991. BARBOSA, M. F. R.; COSTA, J. O.; TAFURI, W. L. Transmissão congênita de Babesia bovis: relato de um caso em Minas Gerais – Brasil. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 46, n. 5, p. 519-526, 1994. BARBOUR, A. G.; HAYES, S. F. Biology of Borrelia species. Clinical Microbiology Reviews, v.50, n. 4, p. 381-400, 1986. BARREIRA, J. D.; ROSSI, M. I. D.; SILVA, G. V. O.; PIRES, F. A.; MASSARD, C. L. Caracterização morfológica e aspectos biológicos das formas evolutivas de Babesia bigemina (Smith; Kilborne, 1893) (Protozoa: Babesiidae) em Boophilus microplus (Canestrini, 1887). Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 14, n. 1, p. 1-6, 2005. BARROS-BATTESTI, D. M. Estudos de carrapatos e pequenos mamíferos silvestres naturalmente infectados com espiroquetas semelhantes à Borrelia, no município de 69 Itapevi, estado de São Paulo. Tese Doutorado, Universidade de São Paulo, São Paulo-SP. 116p., 1998. BARROS-BATTESTI, D. M.; YOSHINARI, N. H.; BONOLDI, V. L. N.; GOMES, A. C. Parasitism by Ixodes didelphidis and I. loricatus (Acari: Ixodidae) on Small Wild Mammals from an Atlantic Forest in the State of Sao Paulo, Brazil. Journal of Medical Entomology, v. 37, n. 6, p. 820-927, 2000. BARROS-BATTESTI, D. M., ARZUA, M., BECHARA, G. H. Carrapatos de Importância Médico-Veterinária da Região Neotropical – Um guia ilustrado para identificação de espécies. 1 ed. São Paulo: Vox/ICTTD-3/Butantan, 2006. 223p. BARROS, S. L.; MADRUGA, C. R.; ARAÚJO, F. R.; MENK, C. F.; ALMEIDA, M. A. O.; MELO, E. P. S.; KESSLER, R. H. Serological survey of Babesia bovis, Babesia bigemina, and Anaplasma marginale antibodies in cattle from the semi-arid region of the state of Bahia, Brazil, by enzyme-linked immunosorbent assays. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 100, n. 6, p. 613-617, 2005. BARRY, D. N.; PARKER, R. J.; DE VOS, A. J.; DUNSTER, P.; RODWELL, B. J. A microplate enzyme-linked immunosorbent assay for measuring antibody to Anaplasma marginale in cattle serum. Australian Veterinary Journal, v. 63, n. 3, p. 76-79, 1986. BENACH, J. L.; COLEMAN, J. L.; SKINNER, R. A.; BOSLER, E. M. Adult Ixodes dammini on rabbits: a hypothesis for the development and transmission of Borrelia burgdorferi. The Journal of Infectious Diseases, v. 155, n. 6, p. 1300-1306, 1987. BENNETT, C. E. Ticks and Lyme disease. Advances in Parasitology, v. 36, p. 343-405, 1995. BENXIU, J.; COLLINS, M. Seroepidemiologic survey of Borrelia burgdorferi exposure of dairy cattle in Wisconsin. American Journal of Veterinary Research, v. 55, n. 9, p. 1228-1231, 1994. BERNARDES, O. Bubalinocultura no Brasil: situação e importância econômica. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v. 31, n. 3, p. 293-298, 2007. BERTO, R. S.; FAUSTINO, M. A. G.; MELO, L. E. H.; ALVES, L. C.; MADRUGA, C. R.; ALMEIDA, M. A. O.; RAMOS, C. A. N.; TENÓRIO, T. G. S.; SILVA, F. F. Frequência de anticorpos IgG anti - Babesia bovis e anti - Babesia bigemina em bovinos no Município do Paudalho, Zona da Mata do estado de Pernambuco. Medicina Veterinária, v. 2, n. 3, p. 9-12, 2008. BOCK, R. E.; KINGSTON, T. G.; DE VOS, A. J.; Effect of breed of cattle on transmission rate and innate resistence to infection with Babesia bovis, Babesia bigemina transmitted by Boophilus microplus. Australian Veterinary Journal, v. 77, n. 7, p. 461-464, 1999. BOCK, R. E.; JACKSON, L.; DE VOS, A.; JORGENSEN, W. Babesiosis of cattle. Parasitology, v. 129, n. 1, p. S247-S269, 2004. BOONCHIT, S.; XUAN, X.; YOKOYAMA, N.; GOFF, W. L.; WAGNER, G.; IGARASHI, I. Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay with recombinant rhoptry-associated 70 protein 1 antigen against Babesia bovis for the detection of specific antibodies in cattle. Journal of Clinical Microbiology, v. 40, n. 10, p. 3771–3775, 2002. BÖSE, R.; JORGENSEN, W. K.; DALGLIESH, R. J.; FRIEDHOFF, K. T.; DE VOS, A. J. Current state and future trends in the diagnosis of babesioses. Veterinary Parasitology, v. 57, n. 1-3, p. 61-74, 1995. BOSLER, E. M. Tick vectors and hosts. In: COYLE, P. K. Lyme Disease. Boston: Mosby Year Book, 1993. p. 18-26. BOWIE, M. V.; DE LA FUENTE, J.; KOCAN, K. M.; BLOUIN, E. F.; BARBET, A. F. Conservation of major surface protein 1 genes of Anaplasma marginale during cyclic transmission between ticks and cattle. Gene, v. 282, n. 1-2, p. 95–102, 2002. BRACARENSE, A. P. F. L.; VIDOTTO, O.; CRUZ, G. D. Transmissão congênita de Babesia bovis. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 53, n. 4, p. 479-481, 2001. BRAYTON, K. A.; KAPPMEYER, L. S.; HERNDON, D. R.; DARK, M. J.; TIBBALS, D. L.; PAMER, G. H.; MCGUIRE, T. C.; KNOWLES JR., D. P. Complete genome sequencing of Anaplasma marginale reveals that the surface is skewed to two superfamilies of outer membrane proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, v. 102, n. 3, p. 844–849, 2005. BRAZ, J. R, C. J.; RIBEIRO, M. F.; LIMA, J. D.; PASSOS, L. M. Development of an ELISA system for detection of anti-Anaplasma marginale antibodies in cattle in Brazil. Journal of Veterinary Medicine, v. B47, n. 4, p. 241–248, 2000. BROWN, W. C.; NORIMINE, J.; KNOWLES, D. P.; GOFF, W. L. Immune control of Babesia bovis infection. Veterinary Parasitology, v. 138, n. 1-2, p. 75-87, 2006. BUCHWALD, A. Ein Fall von diffuser idiopathischer Hautatrophie. Derm Vierteljahresschr, v. 10, p. 553-554, 1883. BUENING, G. M.; BARBET, A.; MYLER, P.; MAHAN, S.; NENE, V.; MCGUIRE, T. C. Characterization of a repetitive DNA probe for Babesia bigemina. Veterinary Parasitology, v. 36, n. 1-2, p. 11-20, 1990. BULING, A.; CRIADO-FORNELIO, A.; ASENZO, G.; BENITEZ, D.; BARBA-CARRETERO, J. C.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. A quantitative PCR assay for the detection and quantification of Babesia bovis and B. bigemina. Veterinary Parasitology, v. 147, n. 1-2, p. 16-25, 2007. BURGDORFER, W.; BARBUR, A. G.; HAYES, S. F. Lyme disease: a tick-borne spirochetosis? Science, v.216, n. 4552, p. 1317-1319, 1982. BURGESS, E. C.; AMUNDSON, T. E.; DAVIS, J. P.; KASLOW, R. A.; EDELMAN, R. Experimental inoculation of Peromyscus spp. With Borrelia burgdorferi: evidence of contact transmission. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 35, n. 2, p. 355-359, 1986. 