Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Francisco, Michele Rodrigues
Data de Publicação: 2016
Tipo de documento: Dissertação
Idioma: por
Título da fonte: Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
Texto Completo: https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11033
Resumo: Os Trichoderma spp. não são fungos patogênicos e se desenvolvem em diversificados substratos e condições ambientais. Sua identificação baseada apenas em características morfológicas é considerada complexa, por conta da diversidade genética das espécies. Portanto, a taxonomia do gênero Trichoderma é realizada com o auxílio de outras análises, tais como bioquímicas e moleculares. Algumas espécies são capazes de produzir elevadas quantidades de enzimas extracelulares envolvidas na hidrólise de polissacarídeos, sendo assim considerados fungos com alto potencial na produção de enzimas hidrolíticas. O objetivo deste estudo foi selecionar e identificar as espécies do gênero Trichoderma spp. e avaliar a produção de enzimas industriais destes isolados. Foram identificados 58 isolados de fungos Trichoderma spp. de solo e plantas por análise morfológica, molecular e também foi avaliado a capacidade de produção enzimática. A Tecnologia enzimática é uma área promissora dentro das novas tecnologias para síntese de compostos que possuem alto valor agregado, onde os processos industriais biocatalisados apresentam menor impacto ambiental, menor custo de energia, pois as enzimas são substâncias biodegradáveis e possuem especificidade que minimizam os efeitos indesejáveis. Neste trabalho, foi utilizado meio de cultura BDA para desenvolvimento dos fungos. A identificação morfológica foi realizada com auxílio da chave de identificação de acordo com Samuels et al. (2015) e molecular, realizada através da extração de DNA do micélio dos fungos, de acordo com protocolo CTAB. Para as análises enzimáticas, foram realizados ensaios qualitativos, utilizado meio de cultura sólido específico para avaliar a produção de enzimas hidrolíticas: Onde os meios de cultura continham como substrato para desenvolvimento e produção enzimática dos isolados de Trichoderma spp. leite desnatado para produção de peptidase; amido solúvel para produção de amilase, carboximetilcelulose para produção de celulase, pectina cítrica para produção de pectinases e extrato de levedura, dextrose, sulfato ferroso, amônio, magnésio, manganês e cloreto potássio para produção de fitase. De acordo com os resultados, a análise morfológica identificou 4 espécies, tais como: T. atroviride, T. asperelloide, T. harzianum, T. longibrachiatum, estas espécies foram confirmadas por análise molecular. Já com relação ao potencial enzimático, o resultado foi negativo para a atividade das enzimas peptidase, celulase e pectinase e positivo para amilase, e para a atividade da enzima fitase, somente um isolado apresentou resultado positivo, este foi identificado de acordo com análise morfológica como sendo da espécie T. longibrachiatum
id UFRRJ-1_93ef1cf4c3e64742f0531eb74fd27c14
oai_identifier_str oai:rima.ufrrj.br:20.500.14407/11033
network_acronym_str UFRRJ-1
network_name_str Repositório Institucional da UFRRJ
repository_id_str
spelling Francisco, Michele RodriguesFraga, Marcelo Elias912.640.147-91http://lattes.cnpq.br/2870225310866138Valadão, Rômulo CardosoSilva, Otniel Freitas8911742732http://lattes.cnpq.br/40392803950426502023-12-22T01:45:51Z2023-12-22T01:45:51Z2016-05-20FRANCISCO, Michele Rodrigues. Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais. 2016. 53 f. Dissertação (Mestrado em Ciência e Tecnologia de Alimentos) - Instituto de Tecnologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2016.https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11033Os Trichoderma spp. não são fungos patogênicos e se desenvolvem em diversificados substratos e condições ambientais. Sua identificação baseada apenas em características morfológicas é considerada complexa, por conta da diversidade genética das espécies. Portanto, a taxonomia do gênero Trichoderma é realizada com o auxílio de outras análises, tais como bioquímicas e moleculares. Algumas espécies são capazes de produzir elevadas quantidades de enzimas extracelulares envolvidas na hidrólise de polissacarídeos, sendo assim considerados fungos com alto potencial na produção de enzimas hidrolíticas. O objetivo deste estudo foi selecionar e identificar as espécies do gênero Trichoderma spp. e avaliar a produção de enzimas industriais destes isolados. Foram identificados 58 isolados de fungos Trichoderma spp. de solo e plantas por análise morfológica, molecular e também foi avaliado a capacidade de produção enzimática. A Tecnologia enzimática é uma área promissora dentro das novas tecnologias para síntese de compostos que possuem alto valor agregado, onde os processos industriais biocatalisados apresentam menor impacto ambiental, menor custo de energia, pois as enzimas são substâncias biodegradáveis e possuem especificidade que minimizam os efeitos indesejáveis. Neste trabalho, foi utilizado meio de cultura BDA para desenvolvimento dos fungos. A identificação morfológica foi realizada com auxílio da chave de identificação de acordo com Samuels et al. (2015) e molecular, realizada através da extração de DNA do micélio dos fungos, de acordo com protocolo CTAB. Para as análises enzimáticas, foram realizados ensaios qualitativos, utilizado meio de cultura sólido específico para avaliar a produção de enzimas hidrolíticas: Onde os meios de cultura continham como substrato para desenvolvimento e produção enzimática dos isolados de Trichoderma spp. leite desnatado para produção de peptidase; amido solúvel para produção de amilase, carboximetilcelulose para produção de celulase, pectina cítrica para produção de pectinases e extrato de levedura, dextrose, sulfato ferroso, amônio, magnésio, manganês e cloreto potássio para produção de fitase. De acordo com os resultados, a análise morfológica identificou 4 espécies, tais como: T. atroviride, T. asperelloide, T. harzianum, T. longibrachiatum, estas espécies foram confirmadas por análise molecular. Já com relação ao potencial enzimático, o resultado foi negativo para a atividade das enzimas peptidase, celulase e pectinase e positivo para amilase, e para a atividade da enzima fitase, somente um isolado apresentou resultado positivo, este foi identificado de acordo com análise morfológica como sendo da espécie T. longibrachiatumCAPES - Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível SuperiorTrichoderma spp. They are not pathogenic fungi and develop in substrates and diverse environmental conditions. Identification based only on morphological characteristics is considered complex, due to the genetic diversity of the species. Therefore, the taxonomy of the genus Trichoderma is performed with the aid of other analyzes such as biochemical and molecular changes. Some species are capable of producing high amounts of extracellular enzymes involved in the hydrolysis of polysaccharides are thus considered fungi with high potential in the production of hydrolytic enzymes. The aim of this study was to select and identify the species of the genus Trichoderma spp. And evaluate the production of industrial enzymes these isolates. They identified 58 isolates of Trichoderma spp fungi. soil and plants by morphological and molecular analysis and was also evaluated the enzymatic production capacity. Enzyme technology is a promising area in new technologies for synthesis of compounds with high added value, where biocatalisados industrial processes have a lower environmental impact, lower energy cost, because the enzymes are biodegradable substances and have specificity to minimize the undesirable effects. In this work, we used PDA culture medium for development of fungi. Morphological identification is achieved using the identification key according to Samuels et al. (2015) Molecular and held by DNA extraction from the mycelium of fungi in accordance with CTAB protocol. For enzyme analysis, qualitative assays were performed, used specific means of solid culture to evaluate the production of hydrolytic enzymes: Where the culture media containing as a substrate for development and enzyme production of Trichoderma spp. skimmed milk production peptidase; soluble starch for the production of amylase, cellulase production carboxymethylcellulose, citrus pectin for the production of pectinase and yeast extract, dextrose, ferrous sulfate, ammonium, magnesium, manganese and potassium chloride for the production of phytase. According to the results, the morphological analysis identified 4 species such as T. atroviride, T .asperelloide, T. harzianum, T. longibrachiatum, these species were verified by molecular analysis. In relation to the enzyme potential, the result was negative for the activity of peptidase enzymes, cellulase and pectinase and positive for amylase, and the activity of the enzyme phytase, only an isolated was positive, this was identified according to morphological analysis as It is the species T. longibrachiatumapplication/pdfporUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroPrograma de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia de AlimentosUFRRJBrasilInstituto de Tecnologiafilamentous fungiBiotechnologymorphological identificationmolecular identificationenzyme productionFungos filamentososBiotecnologiaIdentificação morfológicaIdentificação molecularProdução de enzimasCiência e Tecnologia de AlimentosSeleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriaisSelection and identification of Trichoderma spp. and potential for industrial enzymes productioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/masterThesisABRAHÃO NETO, J. Algumas aplicações de enzimas. In: LIMA, U. A.; AQUARONE, E.; BORZANI, W.; SCHMIDELL, W. (Coords.). Biotecnologia industrial – processos fermentativos e enzimáticos. São Paulo: Edgard Blücher Ltda, 2001. 