71 BURGESS, E. C.; GENDRON-FITZPATRICK, A.; WRIGHT, W. O. Arthritis and systemic disease caused by Borrelia burgdorferi in a cow. Journal of American Veterinary Medicine Association, v. 191, n. 11, p. 1468-1470, 1987. BURGESS, E. C. Borrelia burgdorferi infection in Wisconsin horses and cows. Annals New York Academy of Sciences, v. 539, n. 1, p. 235-243, 1988. BUSHMICH, S. L. Lyme Borreliosis in Domestic Animals. Journal of Spirochaetal and Ticks-Borne Diseases, v. 1, n. 1. p. 24-28, 1994. BUTLER, J. F.; DENMARK, H. A. Tick (Acari: Ixodidae) vectors of Lyme disease organisms (Borrelia burgdorferi) in Florida. Fla Department of Agriculture and Consumer Service Division of Plant Industry. The Entomology. 1990. Circular nº 326. CALLOW, L. L. Observations on tick-transmitted spirochaetes of cattle in Australia and South Africa. British Veterinary Journal, v. 123, n. 11, p. 492-497, 1967. CALLOW, L. L.; PARKER, R. J.; RODWELL, B. J.; OTTLEY, M. L. Piroplasmosis in buffaloes and its serological diagnosis based on a homology between buffalo and bovine immunoglobulins. Australian Veterinary Journal, v. 52, n. 1, p. 40-41, 1976. CALLOW, L. L. Animal health in Australia. Protozoal and rickettsial diseases. Canberra: Australian Government Publishing Service, 1984. v. 5. 264 p. CAPUTA, A. C.; MURTAUGH, M. P.; BEY, R. F.; LOKEN, K. I. 110-Kilodalton recombinant protein which is immunoreactive with sera from humans, dogs, and horses with Lyme borreliosis. Journal of Clinical Microbiology, v. 29, n. 11, p. 2418-2423, 1991. CARELLI, G.; DECARO, N.; LORUSSO, A.; ELIA, G.; LORUSSO, E.; MARI, V.; CECI, L.; BUONAVOGLIA, C. Detection and quantification of Anaplasma marginale DNA in blood samples of cattle by real-time PCR. Veterinary Microbiology, v. 124, n. 1-2, p. 107–114, 2007. CHARLES, D. D.; JOHNSON, E. R. Liveweight gains and carcass composition of buffalo (Bubalus bubalis) steers on four feeding regimes. Australian Journal of Agricultural Research, v. 26, n. 2, p. 407-413, 1972. CHAUVIN, A.; MOREAU, E.; BONNET, S.; PLANTARD, O.; MALANDRIN, L. Babesia and its hosts: adaptation to long-lasting interactions as a way to achieve efficient transmission. Veterinary Research, v. 40, n. 2, p. 37, 2009. COCKRILL, W. R. O búfalo em ascensão: animal doméstico fundamental, criação, proteção e saúde animal. In: RAMOS, A. A.; VILLARES, J. B.; MOURA, J. C.(Ed.). Os búfalos. Piracicaba: Fundação de Estudos Agrários Luiz de Queiroz, 1981. p. 01-54. COMSTEDT, P.; BERGSTRÖM, S.; OLSEN, B.; GARPMO, U.; MARJAVAARA, L.; MEJLON, H.; BARBOUR, A. G.; BUNIKIS, J. Migratory Passerine Birds as Reservoirs of Lyme Borreliosis in Europe. Emerging Infectious Disease, v. 12, n. 8, p. 1085-1095, 2006. CORONADO, A. Is Boophilus microplus the main vector of Anaplasma marginale? Technical note. Revista Científica FCV-LUZ, v. 11, n. 5, p. 408–411, 2001. 72 CORRÊA, F. N. Pesquisa de anticorpos homólogos anti-Borrelia burgdorferi em búfalos (Bubalus bubalis) do estado do Pará. Dissertação Mestrado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro, 36p., 2007. COSTA, C. L.; KOHAYAGAWA, A.; DELL‘PORTO, A.; BOMFIM, S. R. M. Determinação dos níveis de anticorpos anti-Babesia spp. em bezerros bubalinos (Bubalus bubalis), desde o nascimento até um ano de idade. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 6, n. 2, p. 117-121, 1997. CRAFT, J. E.; FISCHER, D. K.; SHIMAMOTO, G. T.; STEERE, A. C. Antigens of Borrelia burgdorferi recognized during Lyme Disease. The Journal of Clinical Investigation, v. 78, n. 4, p. 934-939, 1986. CORRIER, D. E,; GUZMAN, S. The effect of natural exposure to Anaplasma and Babesia infections on native calves in an endemic area of Colombia. Tropical Animal Health Production, v. 9, n. 1, p. 47-51, 1977. DALAGNOL, C. A.; MARTINS, E.; MADRUGA, C. R. Prevalência de anticorpos contra Babesia bovis, Babesia bigemina, Anaplasma marginale em bovinos de corte da região de clima Cfb. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, n. 2, supl. 1, p. 220, 1995. DALGLIESH, R. J.; STEWART, N. P. The use of tick transmission by Boophilus microplus to isolate pure strains of Babesia bovis, Babesia bigemina and Anaplasma marginale from cattle with mixed infections. Veterinary Parasitology, v. 13, n. 4, p. 317-323, 1983. DALGLIESH, R. J.; JORGENSEN, W. K.; DE VOS, A. J. Australian frozen vaccines for the control of babesiosis and anaplasmosis in cattle: A review. Tropical Animal Health Production, v. 22, n. 1, p. 44-52, 1990. D‘ANDREA, L. A. Z.; SARTOR, I. F.; MADRUGA, C. R.; FREITAS, S. B. Z.; KROLL, L. B. E KRONKA, S. N. Condição imunológica de bovinos das raças Holandesa e Nelore frente a Babesia bovis e B. bigemina em duas regiões do estado de São Paulo. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 26, n. 2, p. 74-78, 2006. DANTRAKOOL, A.; SOMBOON, P.; HASHIMOTO, T.; SAITO-ITO, A. Identification of a New Type of Babesia Species in Wild Rats (Bandicota indica) in Chiang Mai Province, Thailand. Journal of Clinical Microbiology, v. 42, n. 2, p. 850-854, 2004. DE LA FUENTE, J.; VAN DEN BUSSCHE, R. A.; KOCAN, K. M. Molecular phylogeny and biogeography of North American isolates of Anaplasma marginale (Rickettsiaceae: Ehrlichieae). Veterinary Parasitology, v. 97, n. 1, p. 65–76, 2001. DE LA FUENTE, J.; NARANJO, V.; RUIZ-FONS, F.; VICENTE, J.; ESTRADA-PEÑA, A. N.; ALMAZÁN, C.; KOCAN, K. M.; MARTÍN, M. P.; GORTÁZAR, C. Prevalence of tick-borne pathogens in ixodid ticks (Acari: Ixodidae) collected from wild boar (Sus scrofa) and Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) in central Spain. European Journal of Wildlife Research, v. 50, n. 4, p. 187–196, 2004a. DE LA FUENTE, J.; PASSOS, L. M. F.; VAN DEN BUSSCHE, R. A.; RIBEIRO, M. F. B.; FACURY-FILHO, E. J.; KOCAN, K. M. Genetic diversity and molecular phylogeny of 73 Anaplasma marginale isolates from Minas Gerais, Brazil. Veterinary Parasitology, v. 121, n. 3-4, p. 307–316, 2004b. DE LA FUENTE, J.; LEW, A.; LUTZ, H.; MELI, M. L.; HOFMANN-LEHMANN, R.; SHKAP, V.; MOLAD, T.; MANGOLD, A. J.; ALMAZÁN, C.; NARANJO, V.; GORTÁZAR, C.; TORINA, A.; CARACAPPA, S.; GARCÍA-PÉREZ, A. L.; BARRAL, M.; OPORTO, B.; CECI, L.; CARELLI, G.; BLOUIN, E. F.; KOCAN, K. M. Genetic diversity of Anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Animal Health Research Reviews, v. 6, n. 1, p. 75–89, 2005. DE LA FUENTE, J.; RUYBAL, P.; MTSHALI, M. S.; NARANJO, V.; SHUQING, L.; MANGOLD, A. J.; RODRIGUEZ, S. D.; JIMENEZ, R.; VICENTE, J.; MORETTAL, R.; TORINA, A.; ALMAZAN, C.; MBATI, P. M.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; FARBER, M.; ROSARIO-CRUZ, R.; GORTAZAR, C.; KOCAN, K. M. Analysis of world strains of Anaplasma marginale using major surface protein 1a repeat sequences. Veterinary Microbiology, v. 119, n. 2-4, p. 382–390, 2007. DOBY, J. M.; BIGAIGNON, G.; AUBERT, M.; IMBERT, G. Ectoparasites of the fox and Lyme borrelioses. Research on Borrelia burgdorferi in ixodid ticks and fleas (Siphonaptera). Bulletin de la Societe Francaise de Parasitologie, v. 9, n. 1, p. 279-288, 1991. DOMINGUEZ, M.; ZABAL, O.; WILKOWSKY, S.; ECHAIDE, I.; TORIONI DE ECHAIDE, S.; ASENZO, G.; RODRÍGUEZ, A.; ZAMORANO, P.; FARBER, M.; SUAREZ, C.; FLORIN-CHRISTENSEN, M. Use of a Monoclonal Antibody against Babesia bovis Merozoite Surface Antigen-2c for the Development of a Competitive ELISA Test. Annals New York Academy of Sciences, v. 1026, n. 1, p. 165–170, 2004. DORWARD, D. W.; SCHWAN, T. G.; GARON, C. F. Immune capture and detection o Borrelia burgdorferi antigens in urine, blood or tissues from infected ticks, mice, dogs and humans. Journal of Clinical Microbiology, v. 29, n. 6, p. 1162-1170, 1991. DRESSLER, F.; WHALEN, J. A.; REINHARDT, B. N.; STEERE, A. C. Western blotting in the serodiagnosis of Lyme disease. The Journal of Infectious Diseases, v. 167, n. 12, p. 392-400, 1993. DUMLER, J. S., BARBET, A. F., BEKKER, C. P. J., DASCH, G. A., PALMER, G. H., RAY, S. C., RIKIHISA, Y., RURANGIRWA, F. R. Reorganization of the genera in the families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and ‗‗HGE agent‘‘ as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, v. 51, n. 6, p. 2145–2165, 2001. DUZGUN, A.; SCHUNTNER, C. A.; WRIGHT, I. G.; LEATCH, G.; WALTISBUHL, D. J. A sensitive ELISA technique for the diagnosis of Anaplasma marginale infections. Veterinary Parasitology, v. 29, n. 1, p. 1-7, 1988. EISEN, L.; LANE, R. Vectors of Borrelia burgdorferi sensu lato. In: GRAY J.; KAHL O.; LANE R.; STANEK G. Lyme borreliosis biology, epidemiology and control. Wallingford: Cabi Publishing, 2002. p. 91–115. 74 EL-GHAYSH, A.; SUNDQUIST, B.; CHRISTENSSON, D. A.; HILALI, M.; NASSAR, A. M. Observations on the use of ELISA for detection of Babesia bigemina specific antibodies. Veterinary Parasitology, v. 62, n. 1-2, p. 51-61, 1996. ENGSTROM, S. M.; SHOOP, E.; JOHNSON, R. C. Immunoblot interpretation criteria for serodiagnosis of early Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 33, n. 2, p 419-427, 1995. ERIKS, I. S.; PALMER, G. H.; MCGUIRRE, T. C.; ALLRED, D. R.; BARBET, A. F. Detection and quantitation of Anaplasma marginale in carrier cattle by using a nucleic acid probe. Journal Clinical Microbiology, v. 27, n. 2, p. 279-284, 1989. EWING, S. A., Transmission of Anaplasma marginale by arthropods. In: HIDALGO, R.J., JONES, E.W. PROCEEDINGS OF THE 7TH NATIONAL ANAPLASMOSIS CONFERENCE. Annals…Mississippi: Mississippi State University, 1981. p. 395–423. FAHRIMAL, Y.; GOFF, W. L.; JASMER, D. P. Detection of Babesia bovis carrier cattle by using polymerase chain reaction amplification of parasite DNA. Journal of Clinical Microbioloigy, v. 30, n. 6, p. 1373-1379, 1992. FAJARDO, F. A. A piroplasmose bovina no Rio de Janeiro. Revista de Medicina, v.4, n. 18, p. 315-319, 1901. FARIAS, N. A. Tristeza parasitária bovina. In: RIET-CORREA, F.; SHILD, A. L.; LEMOS, R. A. A.; BORGES, J. R. J. Doenças de Ruminantes e Equídeos. 