405-412 p. ABREU, J. A. S.; ROVIDA, A. F. S.; PAMPHILE, J. A. Fungos de interesse: Aplicações biotecnológicas. Revista UNINGÁ Review, v. 21, n. 1, p. 55-59, 2015. AGUIAR, C. M. Hidrólise enzimática de resíduos lignocelulósicos utilizando celulases produzidas pelo fungo Aspergillus niger. 2010. 118 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Universidade Estadual do Oeste do Paraná, Paraná, 2010. ALBERTS, B.; BRAY, D.; LEWIS, J.; RAFF, M.; ROBERTS, K.; WATSON, J. D. Biologia molecular da célula. Porto Alegre: Artes Médicas. 1997. 1396p. ALEXOPOULOS, C. J.; MIMS, C. W.; BLACKWELL, M. Introductory Mycology. In: (Ed.). 4. New York: John Wiley Sons, Inc., 1996. ALVES, N. M. Produção de fitase por fungo endofítico. 2014. 60 f. Dissertação (Mestrado em Microbiologia Agrícola) – Universidade Federal de Lavras, Minas Gerais/MG, 2014. ANDRADE, R. L. P.; MARTINS, J. F. P. Influência da adição da fécula de batata-doce (Ipomoea batatas L.) sobre a viscosidade do permeado de soro de queijo. Ciência e Tecnologia de Alimentos, Campinas, v. 22, n. 3, p. 249-253, 2002. ANISA, S. K.; GIRISH, K. Pectinolytic Activity of Rhizopus sp., and Trichoderma viride. International Journal of Research in Pure and Applied Microbiology, v. 4, n. 2, p. 28-31, 2014. ATMAJA, D. S.; KHAIRUL, W. Isolasi, purifikasi dan karakterisasi α – amilase dari Trichoderma viride FNCC 6013. Chemical Information, v. 1, n. 1, p. 85-93, 2013. AZEVEDO, A. M. C.; De MARCO, J. L.; FELIX, C. R. Characterization of amylase produced by a Trichoderma harzianum isolate with antagonistic activity against Crinipellis perniciosa, the causal agent of witches broom of cocoa. Microbiology Letters, v. 188, p. 171-175, 2000. BAILEY, M. J.; PESSA, E. Strain and process for production of polygalacturonase. Enzyme Microbial Technology, v. 12, n. 4, p. 266-271, 1990. BALI, A.; SATYNARAYNA, T. Microbiol phytases in nutrition and combating phosphorus pollution. Everyman’s Science, v. 4, p. 207-209, 2001. BARBOSA, M. A. G.; REHN, K. G.; MENEZES, M.; R. L. R. MARIANO. Antagonism of Trichoderma species on cladosporium herbarum and their enzymatic characterization. Brazilian Journal of Microbiology, v. 32, p. 98-104, 2001. 39 BASSO, T. P.; GALLO, C. R.; BASSO, L. C. Atividade celulolítica de fungos filamentosos isolados de bagaço de cana de açúcar e madeira em decomposição. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 45, n. 11, p. 1282-1289, 2010. BATEMAN, D. F.; BASHAM, H. G. Degradation of plant-cell walls and membranes by microbial enzymes. In: HEITEFUSS R.; WILLIAMS, P. H. (Eds.). Encyclopedia of Plant Physiology. New Series: Physiological Plant Pathology. New York: Springer-Verlag, 2001. 316-355 p. BCC RESEARCH – MARKET FORECASTING. 2014. Enzymes in Industrial Applications: Global Markets. Disponível em: <http://www.bccresearch.com/market-research/biotechnology/enzymes-industrial-applications-bio030h.html>. Acesso: 18 ago. 2015. BENÍTEZ, T. L. C.; DELGADO-JARANA, J.; REY, M. Glucanolytic and other enzymes and their genes. In: Harman G E, Kubicek C, editors; Harman G E, Kubicek C, editors. Trichoderma and Gliocladium: enzymes, biological control and commercial applications. London, United Kingdom: Taylor and Francis, v. 2, p. 101-127, 1998. BHAT, M. K. Cellulases and related enzymes in biotechnology. Biotechnology Advances, v.18, n. 5, p. 355-383, 2000. BHAT, M. K.; BHAT, S. Cellulose degrading enzymes and their potential industrial applications. Biotechnology Advances, v. 15, n. (3/4), p. 583-620, 1997. BISSET, J. A revision of the genus Trichoderma. I. Section Longibrachiatum sect. Nov. Canadian Journal of Botany, v. 62, p. 924-31, 1984. BISSETT, J. A revision of the genus Trichoderma spp., Infrageneric classification Canadian Journal of Botany, v. 69, p. 2357-2372, 1991. BOHN, L.; MEYER, A.; RASMUSSEN, S. Phytase: impact on environment and human nutrition. A challenge for molecular breeding. Journal of Zhejiang University Science B, v. 9, p. 165-191, 2008. BOMFIM, M. P.; SÃO JOSÉ, A. R.; REBOUÇAS, T. N. H.; ALMEIDA, S. S.; SOUZA, I. V. B; DIAS, N. O. Avaliação antagônica in vitro e in vivo de Trichoderma spp. a Rhizopus stolonifer em maracujazeiro amarelo. Summa Phytopathol, v. 36, n. 1, p. 61-67, 2010. BON, E. P. S.; PEREIRA J. R., N.; GOTTSCHALK, L. M. F.; SÁ-PEREIRA, P.; ROSEIRO, J. C.; FERRARA, M. A. Bioprocessos para a produção de enzimas. In: BON, E. P. S.; FERRARA, M. A. A.; CORVO, M. L. (Eds.). Enzimas em Biotecnologia: produção, aplicações e mercado. Rio de Janeiro: Interciência, 2008. 95-122 p. BON, E. P.; VERMELHO, A. B. Queratinases. Enzimas como Agentes Biotecnológicos. 1. ed. Rio de Janeiro, Legis Summa, 2004. BORGES, J. G; COSTA, L. A. S; DRUZIAN, J. I. Produção e caracterização de biomassa extracelular obtida por fermentação submersa usando Lasidioplodia theobromae isolado do cacau. Polímeros, v. 24, n. 1, p. 52-57, 2014. 40 BORTOLAZZO, N. G. Isolamento e seleção de fungos celulolíticos para hidrólise enzimática do bagaço de cana-de-açúcar. 2011. 76 f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”- ESALQ/USP, Piracicaba, 2011. BOSWELL, G. P.; JACOBS, H.; DAVIDSON, F. A.; GADD, G. M.; RITZ, K. Growth and Function of Fungal Mycelia in Heterogeneous Environments. Bulletin of Mathematical Biology, Elmsford, v. 65, n. 3, p. 447-477, 2003. BRAÚNA, L. M. Controle Biológico do Mofo Branco por Isolados de Trichoderma nas Culturas de Soja e Feijão Comum. 2011. 94 f. (Dissertação em Fitopatologia) – Universidade de Brasília - DF, 2011. BROTMAN, Y.; GUPTA, J. K.; VITERBO, A. Trichoderma. Current Biology, v. 20, p. 390-391, 2010. BRUNS, T. D.; WHITE, T. J.; TAYLOR, J. W. Fungal molecular systematics. Annual Review of Ecology and Systematics, v. 22, p. 525-64, 1991. CASTRO, A. M; PEREIRA, N. J. Produção, propriedades e aplicação de celulases na hidrólise de resíduos agroindustriais. Química Nova, v. 33, n. 1, p. 181-188, 2010. CELESTINO, S. M. C. et al. Purification and characterization of a novel pectinase from Acrophialophora nainiana with emphasis on its physicochemical properties. Journal of Biotechnology, v. 123, n. 1, p. 33-42, 2006. CHANDRA, M.; KALRA, A.; SHARMA, P.K.; KUMAR, H.; SANGWAN, R.S. Optimization of cellulases production by Trichoderma citrinoviride on mark of Artemisia annua and its application for bioconversion process. Biomass and Bioenergy. v. 34, n. 5, p. 805-811, 2010. CHAVERRI, P.; CASTLEBURY, L. A.; SAMUELS, G. J.; GEISER, D. M. Multilocus phylogenetic structure within the Trichoderma harzianum/Hypocrea lixii complex. Mol Phylogenet Evol, v. 27, n. 2, p. 302-313, 2003b. CHAVERRI, P.; SAMUELS, G. J. Hypocrea/Trichoderma (Ascomycota, Hypocreales, Hypocreaceae): Species with green ascospores. Studies in Mycology, v. 48, p. 101-119, 2003. CHEN, B. Y.; JANES, H. W. PCR Cloning Protocols. Second edition. New Brunswick, NJ: Humana Press, 2002. CHUNG, T. K.; RUTHERFURD S. M.; THOMAS D. V.; MOUGHAN, P. J. Effect of two microbial phytases on mineral availability and retention and bone mineral density in low-phosphorus diets for broilers. British Poultry Science, v. 54, p. 362-373, 2013. COLEN, G. Isolamento e seleção de fungos filamentosos produtores de lipases. 2006. 206 f. Tese (Doutorado em Ciência de Alimentos) – Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte, 2006. COLONIA, B. S. O.; CHAGAS JUNIOR, A. F. Screening and detection of extra cellular celulases (Endo – and Exo- glucanases) seecreted by filamentous fungi isolated from 41 soils using rapid tests with chromogenic dyes. African Journal of Biotechnology, v. 13, n. 52, p. 4694-4701, 2014. CROUS, P. W.; VERKLEY, G. J. M.; GROENEWALD, J. Z.; SAMSON, R. A. 2009, Fungal Biodiversity. Vol. 1, CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, Utrecht, Netherlands. CUNHA, M. C.; MONTEIRO, P. S.; MENDES, F. Q. Caracterização bioquímica de fitases produzidas por fungos isolados na região do Alto Paranaíba em Minas Gerais. Revista Acadêmica: Ciência Animal, v. 13, p. 61-69, 2015. DE LA CRUZ, J.; A. LLOBELL. Purification and properties of a basic endo-β- 1, 6-glicanase (BGN16.1) from the antagonistic fungus Trichoderma harzianum. Eur. Journal of Biochemistry. v. 265, p. 145–151, 1999. DEBNATH, D.; PAL, A. K.; SAHU, N. P.; JAIN, K. K.; YENGKOKPAM, S.; MUKHERJEE, S. C. Effect of dietary microbial phytase supplementation on growth and nutrient digestibility of Pangasius pangasius (Hamilton) fingerlings. Aquaculture Research, v. 36, p. 180-187, 2005. DODD, S. L.; LIECKFELDT, E.; SAMUELS, G. J. Hypocrea atroviridi ssp. nov., the teleomorph of Trichoderma atroviride. Mycologia, v. 95, n. 1, p. 27- 40, 2003. DORGE, T.; CARSTENSEN, J. M.; FRISVAD, J. C. Direct identification of pure Penicillium species using image analysis. Journal of Microbiological Methods, v. 41, p. 121-133, 2000. DOYLE, J. J.; DOYLE, J. L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, v. 19, p. 11-15, 1987. DRUZHININA, I. S.; KOPCHINSKIY, A. G.; KUBICEK, C. P. The first 100 Trichoderma species characterized by molecular data. Mycoscience, v. 47, p. 55-64, 2006. DRUZHININA, I. S.; KUBICEK, C. P. Species concepts and biodiversity in Trichoderma and Hypocrea: from aggregate species to species clusters? Journal of Zheijiang University Science B, v. 6, n. 2, p. 100-112, 2005. DRUZHININA, I. S.; SEIDL-SEIBOTH, V.; HERRERA-ESTRELLA, A.; HORWITZ, B. A.; KENERLEY, C. M.; MONTE, E.; MUKHERJEE, P. K.; ZEILINGER, S.; GRIGORIEV, I. V.; KUBICEK, C. P. Trichoderma: the genomics of opportunistic success, Nature Reviews Microbiology, v. 9, p. 749–759, 2011. ESPOSITO, E.; AZEVEDO, J. L. Fungos – Uma Introdução à biologia, bioquímica e biotecnologia. 2. ed. editora: Educs, 2010. 10-44 p. ETHUR, L. Z. Dinâmica populacional e ação de Trichoderma no controle de fusariose em mudas de tomateiro e pepineiro. 2006. 155 f. Tese (Doutorado) - Programa de Pós-Graduação em Agronomia. Universidade Federal de Santa Maria - Santa Maria, RS, 2006. 42 EUROPEAN COMMISSION. Collection of information on enzymes – final report.Contractno.B4-3040/2000/278245/MAR/E2, 2002. Disponível em: <http://ec.europa.eu/environment/archives/dansub/pdfs/enzymerepcomplete.pdf>. Acesso em: 20 ago. 2015. FERNANDES, M. L. M. et al. Hydrolysis and synthesis reactions catalysed by Thermomyces lanuginosa lipase in AOT/Isooctane reversed micellar system. Journal of Molecular Catalysis: Enzymatic, v. 30, p. 43-49, 2004. FERNANDES, M. L. M. Produção de Lípases por Fermentação no estado sólido e sua utilização em Biocatálise. Universidade Federal do Paraná, 2007. Disponível em: <http://dspace.c3sl.ufpr.br/dspace/bitstream/1884/10745/1/maria% 20luiza.PDF>. Acesso em: 19 ago. 2015. FRANCO, M. N. Produção de Celulases por Actinomicetos em Resíduos Agro Industriais, visando a Obtenção de Bioetanol. 2009. 70 f. Dissertação (Mestrado em Microbiologia) – Faculdade de Farmácia, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 2009. GAMS, W.; BISSET, J. Morphology and identification of Trichoderma. In: HARMAN, G.; KUBICET, C. P. (Eds.). Trichoderma and Gliocladium: Basic Biology, Taxonomy and Genetics. London: Taylor e Francis, 1998. 3-34 p. GARLIPP, A. B. Isolamento e identificação de fungos filamentosos do solo do Banhado Grande, na Estação Ecológica de Juréia-Itatins, SP. 1995. 92 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, 1995. GEREMIA, R., GOLDMAN, G. H., JACOBS, D., ARDILES, W., VILA, S. B., VAN-MONTAGU, M.; HERRERA-ESTRELLA, A. Molecular characterization of the proteinase encoding gene prb1, related to mycoparasitysm by Trichoderma harzianum, v. 8, p. 603-613, 1993. GERHARDT, J. A.; CARVALHO, I. F.; SILVA, M. L.; POLIZELI, M. L. T. M.; ALNOCH, R. C. Avaliação da atividade celulolítica de fungos filamentosos isolados de amostras de solo da região norte do estado de mato grosso. Enciclopédia Biosfera, Centro Científico Conhecer - Goiânia, v. 11 n. 21; p. 1971-1981, 2015. GERMANO, S.; PANDEY, A.; OSAKU, C. A.; ROCHA, S. N.; SOCCOL, C. R. Caracterization and stability of proteases from Penicillium sp. produced by solid-state fermentation, Enzyme and Microbial Technology, New York, v. 32, n. 2, p. 246-251, 2003. GOPINATH, S. C. B.; ANBU, P.; HILDA, A. Extracellular enzymatic activity profiles in fungi isolated from oil-rich environments. Mycoscience, v. 46, n. 2, p. 119-126, 2005. GUERRA, J. B. Melhoramento de Bacillus produtores de alfa-amilases, por fusão de protoplastos. 1991. 68 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte/MG, 1991. GUIMARÃES, L. H. S. et al. Screening of filamentous fungi for production of enzymes of biotechnological interest. Brazilian Journal of Microbiology, São Paulo, v. 37, n. 4, p. 474-480, 2006. 43 GUPTA, R.; GIGRAS, P.; MOHAPATRA, H.; GOSWAMI, V. K.; CHAUHAN, B. Microbial α-amylases: biotechnological perspective. Process Biochemistry, London, v. 38, n. 11, p. 1-18, 2003. HADDAR, A. et al. Low-cost fermentation medium for alkaline protease production by Bacillus mojavensis A21 using hulled grain of wheat and sardinella peptone, v. 110, n. 3, p. 288-294, 2010. HANKIN, L.; ANAGNOSTAKIS, S. L. The use of media for detection of enzymes production by fungi. Mycologia, New York, v. 67, n. 3, p. 597-607, 1975. HARGER, C.; SPRADA, D.; HIRATSUKA, E. Amilase Fúngica. In: Bioquímica das Fermentações. [S.l.]: [s.n.], 1982. 56 p. HARMAN, G. E.; HOWELL, C. R.; VITERBO, A.; CHET, I. E.; LORITO, M. Trichoderma species – Opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Reviews Microbiology, v. 2, n. 1, p. 43-56, 2004. HARMAN, G.E.; HERRERA-ESTRELLA, A.H.; HORWITZ, B.A; LORITO, M. Special issue: Trichoderma-from basic Biology to Biotechnology. Microbiology, v. 158, n. 1, p. 1-2, 2012. HERMOSA, M. R.; GRONDONA, I.; ITURRIAGA , E. A.; DIAZ-MINGUEZ, J. M.; CASTRO, C.; MONTE, E.; GARCIA-ACHA. Molecular Characterization and Identification of Biocontrol Isolates of Trichoderma spp. Applied and Environmental Microbiology, v. 66, n. 5, p. 1890-1898, 2000. HERMOSA, R.; RUBIO, M. B.; CARDOZA, R. E.; NICOLÁS, C.; MONTE, E.; GUTIÉRREZ, S. The contribution of Trichoderma to balancing the costs of plant growth and defense. International Microbiology, v. 16, p. 69-80, 2013. HERMOSA, R.; VITERBO, A.; CHET, I.; MONTE, E. Plant-beneficial effects of Trichoderma and of its genes. International Microbiology, v. 158, p. 17-25, 2012. HOOG, G. S; GUARRO, J.; GENE, J.; FIGUERAS, M. J. Atlas de hongosclínicos, 2ª ed, Ed CBS Utrece y the Netherlands, v. 2, p.1-1126, 2000. HOWELL, C. R. Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: The history and evolution of current concepts. Plant Disease, v. 87, n. 1, p. 4-10, 2003. INSTITUTO BRASILEIRO DE GEOGRAFIA E ESTATÍSTICA (IBGE), 2015. Disponível em: <http://www.ibge.gov.br>. Acesso em: 27 maio 2015. IRSHAD, M.; ANWAR, Z.; MAHMOOD, Z.; AQIL, T.; MEHMMOD, S.; NAWAZ, H. Bio-processing of agro-industrial waste orange peel for induced production of pectinase by Trichoderma viridi; its purification and characterization. Turkish Journal of Biochemistry, v. 39, n. 1, p. 9-18, 2014. 44 JEGANNATHAN, K. R.; NIELSEN, P. H. Environmental assessment of enzyme use in industrial production - a literature review. Journal of Cleaner Production, v. 42, p. 228-240, 2013. JONG S. C.; ATKINS W. B. Conservation, collection and distribution of cultures. In: Fungi Pathogenic for Humans and Animals. Pt B: Pathogenicity and Detection II (HDH Howard, ed), Marcel Dekker, Inc, New York, NY, USA, 1985. 