3.ed. Santa Maria: Pallotti, 2007, v.1, p.524-532. FERREIRA, A. M.; SUZART, S.; VIDOTTO, O.; KNOWLES, D. P.; VIDOTTO, M. C. Use of repetitive DNA elements to define genetic relationships among Anaplasma marginale isolates. FEMS Microbiology Letters, v. 197, n. 2, p. 139–143, 2001. FERRERI, L.; BENITEZ, D.; DOMINGUEZ, M.; RODRIGUEZ, A.; ASENZO, G.; MESPLET, M.; FLORIN-CHRISTENSEN, M.; SCHNITTGER, L. Water Buffalos as Carriers of Babesia bovis in Argentina. Animal Biodiversity and Emerging Diseases: Annals of the New York Academy of Sciences, v. 1149, n. 1, p. 149-151, 2008. FIGUEROA, J. V.; CHIEVES, L. P.; JOHNSON, G. S.; BUENING, G. M. Detection of Babesia bigemina-infected Carriers by Polymerase Chain Reaction Amplification. Journal of Clinical Microbioloigy, v. 30, n. 10, p. 2576-2582, 1992. FIGUEROA, J. V.; CHIEVES, L. P.; JOHNSON, G. S.; BUENING, G. M. Multiplex polymerase chain reaction based assay for the detection of Babesia bigemina, Babesia bovis and Anaplasma marginale DNA in bovine blood. Veterinary Parasitology, v. 50, n. 1-2, p. 69-81, 1993. FIGUEROA, J. V., ALVAREZ, J. A., RAMOS, J. A., ROJAS, E. E., SANTIAGO, C., MOSQUEDA, J. J., VEGA, C. A., BUENING, G. M. Bovine babesiosis and anaplasmosis follow-up on cattle relocated in an endemic area for hemoparasitic diseases. Annals of the New York Academy of Sciences, v. 849, n. 1, p. 1–10, 1998. 75 FILGUEIRA, A. L.; TROPPE, B. M.; GONTIJO FILHO, P. P. Doença de Lyme. Rio Dermatológico, v. 2, n. 1, p. 1, 1989. FRANQUE, M. P. Perfil da Pecuária Leiteira e Aspectos Epidemiológicos do Complexo Tristeza Parasitária Bovina na Mesorregião Sul Espirito-santense, ES. Tese de Doutorado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, Rio de Janeiro. 115p., 2010. FRANZOLIN-NETO, R; DELL‘PORTO, A.; LACAZ RUIZ, R. Anaplasmosis and babesiosis: a clinical case in Buffalo (Bubalus bubalis) calf in Brazil. Buffalo Bulletin, v. 8, n. 3, p. 54-68, 1989. FRASER C.; CASJENS S.; HUANG W.; SUTTON G.; CLAYTON R.; LATHIGRA R.; WHITE, O.; KETCHUM, K. A.; DODSON, R.; HICKEY, E. K.; GWINN, M.; DOUGHERTY, B.; TOMB, J. F.; FLEISCHMANN, R. D.; RICHARDSON, D.; PETERSON, J.; KERLAVAGE, A. R.; QUACKENBUSH, J.; SALZBERG, S.; HANSON, M.; VUGT, R. V.; PALMER, N.; ADAMS, M. D.; GOCAYNE, J.; WEIDMAN, J.; UTTERBACK, T.; WATTHEY, L.; MCDONALD, L.; ARTIACH, P.; BOWMAN, C.; GARLAND, S.; FUJII, C.; COTTON, M. D.; HORST, K.; ROBERTS, K.; HATCH, B.; SMITH, H. O.; VENTER, J. C. Genomic sequence of a Lyme disease spirochaete, Borrelia burgdorferi. Nature, v. 390, n. 6660, p. 580–586, 1997. FRENCH, D. F., MCELWAIN, T. F., MCGUIRE, T. C., PALMER, G. H. Expression of Anaplasma marginale major surface protein 2 variants during persistent cyclic rickettsemia. Infection and