153-194 p. JOSHI, C. P.; MANSFIELD, S. D. The cellulose paradox - simple molecule, complex biosynthesis. Current Opinion in Plant Biology, v. 10, p. 220-226, 2007. KASHYAP, D.R. et al. Applications of pectinases in the commercial sector: a review. Bioresource Technology, v. 77, p. 215-227, 2001. KHAN, M.; NAKKEERAN, E.; UMESH-KUMAR, S. Potential application of pectinase in developing functional foods. Annual Review of Food Science and Technology, v. 4, p. 21-34, 2013. KREDICS, L.; ANTAL, Z.; MANCZINGER, L.; SZEKERES, A.; KEVEI, F.; NAGY, E. Influence of environmental parameters on Trichoderma strains with biocontrol. Food Technology and Biotechnology, v. 41, n. 1, p. 37-42, 2003. KUBICEK C. P. The cellulase proteins of Trichoderma reesei: structure, multiplicity, mode of action and regulation of formation. Advances in biochemical engineering, biotechnology, v. 45, p. 1-27, 1992. KUBICEK, C. P. Systems biological approaches towards understanding cellulose production by Trichoderma reesei. Journal Biotechnol, v. 163, p. 133-142, 2013. KUMAR, K.; AMARESAN, N.; BHAGAT, S.; MADHURI, K.; SRIVASTAVA, R. C. Isolation and characterization of Trichoderma spp. for antagonistic activity against root rot and foliar pathogens. Indian Journal of Microbiology, v. 52, n. 2, p. 137-144, 2012. KUMAR, V.; SINHA, A. K.; MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. Dietary roles of phytate and phytase in human nutrition: A review. Food and Chemistry, v. 120, p. 945-959, 2010. KUNIEDA-ALONSO, S.; ALFENAS, A. C.; MAFFIA, L. A. Sobrevivência de micélio e escleródios de Rhizoctonia solani tratados com Trichoderma spp. em restos de cultura de Eucalyptus sp. Fitopatologia Brasileira, v. 30, n. 2, p. 164-168, 2005. KUTATELADZE, L.; ZAKARIASHVILI, N.; JOBAVA, M.; URUSHADZE, T.; KHVEDELIDZE, R.; KHOKHASHVILI, I. Selection of Microscopic Fungi - Pectinase Producers. Bulletin of The Georgian National Academy of Sciences, v. 3, n. 1, 2009. LARENA, I.; SALAZAR, O.; GONZALEZ, V.; JULIAN, M. C.; RUBIO, V. Design of a primer for ribosomal DNA internal transcribed spacer with enhanced specificity for ascomycetes. Journal of Biotechnology, v. 75, p. 187-194, 1999. LAXMAN, R. S. et al. Optimization and scale up of production of alkaline protease from Conidiobolus coronatus. Process Biochemistry, v. 40, p. 3152-3158, 2005. 45 LEHNINGER, A. L.; NELSON, D. L.; COX, M. M. Princípios de Bioquímica. 6. ed. São Paulo: Artmed, 2014. 1336 p. LEI, G. X.; PORRES, M. J. Phytase enzymology, applications, and biotechnology. Biotechnology Letters, v. 25, p. 1787-1794, 2003. LEITÃO, V. O.; LIMA, R. C. M.; VAINSTEIN, M. H.; ULHOA, C. J. Purification and characterization of an acid phosphatase from Trichoderma harzianum. Biotechnology Letters, v. 32, n. 8, p. 1083-1088, 2010. LIMA, M. C. R. Caracterização Bioquímica de uma fosfatase ácida produzida por Trichoderma harzianum. 2006. 54 f. Dissertação (Mestrado) Universidade Federal de Goiás, Instituto de Ciências Biológicas, Goiânia, 2006. LIU, B. L., RAFIQ, A., TZENG, Y. M. AND ROB, A. The induction and characterization of phytase and beyond. Enzyme and Microbial Technology, v.22, p. 415–424, 1998. LO, C.; HSIE, J.; PENG, K. Screening strains of Trichoderma spp. For decomposition of agriculture wastes. Phytopathology, v. 101, n. 6, p. 101-109, 2011. LORITO, M.; WOO, S.L.; HARMAN, G.E.; MONTE, E. Translational research on Trichoderma: from ‘Omics to the field. Annual Review of Phytopathol, v. 48, p. 395-417, 2010. MACHADO, M. F. D.; PARZIANELLO, R. F.; SILVA, F. C. A.; ANTONIOLLI, I. Z. Trichoderma no Brasil: O Fungo e O Bioagente. Revista de Ciências Agrárias, v. 35, n. 1, p. 274-288, 2012. MACIEL, M. H. C. Abordagem polifásica para identificação de linhagens de Aspergillus seção Nigri preservadas na micoteca URM e caracterização quanto a produção e purificação de poligalacturonases. 2013. 151 f. Tese (Doutorado em Biologia de Fungos) – Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2013. MAEDA, R. N.; SERPA, V. I.; ROCHA, V. A. L.; MESQUITA, R. A. A.; SANTA ANNA, L. M. M.; CASTRO, A. M. de; DRIEMEIER, C. E.; PEREIRA Jr, N.; POLIKARPOV, I. Enzymati chydrolysis of pretreated sugar cane bagasse using Penicillium funiculosum and Trichoderma harzianum cellulases. Process Biochemistry, v. 46, p. 1196-1201, 2011. MAHAJAN, R. T.; BADGUJAR, S. B. Biological aspects of proteolytic enzymes: a review, Journal of Pharmacy Research, v. 3, n. 9, p. 2048-2068, 2010. MALLER, A. Produção, purificação e caracterização do complexo pectinolítico do fungo Aspergillus niveus. 2008. 98 f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Ribeirão Preto/SP, 2008. MARQUES, S. F. F. Biotecnologia enzimática: produção de complexo multienzimático de Trichoderma harzianum e sua aplicação na alimentação de frangos de corte. 2007. 92 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Goiás, Goiânia, 2007. 46 MARTINS, C. Y. S. Promoção de Crescimento e Colonização Radicular por Trichoderma spp. em Pinhão Manso (Jatropha curcas L.) e Mamoneira (Ricinus cmmunis L.). 2010. 80 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal do Recôncavo da Bahia, 2010. MELO, I. S. Potencialidades de utilização de Trichoderma spp. no controle biológico de doenças de plantas. In: BETTIOL. W. (Org) Controle biológico de doenças de plantas. Jaguariúna: EMBRAPA-CNPMA, p. 135-156, 1991. MELO, I. S.; COSTA, F. G. Desenvolvimento de uma formulação granulada a base de Trichoderma harzianum para controle de fitopatógenos. Jaguariúna: Embrapa Meio Ambiente, Comunicado Técnico 31, 2005. MENDONZA, D. P. G. Variações do secretoma de Trichoderma harzianum em resposta a diferentes fontes de carbono. 2009. 80 f. (Mestrado) - Biologia Celular, Universidade de Brasília, 2009. MENEZES, J. P.; LUPATINI, M.; ANTONIOLLI, Z. I.; BLUME, E.; JUNGES, E.; MANZONI, C. G.Variabilidade Genética na Região ITS do rDNA DE ISOLADOS DE Trichoderma spp. (Biocontrolador) e Fusarium Oxysporum f. sp. Chrysanthemi. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 34, n. 1, p. 132-139, 2010. MITIDIERI, S., et al. Detergentes biológicos biodegradáveis: avaliação das formulações do mercado. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, v. 26, p. 56-60, 2002. MUKESH KUMAR, D. J. et al. Production and Optimization of Pectinase from Bacillus sp. MFW7 using Cassava Waste. Asian Journal of Plant Science and Research, v. 2, n. 3, p. 369-375, 2012. MUKHERJEE, P. K.; HORWITZ, B. A; HERRERA-ESTRELLA, A.; SCHMOLL, M.; KENERLEY, C. M. Trichoderma Research in the genome era. Annual Review of Phytopathology, v. 51, p. 105-129, 2013. MURO, M. A.; LUCHI, M. R. Preservação de Micro-organismos. Fundação Tropical de Pesquisas e Tecnologia “André Tosello”. Campinas, 1989. 92 p. NABI, N. G.; ASGHER, M.; SHAH, A. H.; SHEIKH, M. A.; ASAD, M. J. Production of pectinase by Trichoderma harzianum in solid state fermentation of citrus peel, v. 40, p. 3-4, 2003. NC-IUBMB, Nomenclature Committee of the International Union of Biochemistry and Molecular Biology. Enzyme nomenclature. San Diego: Academic Press, 1992. 862 p. NEIROTTI, E.; AZEVEDO, J. L. Técnica semiquantitativa de avaliação da produção de celulases em Humicola sp. Revista de Microbiologia, v. 19, p. 78-81, 1988. NOGUEIRA, E. B. S; CAVALCANTI, M. A. Q. Cellulolytic fungi isolated from process edoats. Revista de Microbiologia, v. 27, n. 1, p. 7-9, 1996. 47 ORLANDELLI, R. C.; SPECIAN, V.; FELBER, A. C.; PAMPHILE, J. A. Enzimas de interesse industrial: Produção por fungos e aplicações. Revista de Saúde e Biologia, v.7, n.3, p. 97-109, 2012. PANDEY, A.; WEBB, C.; SOCCOL, C. R.; LARROCHE, C. Enzyme Technology. New Delhi: Asiatech Publishers, 2005. 760 p. PARIS, L. D. Produção de enzimas fúngicas por fermentação em estado sólido das sojas orgânica, transgênica e convencional. 2008. 115 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Universidade Estadual do Oeste do Paraná, Toledo, 2008. PASHA, K. M.; ANURADHA, P.; RAO, D. S. Screening of a pectinolytic fungal strain; Aspergillus foetidus MTCC 10367 for the production of multiple enzymes of industrial importance. International Journal of Pharma and Bio Sciences, v. 4, n. 2, p. 1205-1209, 2013. PEIXOTO NETO, P. A. S.; AZEVEDO, J. L.; ARAÚJO, W. L. Micro-organismos endofíticos: interação com as plantas e potencial biotecnológico. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento, Brasília, n. 29, p. 62-76, 2002. PEKKARINEN, A., et al. Production of proteases by Fusarium species grown on barley grains and in media containing cereal proteins. Journal of Cereal Science, London, v. 31, n. 3, p. 253-261, 2000. PEREDA, J. A. O.; RODRÍGUES, M. I. C.; ÁLVAREZ, L. F.; SANZ, M. L. G.; MINGUILLÓN, G. D. G. F.; PERALES, L. H.; CORTECERO, M. D. S. Tecnologia de Alimentos- Componentes dos Alimentos e Processos, v. 1, Porto Alegre: Artmed, 2005. PERES, E.; MELO, I. S. Variabilidade entre isolados de Trichoderma harzianum. I-aspectos citológicos. Scientia Agrícola, v. 52, p. 56-59, 1995. PIKOVSKAYA, R. J. Mobilization of phosphorous in soil in connection with vital activity of some microbial species. Mikrobiologiya, New York, v.17, p. 362-370, 1948. POINTING, S. B. Qualitative methods for the determination of lignocellulolytic enzyme production by tropical fungi. Fungal Diversity, v. 2, p. 17-33, 1999. POZO, M. J., BAEK, J. M., GARCIA, J. M.; KENERLEY, C. M. Functional analysis of tvsp1, a serine protease-encoding gene in the biocontrol agent Trichoderma virens. Fungal Genetics and Biology, v. 41, p. 336-348, 2004. QUALHATO, T. F. Avaliação do perfil enzimático e expressão gênica de cinco espécies de Trichoderma e potencial antagônico contra Fusarium solani, Rhizoctonia solani e Sclerotinia sclerotiorum. 2013. 99 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Goiás, Goiânia, 2013. RAVEN, P. H.; EVERT, R. F.; EICHHORN, S. E. Biologia Vegetal. 7. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2007. 856 p. RAWLINGS, N. D.; TOLLE, D. P.; BARRETT A. J. Evolutionary families of peptidase inhibitors. Biochemical Journal, v. 378, p. 705-716, 2004. 48 RIFAI, M.A. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers, Wallingford, v. l16, p.1-56, 1969. RUEGGER, M. J. S. Atividade Enzimática e Produção de Ácido Gama- Linolênico por Fungos Filamentosos Isolados de Solo, da Estação Ecológica de Juréia-ITATINS, SP. 2001. 98 f. Tese (Doutorado) – Universidade Estadual Paulista, 2001. RUEGGER, M. J. S.; TAUK-TORNISIELO, S. M. Atividade da celulase de fungos isolados do solo da Estação Ecológica de Juréia-Itatins, São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Botânica, v. 27, n. 2, p. 205-211, 2004. SAID, S.; PIETRO, R. C. L. R. Enzimas como agentes biotecnológicos. Ribeirão Preto: Legis Summa, v. 1, p. 416, 2004. SALMON, D. N. X. Desenvolvimento de um bioprocesso para a produção, caracterização e recuperação da fitase de Schizophyllum commune obtida por fermentação em estado sólido. 2011. 107 f. Dissertação (Mestrado em Processos Biotecnológicos) – Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 2011. SAMSON, R. A.; HOUBRAKEN, J.; THRANE, U.; FRISVAD, J. C.; ANDERSEN, B. 2010, Food and Indoor Fungi, Vol. 2., CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre. Utrecht, Netherlands. SAMUELS, G. J. Trichoderma: A guide to identification and biology. Beltsville: USDA/ARS, p.54, 2006a. SAMUELS, G. J. Trichoderma: a review of biology and systematics of the genus. Mycology Research, v. 100, p. 923-935, 1996. SAMUELS, G. J.; CHAVERRI, P.; FARR, D. F.; MCCRAY, E. B. (n.d.) Trichoderma Online, Systematic Botany e Mycology Laboratory, ARS, USDA. Disponível em: <http://nt.ars-grin.gov/taxadescriptions/keys/TrichodermaIndex.cfm>. Acesso em: 2 Set. 2015. SAMUELS, G. J.; ISMAIEL, A.; BOM, M. C.; RESPINIS, S.; PETRINI, O. Trichoderma asperellum sensulato consists of two cryptic species. Mycologia, v.102, n. 4, p. 944-966, 2010. SAMUELS, G. J.; ISMAIEL, A.; MULAW, T. B.; SZAKACS, G.; DRUZHININA, I. S.; KUBICEK, C.P.; JAKLITSCH, W. M. The Longibrachiatum Clade of Trichoderma: a revision with new species. Fungal Diversity, v. 55, p. 77-108, 2012. SAMUELS, G.J., LIECKFELDT, E., NIREMBERG, H.I. Trichoderma asperellum, a new species with warted conidia, and redescription of T. viride. Sidowia, v. 51, n. 1 p. 71-88, 1999. SANT’ANNA JUNIOR, G. L. Produção de enzimas microbianas. In: LIMA, U. A.; AQUARONE, E.; BORZANI, W.; SCHMIDELL, W. (Coords.). Biotecnologia industrial - processos fermentativos e enzimáticos. São Paulo: Edgard Blücher Ltda., 2001. 351-362 p. 49 SANTANA, R. S. M. Produção de enzimas amilolíticas através da fermentação emestado sólido. 2012. 73 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia de Alimentos) – Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia, Itapetinga - BA, 2012. SANTOS M. V. O. Phytophthora spp.em cultivos diversos no sul da Bahia e identificação de agentes de biocontrole a estes patógenos. 2010. 105 f. (Dissertação em Produção Vegetal) – Universidade Estadual de Santa Cruz, Ilhéus - BA, 2010. SAVITHA, S.; SADHASIVAM, S.; SWAMINATHAN, K.; LIN, F. H. Fungal protease: Production, purification and compatibility with laundry detergents and their wash performance. Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers, v. 42, p. 298-304, 2011. SCHMITZ A, RIESNER, D. Purification of nucleic acids by selective precipitation with polyethylene glycol 6000. Analytical Biochemistry, v. 354, n. 2, p. 311-313, 2006. SCHUSTER, A.; SCHMOLL, M. Biology and biotechnology of Trichoderma. Applied Microbiology and Biotechnology, v. 87, n. 3, p. 787-799, 2010. SELLE, P. H.; RAVINDRAN, V. Microbial phytase in poultry nutrition. Animal Feed Science and Technology, v. 135, p. 1-41, 2007. SHOUKOUHI, P.; BISSETT, J. Preferred primers for sequencing the 5’ end of the translation elongation factor 1-alpha gene (eEF1a1). 2008, ISTH Available from: http://www.isth.info/methods. SIDDIQUEE, S.; TAN, S. G.; YUSUF, U. K.; FATIHAH, N. H. N.; HASAN, M. M. Characterization of Malaysian Trichoderma isolates using random amplified microsatellites (RAMS). Molecular Biology Reports, published online, v. 39, p. 715-722, 2011. SILVA, R. L. O.; LUZ, J. S. L.; SILVEIRA, E. B.; CAVALCANTE, U. M. T. Fungos endofíticos em Annona spp.: isolamento, caracterização enzimática e promoção do crescimento em mudas de pinha (Annonas quamosa L.). Acta Botanica Brasilica, Feira de Santana, v. 20, n. 3, p. 649-655, 2006. ŠIMKOVIČ, M.; KURUCOVÁ, A.; HUNOVÁ, M.; VAREČKA, Ľ. Induction of secretion of extracellular proteases from Trichoderma viride. Acta Chimica Slovaca, v.1, n. 1, p. 250-264, 2008. SIMÕES, M. F.; SANTOS, C.; LIMA, N. Structural Diversity of Aspergillus Section Nigri Spores. Microscopy Microanalysis, v. 19, p. 1-8, 2013. SIMÕES, M. L. G.; TAUK-TORNISIELO, S. M. Comparação da técnica tradicional e do método turbidimétrico automatizado no cultivo em diferentes fontes de carbono de fungos filamentosos isolados de solo de área de caatinga. Holos Environment, v. 5, n. 2, p. 94-103, 2005. SMITH, O.; ONIONS, A.H.S. Preservation and Maintaince of Living Fungi. CAB International, UK, 1994. 50 SOARES, I. A et al. Identification of the amylolytic potential of mutant strains of the filamentous fungi Aspergillus nidulans. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 30, n. 3, p. 700-705, 2010. SOCCOL, C. R.; ROJAN, P. J.; PATEL, A. K.; WOICIE-CHOWSKI, A. L.; VANDENBERGHE, L. P. S.; PANDEY, A. Glucoamylase. In: Enzyme Technology. New Delhi: Asiatec Publishers Inc., p. 221-230, 2005. SOUZA, P. M. Produção de proteases por fungos filamentosos isolados do cerrado do centro-oeste brasileiro. 2015. 133 f. Tese (Doutorado) – Universidade de São Paulo, São Paulo, 2015. SOUZA, P. M.; MAGALHÃES, P. O. Application of microbial α-amylase in industry – a review. Brazilian Journal of Microbiology, São Paulo, v. 41, n. 4, p. 850- 861, 2010. STAMFORD, T. L. M.; ARAÚJO, J. M.; STAMFORD, N. P. Enzymatic Activity of microorganisms isolated from yam bean legume (Pachyrhizus erosus L. Urban) (Pachyrhizus erosus L. Urban). Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 18, p. 382-385, 1998. STROPARO, E. C.; BEITEL, S. M.; RESENDE, J. T. V.; KNOB, A. Seleção de fungos filamentosos e de resíduos agroindustriais para a produção de enzimas de interesse biotecnológico. Semina: Ciências Agrárias, Londrina, v. 33, n. 6, p. 2267-2278, 2012. SUÁREZ, M. B. et al. Characterization of genes encoding novel peptidases in biocontrol fungus Trichoderma harzianum CECT 2413 using the TrichoEST funcional genomics approach. Current Genetics, v. 51.p. 331-342, 2007. SUMANTHA, A. et al. Production and partial purification of a neutral metaloprotease by fungal mixed substrate fermentation. Food Technology and Biotechnology, Zagreb, v. 43, n. 4, p. 313-319, 2005. TAI, M.; STEPHANOPOULOS, G. Engineering the push and pull of lipid biosynthesis in oleaginous yeast Yarrowia lipolytica for biofuel production.Metabolic Engineering, v.15, p. 1-9, 2013. TAMURA, K.; PETERSON D.; PETERSON N.; STECHER G.; NEI M.; KUMAR S MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. Molecular Biology and Evolution, 2011. TORTORA, G. J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. Microbiologia, 10. ed. Artmed, 2012. 330 p. TRALAMAZZA, S. M. Validação da técnica de espectroscopia no infravermelho na taxonomia e sistemática do gênero Aspergillus. 2011. 87 f. Dissertação (Mestrado em Microbiologia, Parasitologia e Patologia) – Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 2011. UEDA, S.; FUJIO, Y.; LIM, J.Y. Production and some properties of pectic enzymes from Aspergillus oryzaeA-3. Journal of Applied Biochemistry, v. 4, p. 524-532, 1982. 