Immunity, v. 66, n. 3, p. 1200–1207, 1998. FREY, A.; CANZIO, J. D.; ZURAKOWSKI, D. A statistically defined endpoint titer determination method for immunoassays. Journal of Immunological Methods, v. 221, n. 1-2, p. 35-41, 1998. FUKUNAGA, M.; OKADA, K.; NAKAO, M.; KONISHI, T.; SATO, Y. Borrelia tanukii sp. nov. and Borrelia turdae sp. nov. found from ixodid ticks in Japan: rapid species identification by 16SrRNA gene-targeted PCR analysis. Microbiology and immunology, v. 40, n. 11, p. 877–881, 1996. FUTSE, J. E.; UETI, M. W.; KNOWLES JR, D. P.; PALMER, G. H. Transmission of Anaplasma marginale by Boophilus microplus: retention of vector competence in the absence of vector-pathogen interaction. Journal of Clinical Microbiology, v. 41, n. 8, p. 3829–3834, 2003. FRIEDHOFF, K. T. Transmission of Babesia. In: M. RISTIC (Ed). Babesiosis of Domestic Animals and Man. Florida: CRC Press, 1988. pp. 23-52. GALIZA, G. J. N.; SILVA, M. L. C. R.; DANTAS, A. F. M.; SIMÕES, S. V. D.; RIET-CORREA, E. F. Doenças do sistema nervoso de bovinos no semiárido nordestino. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 30, n. 3, p. 267-276, 2010. GALO, K. R. Frequência de anticorpos anti- Borrelia burgdorferi em equinos na mesorregião metropolitana de Belém, estado do Pará. 2006. Dissertação Mestrado, Universidade Federal do Pará, Castanhal, Pará. 48p, 2006. 76 GILL, J. S.; MCLEAN, R. G.; SHRINER, R. B.; JOHNSON, R. C. Serologic surveillance for the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi, in Minnesota by using white-tailed deer as sentinel animals. Journal of Clinical Microbiology, v. 32, n. 2, p. 444-451, 1994. GOMES, R. A. Resposta imune-humoral de búfalos (Bubalus bubalis) infectados naturalmente por Babesia bovis, B. bigemina e Anaplasma marginale. Tese de Doutorado. Universidade Estadual de São Paulo. Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Jaboticabal. 92p., 2007. GOMES, R. A.; MACHADO, R. Z.; STARKE-BUZETTI, W. A.; BONESSO, M. A. Resposta imune-humoral de búfalos (Bubalus bubalis) contra Anaplasma marginale (Theiler, 1910). Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, n. 2, p. 73-80, 2008. GONÇALVES, P. M.; PASSOS, L. M. F. Utilização do teste ELISA (sistema biotina-avidina) para detecção de anticorpos anti-Babesia bovis. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 4, supl. 1, p. 216, 1995. GONÇALVES, P. M. Epidemiology and control of bovine babesioses and anaplasmosis in southeast region of Brazil. Ciência Rural, v. 30, n. 1, p.187-194, 2000. GONZALES, E. F.; LONG, R. F.; TODOROVIC, R. A. Comparisons of the complement fixation, indirect fluorescent antibody, and card agglutination tests for the diagnosis of bovine anaplasmosis. American Journal of Veterinary Research, v. 39, n. 9, p. 1538-1541, 1978. GORDILLO, G.; TORRES, J.; SOLÓRZANO, F.; CEDILLO-RIVERA, R.; TAPIA-CONYER, R.; MUÑOZ, O. Serologic evidences suggesting the presence of Borrelia burgdorferi infection in Mexico. Archives of Medical Research, v. 30, n. 1, p. 64-68, 1999. GORDON, J. L.; SIBLEY, L. D. Comparative genome analysis reveals a conserved family of actin-like proteins in apicomplexan