51 UENOJO, M; PASTORE, G. M. Pectinases: aplicações industriais e perspectivas. Química Nova, v. 30, n. 2, p. 388-394, 2007. VARGA, J.; FRISVAD, J. C.; KOCSUBÉ, S.; BRANKOVICS, B.; TÓTH, B.; SZIGETI, G.; SAMSON, R. A. New and revisited species in Aspergillus section Nigri. Studies in Mycology, v. 69, p. 1-17, 2011. VITERBO, A. et al., Significance of lytic enzymes from Trichoderma ssp. in the biocontrole of fungal plant pathogens. Antonievon Leewenhoek, v. 81, p. 549-556, 2002. WANDERLEY, M. D.; NEVES, E.; ANDRADE, C. J. Revisão: Aspectos da produção industrial de enzimas. Revista Ciência, Tecnologia, Inovação e Oportunidade, v. 1, n. 1, p. 44-50, 2011. WEEDEN, C. R.; SHELTON, A. M.; HOFFMAN, M. P. Biological Control: A guideto natural enemies in North America. Geneva: Cornell University, 2008. WHITE, T. J.; BRUNS, T.; LEE, S.; TAYLOR, J. (1990) Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: PCR Protocols: a guide to methods and applications. (Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ, eds). Academic Press, New York, USA: 315–322 p. WIDSTEN, P.; KANDELBAUER, A.; Laccase applications in the Forest produtcts industry: A review. Enzyme and Microbialogy Technology, v. 42, p. 293-307, 2008. YADAV, S.; YADAV, P. K.; YADAV, D.; YADAV, K. D. S. Pectin Liase: A review. Process Biochemistry, v. 44, n. 1, p. 1-10, 2009. YODER, J. A.; GLENN, B. D.; BENOIT, J. B.; ZETTLERL, W. The giant Madagascar hissing cockroach (Gromphadorhina portentosa) as a source of antagonistic moulds: concerns arising from its use in a public setting. Mycoses, v. 51, n. 2, p. 95–98, 2008https://tede.ufrrj.br/retrieve/4921/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/19600/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/25899/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/32316/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/38738/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/45096/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/51504/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/retrieve/57964/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpghttps://tede.ufrrj.br/jspui/handle/jspui/1631Submitted by Celso Magalhaes (celsomagalhaes@ufrrj.br) on 2017-05-12T11:13:08Z No. of bitstreams: 1 2016 - Michele Rodrigues Francisco.pdf: 1285744 bytes, checksum: 598c2fe8a98038b9745debaf13625959 (MD5)Made available in DSpace on 2017-05-12T11:13:08Z (GMT). No. of bitstreams: 1 2016 - Michele Rodrigues Francisco.pdf: 1285744 bytes, checksum: 598c2fe8a98038b9745debaf13625959 (MD5) Previous issue date: 2016-05-20info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJinstname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)instacron:UFRRJTHUMBNAIL2016 - Michele Rodrigues Francisco.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1943https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/1/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpgcc73c4c239a4c332d642ba1e7c7a9fb2MD51TEXT2016 - Michele Rodrigues Francisco.pdf.txtExtracted Texttext/plain157434https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/2/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.txt6005bc3814ac890c40767f480feaef8fMD52ORIGINAL2016 - Michele Rodrigues Francisco.pdf2016 - Michele Rodrigues Franciscoapplication/pdf1285744https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/3/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf598c2fe8a98038b9745debaf13625959MD53LICENSElicense.txttext/plain2089https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/4/license.txt7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7MD5420.500.14407/110332023-12-21 22:45:51.416oai:rima.ufrrj.br:20.500.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Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttps://tede.ufrrj.br/PUBhttps://tede.ufrrj.br/oai/requestbibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.bropendoar:2023-12-22T01:45:51Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)false
dc.title.por.fl_str_mv Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
dc.title.alternative.eng.fl_str_mv Selection and identification of Trichoderma spp. and potential for industrial enzymes production
title Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
spellingShingle Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
Francisco, Michele Rodrigues
filamentous fungi
Biotechnology
morphological identification
molecular identification
enzyme production
Fungos filamentosos
Biotecnologia
Identificação morfológica
Identificação molecular
Produção de enzimas
Ciência e Tecnologia de Alimentos
title_short Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
title_full Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
title_fullStr Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
title_full_unstemmed Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
title_sort Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais
author Francisco, Michele Rodrigues
author_facet Francisco, Michele Rodrigues
author_role author
dc.contributor.author.fl_str_mv Francisco, Michele Rodrigues
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Fraga, Marcelo Elias
dc.contributor.advisor1ID.fl_str_mv 912.640.147-91
dc.contributor.advisor1Lattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/2870225310866138
dc.contributor.referee1.fl_str_mv Valadão, Rômulo Cardoso
dc.contributor.referee2.fl_str_mv Silva, Otniel Freitas
dc.contributor.authorID.fl_str_mv 8911742732
dc.contributor.authorLattes.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/4039280395042650
contributor_str_mv Fraga, Marcelo Elias
Valadão, Rômulo Cardoso
Silva, Otniel Freitas
dc.subject.eng.fl_str_mv filamentous fungi
Biotechnology
morphological identification
molecular identification
enzyme production
topic filamentous fungi
Biotechnology
morphological identification
molecular identification
enzyme production
Fungos filamentosos
Biotecnologia
Identificação morfológica
Identificação molecular
Produção de enzimas
Ciência e Tecnologia de Alimentos
dc.subject.por.fl_str_mv Fungos filamentosos
Biotecnologia
Identificação morfológica
Identificação molecular
Produção de enzimas
dc.subject.cnpq.fl_str_mv Ciência e Tecnologia de Alimentos
description Os Trichoderma spp. não são fungos patogênicos e se desenvolvem em diversificados substratos e condições ambientais. Sua identificação baseada apenas em características morfológicas é considerada complexa, por conta da diversidade genética das espécies. Portanto, a taxonomia do gênero Trichoderma é realizada com o auxílio de outras análises, tais como bioquímicas e moleculares. Algumas espécies são capazes de produzir elevadas quantidades de enzimas extracelulares envolvidas na hidrólise de polissacarídeos, sendo assim considerados fungos com alto potencial na produção de enzimas hidrolíticas. O objetivo deste estudo foi selecionar e identificar as espécies do gênero Trichoderma spp. e avaliar a produção de enzimas industriais destes isolados. Foram identificados 58 isolados de fungos Trichoderma spp. de solo e plantas por análise morfológica, molecular e também foi avaliado a capacidade de produção enzimática. A Tecnologia enzimática é uma área promissora dentro das novas tecnologias para síntese de compostos que possuem alto valor agregado, onde os processos industriais biocatalisados apresentam menor impacto ambiental, menor custo de energia, pois as enzimas são substâncias biodegradáveis e possuem especificidade que minimizam os efeitos indesejáveis. Neste trabalho, foi utilizado meio de cultura BDA para desenvolvimento dos fungos. A identificação morfológica foi realizada com auxílio da chave de identificação de acordo com Samuels et al. (2015) e molecular, realizada através da extração de DNA do micélio dos fungos, de acordo com protocolo CTAB. Para as análises enzimáticas, foram realizados ensaios qualitativos, utilizado meio de cultura sólido específico para avaliar a produção de enzimas hidrolíticas: Onde os meios de cultura continham como substrato para desenvolvimento e produção enzimática dos isolados de Trichoderma spp. leite desnatado para produção de peptidase; amido solúvel para produção de amilase, carboximetilcelulose para produção de celulase, pectina cítrica para produção de pectinases e extrato de levedura, dextrose, sulfato ferroso, amônio, magnésio, manganês e cloreto potássio para produção de fitase. De acordo com os resultados, a análise morfológica identificou 4 espécies, tais como: T. atroviride, T. asperelloide, T. harzianum, T. longibrachiatum, estas espécies foram confirmadas por análise molecular. Já com relação ao potencial enzimático, o resultado foi negativo para a atividade das enzimas peptidase, celulase e pectinase e positivo para amilase, e para a atividade da enzima fitase, somente um isolado apresentou resultado positivo, este foi identificado de acordo com análise morfológica como sendo da espécie T. longibrachiatum
publishDate 2016
dc.date.issued.fl_str_mv 2016-05-20
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2023-12-22T01:45:51Z
dc.date.available.fl_str_mv 2023-12-22T01:45:51Z
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/masterThesis
format masterThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv FRANCISCO, Michele Rodrigues. Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais. 2016. 53 f. Dissertação (Mestrado em Ciência e Tecnologia de Alimentos) - Instituto de Tecnologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2016.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11033
identifier_str_mv FRANCISCO, Michele Rodrigues. Seleção e identificação de Trichoderma spp. e potencial para produção de enzimas industriais. 2016. 53 f. Dissertação (Mestrado em Ciência e Tecnologia de Alimentos) - Instituto de Tecnologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2016.
url https://rima.ufrrj.br/jspui/handle/20.500.14407/11033
dc.language.iso.fl_str_mv por
language por
dc.relation.references.por.fl_str_mv ABRAHÃO NETO, J. Algumas aplicações de enzimas. In: LIMA, U. A.; AQUARONE, E.; BORZANI, W.; SCHMIDELL, W. (Coords.). Biotecnologia industrial – processos fermentativos e enzimáticos. São Paulo: Edgard Blücher Ltda, 2001. 405-412 p. ABREU, J. A. S.; ROVIDA, A. F. S.; PAMPHILE, J. A. Fungos de interesse: Aplicações biotecnológicas. Revista UNINGÁ Review, v. 21, n. 1, p. 55-59, 2015. AGUIAR, C. M. Hidrólise enzimática de resíduos lignocelulósicos utilizando celulases produzidas pelo fungo Aspergillus niger. 2010. 118 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Universidade Estadual do Oeste do Paraná, Paraná, 2010. ALBERTS, B.; BRAY, D.; LEWIS, J.; RAFF, M.; ROBERTS, K.; WATSON, J. D. Biologia molecular da célula. Porto Alegre: Artes Médicas. 1997. 1396p. ALEXOPOULOS, C. J.; MIMS, C. W.; BLACKWELL, M. Introductory Mycology. In: (Ed.). 4. New York: John Wiley Sons, Inc., 1996. ALVES, N. M. Produção de fitase por fungo endofítico. 2014. 60 f. Dissertação (Mestrado em Microbiologia Agrícola) – Universidade Federal de Lavras, Minas Gerais/MG, 2014. ANDRADE, R. L. P.; MARTINS, J. F. P. Influência da adição da fécula de batata-doce (Ipomoea batatas L.) sobre a viscosidade do permeado de soro de queijo. Ciência e Tecnologia de Alimentos, Campinas, v. 22, n. 3, p. 249-253, 2002. ANISA, S. K.; GIRISH, K. Pectinolytic Activity of Rhizopus sp., and Trichoderma viride. International Journal of Research in Pure and Applied Microbiology, v. 4, n. 2, p. 28-31, 2014. ATMAJA, D. S.; KHAIRUL, W. Isolasi, purifikasi dan karakterisasi α – amilase dari Trichoderma viride FNCC 6013. Chemical Information, v. 1, n. 1, p. 85-93, 2013. AZEVEDO, A. M. C.; De MARCO, J. L.; FELIX, C. R. Characterization of amylase produced by a Trichoderma harzianum isolate with antagonistic activity against Crinipellis perniciosa, the causal agent of witches broom of cocoa. Microbiology Letters, v. 188, p. 171-175, 2000. BAILEY, M. J.; PESSA, E. Strain and process for production of polygalacturonase. Enzyme Microbial Technology, v. 12, n. 4, p. 266-271, 1990. BALI, A.; SATYNARAYNA, T. Microbiol phytases in nutrition and combating phosphorus pollution. Everyman’s Science, v. 4, p. 207-209, 2001. BARBOSA, M. A. G.; REHN, K. G.; MENEZES, M.; R. L. R. MARIANO. Antagonism of Trichoderma species on cladosporium herbarum and their enzymatic characterization. Brazilian Journal of Microbiology, v. 32, p. 98-104, 2001. 39 BASSO, T. P.; GALLO, C. R.; BASSO, L. C. Atividade celulolítica de fungos filamentosos isolados de bagaço de cana de açúcar e madeira em decomposição. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 45, n. 11, p. 1282-1289, 2010. BATEMAN, D. F.; BASHAM, H. G. Degradation of plant-cell walls and membranes by microbial enzymes. In: HEITEFUSS R.; WILLIAMS, P. H. (Eds.). Encyclopedia of Plant Physiology. New Series: Physiological Plant Pathology. New York: Springer-Verlag, 2001. 316-355 p. BCC RESEARCH – MARKET FORECASTING. 2014. Enzymes in Industrial Applications: Global Markets. Disponível em: <http://www.bccresearch.com/market-research/biotechnology/enzymes-industrial-applications-bio030h.html>. Acesso: 18 ago. 2015. BENÍTEZ, T. L. C.; DELGADO-JARANA, J.; REY, M. Glucanolytic and other enzymes and their genes. In: Harman G E, Kubicek C, editors; Harman G E, Kubicek C, editors. Trichoderma and Gliocladium: enzymes, biological control and commercial applications. London, United Kingdom: Taylor and Francis, v. 2, p. 101-127, 1998. BHAT, M. K. Cellulases and related enzymes in biotechnology. Biotechnology Advances, v.18, n. 5, p. 355-383, 2000. BHAT, M. K.; BHAT, S. Cellulose degrading enzymes and their potential industrial applications. Biotechnology Advances, v. 15, n. (3/4), p. 583-620, 1997. BISSET, J. A revision of the genus Trichoderma. I. Section Longibrachiatum sect. Nov. Canadian Journal of Botany, v. 62, p. 924-31, 1984. BISSETT, J. A revision of the genus Trichoderma spp., Infrageneric classification Canadian Journal of Botany, v. 69, p. 2357-2372, 1991. BOHN, L.; MEYER, A.; RASMUSSEN, S. Phytase: impact on environment and human nutrition. A challenge for molecular breeding. Journal of Zhejiang University Science B, v. 9, p. 165-191, 2008. BOMFIM, M. P.; SÃO JOSÉ, A. R.; REBOUÇAS, T. N. H.; ALMEIDA, S. S.; SOUZA, I. V. B; DIAS, N. O. Avaliação antagônica in vitro e in vivo de Trichoderma spp. a Rhizopus stolonifer em maracujazeiro amarelo. Summa Phytopathol, v. 36, n. 1, p. 61-67, 2010. BON, E. P. S.; PEREIRA J. R., N.; GOTTSCHALK, L. M. F.; SÁ-PEREIRA, P.; ROSEIRO, J. C.; FERRARA, M. A. Bioprocessos para a produção de enzimas. In: BON, E. P. S.; FERRARA, M. A. A.; CORVO, M. L. (Eds.). Enzimas em Biotecnologia: produção, aplicações e mercado. Rio de Janeiro: Interciência, 2008. 95-122 p. BON, E. P.; VERMELHO, A. B. Queratinases. Enzimas como Agentes Biotecnológicos. 1. ed. Rio de Janeiro, Legis Summa, 2004. BORGES, J. G; COSTA, L. A. S; DRUZIAN, J. I. Produção e caracterização de biomassa extracelular obtida por fermentação submersa usando Lasidioplodia theobromae isolado do cacau. Polímeros, v. 24, n. 1, p. 52-57, 2014. 40 BORTOLAZZO, N. G. Isolamento e seleção de fungos celulolíticos para hidrólise enzimática do bagaço de cana-de-açúcar. 2011. 76 f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”- ESALQ/USP, Piracicaba, 2011. BOSWELL, G. P.; JACOBS, H.; DAVIDSON, F. A.; GADD, G. M.; RITZ, K. Growth and Function of Fungal Mycelia in Heterogeneous Environments. Bulletin of Mathematical Biology, Elmsford, v. 65, n. 3, p. 447-477, 2003. BRAÚNA, L. M. Controle Biológico do Mofo Branco por Isolados de Trichoderma nas Culturas de Soja e Feijão Comum. 2011. 94 f. (Dissertação em Fitopatologia) – Universidade de Brasília - DF, 2011. BROTMAN, Y.; GUPTA, J. K.; VITERBO, A. Trichoderma. Current Biology, v. 20, p. 390-391, 2010. BRUNS, T. D.; WHITE, T. J.; TAYLOR, J. W. Fungal molecular systematics. Annual Review of Ecology and Systematics, v. 22, p. 525-64, 1991. CASTRO, A. M; PEREIRA, N. J. Produção, propriedades e aplicação de celulases na hidrólise de resíduos agroindustriais. Química Nova, v. 33, n. 1, p. 181-188, 2010. CELESTINO, S. M. C. et al. Purification and characterization of a novel pectinase from Acrophialophora nainiana with emphasis on its physicochemical properties. Journal of Biotechnology, v. 123, n. 1, p. 33-42, 2006. CHANDRA, M.; KALRA, A.; SHARMA, P.K.; KUMAR, H.; SANGWAN, R.S. Optimization of cellulases production by Trichoderma citrinoviride on mark of Artemisia annua and its application for bioconversion process. Biomass and Bioenergy. v. 34, n. 5, p. 805-811, 2010. CHAVERRI, P.; CASTLEBURY, L. A.; SAMUELS, G. J.; GEISER, D. M. Multilocus phylogenetic structure within the Trichoderma harzianum/Hypocrea lixii complex. Mol Phylogenet Evol, v. 27, n. 2, p. 302-313, 2003b. CHAVERRI, P.; SAMUELS, G. J. Hypocrea/Trichoderma (Ascomycota, Hypocreales, Hypocreaceae): Species with green ascospores. Studies in Mycology, v. 48, p. 101-119, 2003. CHEN, B. Y.; JANES, H. W. PCR Cloning Protocols. Second edition. New Brunswick, NJ: Humana Press, 2002. CHUNG, T. K.; RUTHERFURD S. M.; THOMAS D. V.; MOUGHAN, P. J. Effect of two microbial phytases on mineral availability and retention and bone mineral density in low-phosphorus diets for broilers. British Poultry Science, v. 54, p. 362-373, 2013. COLEN, G. Isolamento e seleção de fungos filamentosos produtores de lipases. 2006. 