parasites. BMC Genomics, v. 6, n. 1, p. 179, 2005. GREENE, R. T.; WALKER, R. L.; NICHOLSON, W. L.; HEIDNER, H. W.; LEVINE, J. F.; BURGESS, E. C.; WYAND, M.; BREITSCHWERDT, E. B.; BERKHOFF, H. A. Immunoblot analysis of immunoglobulin G response to the Lyme disease agent (Borrelia burgdorferi) in experimental and naturally exposed dogs. Journal of Clinical Microbiology, v. 26, n. 4, p. 648-653, 1988. GRODZICKI, R. L.; STEERE, A. C. Comparison of imunoblotting and indirect enzyme-linked immunosorbent assay using different antigen preparations for diagnosing early Lyme Disease. The Journal of Infectious Diseases, v. 157, n. 4, p. 790-797, 1988. GUEDES JR, D. S.; ARAÚJO, F. R.; SILVA, F. J. M.; RANGEL, C. P.; BARBOSA, J. D.; FONSECA, A. H. Frequency of antibodies to Babesia bigemina, B. bovis, Anaplasma marginale, Trypanosoma vivax and Borrelia burgdorferi in cattle from the northeastern region of the state of Pará, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, v. 17, n. 2, p. 105-109, 2008. GUGLIELMONE, A. A. Epidemiology of babesiosis and anaplasmosis in South and Central America. Veterinary Parasitology, v. 57, n. 1, p. 109–119, 1995. 77 GUIDO, M. C.; DELL‘PORTO, A.; FUJII, T. U.; ARTES, R. Prevalence of hemoparasites in buffaloes from Ribeira Valley south coast of São Paulo, Brazil State-Brazil. In: WORLR BUFFALO CONGRESS: 4th, 1994, São Paulo. Proceedings...São Paulo: 1994. p. 325-327. GUSTAFSON, J. M.; BURGESS, E. C.; WACHAL, M. D.; STEINBERG, H. Intrauterine transmission of Borrelia burgdorferi in dogs. American Journal of Veterinary Research, v. 54, n. 6, p. 882-890, 1993. HABELA, M.; SOLANO, A.; ANTON, J. M.; BOTICARIO, D.; MORENO, F.; ROL, J. A. Aislamiento, identificación y transmisión experimental de Babesia bigemina en Extremadura (España). In: CONGRESO IBÉRICO DE PARASITOLOGÍA: IV, 1995, Santiago de Compostela. Libro de resúmenes... Santiago de Compostela: 1995. p. 104–105. HADANI, A.; GUGLIELMONE, A. A.; BERMÚDEZ, A. C. Deteccion de espiroquetas del genero Borrelia en bovinos de la provincia de Salta, Argentina. Revista de Medicina Veterinaria Argentina, v. 66, n. 5, p. 292-294, 1985. HOOGSTRAAL, H. Argasid and nuttalliellid ticks as parasites and vectors. Advances in Parasitology, v. 24, n. 1, p. 135-238, 1985. HODGSON, J.H. Biology and transmission of Babesia bigemina in Boophilus microplus. Annals New York Academy of Sciences, v. 653, n. 1, p. 42-51, 1992. HUNFELD, K. P.; HILDEBRANDT, A.; GRAY, J. S. Babesiosis: Recent insights into an ancient disease. International Journal for Parasitology, v. 38, n. 11, p. 1219–1237, 2008. HUNGERFORD, L. L.; SMITH, R. D. Variations in seroprevalence and host factors for bovine anaplasmosis in Illinois. Veterinary Research Community, v. 21, n. 1, p. 9-18, 1997. HYDE, F. W.; JOHNSON, R. C.; WHITE, T. J.; SHELBURNE, C. E. Detecting of antigens in urine of mice and humans infected with Borrelia burgdorferi, etiologic agent of Lyme disease. Journal of Clinical Microbiology, v. 27, n. 1, p. 58-61, 1989. IBGE – Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em: <www.ibge.gov.br > Ace |
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