206 f. Tese (Doutorado em Ciência de Alimentos) – Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte, 2006. COLONIA, B. S. O.; CHAGAS JUNIOR, A. F. Screening and detection of extra cellular celulases (Endo – and Exo- glucanases) seecreted by filamentous fungi isolated from 41 soils using rapid tests with chromogenic dyes. African Journal of Biotechnology, v. 13, n. 52, p. 4694-4701, 2014. CROUS, P. W.; VERKLEY, G. J. M.; GROENEWALD, J. Z.; SAMSON, R. A. 2009, Fungal Biodiversity. Vol. 1, CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, Utrecht, Netherlands. CUNHA, M. C.; MONTEIRO, P. S.; MENDES, F. Q. Caracterização bioquímica de fitases produzidas por fungos isolados na região do Alto Paranaíba em Minas Gerais. Revista Acadêmica: Ciência Animal, v. 13, p. 61-69, 2015. DE LA CRUZ, J.; A. LLOBELL. Purification and properties of a basic endo-β- 1, 6-glicanase (BGN16.1) from the antagonistic fungus Trichoderma harzianum. Eur. Journal of Biochemistry. v. 265, p. 145–151, 1999. DEBNATH, D.; PAL, A. K.; SAHU, N. P.; JAIN, K. K.; YENGKOKPAM, S.; MUKHERJEE, S. C. Effect of dietary microbial phytase supplementation on growth and nutrient digestibility of Pangasius pangasius (Hamilton) fingerlings. Aquaculture Research, v. 36, p. 180-187, 2005. DODD, S. L.; LIECKFELDT, E.; SAMUELS, G. J. Hypocrea atroviridi ssp. nov., the teleomorph of Trichoderma atroviride. Mycologia, v. 95, n. 1, p. 27- 40, 2003. DORGE, T.; CARSTENSEN, J. M.; FRISVAD, J. C. Direct identification of pure Penicillium species using image analysis. Journal of Microbiological Methods, v. 41, p. 121-133, 2000. DOYLE, J. J.; DOYLE, J. L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, v. 19, p. 11-15, 1987. DRUZHININA, I. S.; KOPCHINSKIY, A. G.; KUBICEK, C. P. The first 100 Trichoderma species characterized by molecular data. Mycoscience, v. 47, p. 55-64, 2006. DRUZHININA, I. S.; KUBICEK, C. P. Species concepts and biodiversity in Trichoderma and Hypocrea: from aggregate species to species clusters? Journal of Zheijiang University Science B, v. 6, n. 2, p. 100-112, 2005. DRUZHININA, I. S.; SEIDL-SEIBOTH, V.; HERRERA-ESTRELLA, A.; HORWITZ, B. A.; KENERLEY, C. M.; MONTE, E.; MUKHERJEE, P. K.; ZEILINGER, S.; GRIGORIEV, I. V.; KUBICEK, C. P. Trichoderma: the genomics of opportunistic success, Nature Reviews Microbiology, v. 9, p. 749–759, 2011. ESPOSITO, E.; AZEVEDO, J. L. Fungos – Uma Introdução à biologia, bioquímica e biotecnologia. 2. ed. editora: Educs, 2010. 10-44 p. ETHUR, L. Z. Dinâmica populacional e ação de Trichoderma no controle de fusariose em mudas de tomateiro e pepineiro. 2006. 155 f. Tese (Doutorado) - Programa de Pós-Graduação em Agronomia. Universidade Federal de Santa Maria - Santa Maria, RS, 2006. 42 EUROPEAN COMMISSION. Collection of information on enzymes – final report.Contractno.B4-3040/2000/278245/MAR/E2, 2002. Disponível em: <http://ec.europa.eu/environment/archives/dansub/pdfs/enzymerepcomplete.pdf>. Acesso em: 20 ago. 2015. FERNANDES, M. L. M. et al. Hydrolysis and synthesis reactions catalysed by Thermomyces lanuginosa lipase in AOT/Isooctane reversed micellar system. Journal of Molecular Catalysis: Enzymatic, v. 30, p. 43-49, 2004. FERNANDES, M. L. M. Produção de Lípases por Fermentação no estado sólido e sua utilização em Biocatálise. Universidade Federal do Paraná, 2007. Disponível em: <http://dspace.c3sl.ufpr.br/dspace/bitstream/1884/10745/1/maria% 20luiza.PDF>. Acesso em: 19 ago. 2015. FRANCO, M. N. Produção de Celulases por Actinomicetos em Resíduos Agro Industriais, visando a Obtenção de Bioetanol. 2009. 70 f. Dissertação (Mestrado em Microbiologia) – Faculdade de Farmácia, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 2009. GAMS, W.; BISSET, J. Morphology and identification of Trichoderma. In: HARMAN, G.; KUBICET, C. P. (Eds.). Trichoderma and Gliocladium: Basic Biology, Taxonomy and Genetics. London: Taylor e Francis, 1998. 3-34 p. GARLIPP, A. B. Isolamento e identificação de fungos filamentosos do solo do Banhado Grande, na Estação Ecológica de Juréia-Itatins, SP. 1995. 92 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, 1995. GEREMIA, R., GOLDMAN, G. H., JACOBS, D., ARDILES, W., VILA, S. B., VAN-MONTAGU, M.; HERRERA-ESTRELLA, A. Molecular characterization of the proteinase encoding gene prb1, related to mycoparasitysm by Trichoderma harzianum, v. 8, p. 603-613, 1993. GERHARDT, J. A.; CARVALHO, I. F.; SILVA, M. L.; POLIZELI, M. L. T. M.; ALNOCH, R. C. Avaliação da atividade celulolítica de fungos filamentosos isolados de amostras de solo da região norte do estado de mato grosso. Enciclopédia Biosfera, Centro Científico Conhecer - Goiânia, v. 11 n. 21; p. 1971-1981, 2015. GERMANO, S.; PANDEY, A.; OSAKU, C. A.; ROCHA, S. N.; SOCCOL, C. R. Caracterization and stability of proteases from Penicillium sp. produced by solid-state fermentation, Enzyme and Microbial Technology, New York, v. 32, n. 2, p. 246-251, 2003. GOPINATH, S. C. B.; ANBU, P.; HILDA, A. Extracellular enzymatic activity profiles in fungi isolated from oil-rich environments. Mycoscience, v. 46, n. 2, p. 119-126, 2005. GUERRA, J. B. Melhoramento de Bacillus produtores de alfa-amilases, por fusão de protoplastos. 1991. 68 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte/MG, 1991. GUIMARÃES, L. H. S. et al. Screening of filamentous fungi for production of enzymes of biotechnological interest. Brazilian Journal of Microbiology, São Paulo, v. 37, n. 4, p. 474-480, 2006. 43 GUPTA, R.; GIGRAS, P.; MOHAPATRA, H.; GOSWAMI, V. K.; CHAUHAN, B. Microbial α-amylases: biotechnological perspective. Process Biochemistry, London, v. 38, n. 11, p. 1-18, 2003. HADDAR, A. et al. Low-cost fermentation medium for alkaline protease production by Bacillus mojavensis A21 using hulled grain of wheat and sardinella peptone, v. 110, n. 3, p. 288-294, 2010. HANKIN, L.; ANAGNOSTAKIS, S. L. The use of media for detection of enzymes production by fungi. Mycologia, New York, v. 67, n. 3, p. 597-607, 1975. HARGER, C.; SPRADA, D.; HIRATSUKA, E. Amilase Fúngica. In: Bioquímica das Fermentações. [S.l.]: [s.n.], 1982. 56 p. HARMAN, G. E.; HOWELL, C. R.; VITERBO, A.; CHET, I. E.; LORITO, M. Trichoderma species – Opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Reviews Microbiology, v. 2, n. 1, p. 43-56, 2004. HARMAN, G.E.; HERRERA-ESTRELLA, A.H.; HORWITZ, B.A; LORITO, M. Special issue: Trichoderma-from basic Biology to Biotechnology. Microbiology, v. 158, n. 1, p. 1-2, 2012. HERMOSA, M. R.; GRONDONA, I.; ITURRIAGA , E. A.; DIAZ-MINGUEZ, J. M.; CASTRO, C.; MONTE, E.; GARCIA-ACHA. Molecular Characterization and Identification of Biocontrol Isolates of Trichoderma spp. Applied and Environmental Microbiology, v. 66, n. 5, p. 1890-1898, 2000. HERMOSA, R.; RUBIO, M. B.; CARDOZA, R. E.; NICOLÁS, C.; MONTE, E.; GUTIÉRREZ, S. The contribution of Trichoderma to balancing the costs of plant growth and defense. International Microbiology, v. 16, p. 69-80, 2013. HERMOSA, R.; VITERBO, A.; CHET, I.; MONTE, E. Plant-beneficial effects of Trichoderma and of its genes. International Microbiology, v. 158, p. 17-25, 2012. HOOG, G. S; GUARRO, J.; GENE, J.; FIGUERAS, M. J. Atlas de hongosclínicos, 2ª ed, Ed CBS Utrece y the Netherlands, v. 2, p.1-1126, 2000. HOWELL, C. R. Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: The history and evolution of current concepts. Plant Disease, v. 87, n. 1, p. 4-10, 2003. INSTITUTO BRASILEIRO DE GEOGRAFIA E ESTATÍSTICA (IBGE), 2015. Disponível em: <http://www.ibge.gov.br>. Acesso em: 27 maio 2015. IRSHAD, M.; ANWAR, Z.; MAHMOOD, Z.; AQIL, T.; MEHMMOD, S.; NAWAZ, H. Bio-processing of agro-industrial waste orange peel for induced production of pectinase by Trichoderma viridi; its purification and characterization. Turkish Journal of Biochemistry, v. 39, n. 1, p. 9-18, 2014. 44 JEGANNATHAN, K. R.; NIELSEN, P. H. Environmental assessment of enzyme use in industrial production - a literature review. Journal of Cleaner Production, v. 42, p. 228-240, 2013. JONG S. C.; ATKINS W. B. Conservation, collection and distribution of cultures. In: Fungi Pathogenic for Humans and Animals. Pt B: Pathogenicity and Detection II (HDH Howard, ed), Marcel Dekker, Inc, New York, NY, USA, 1985. 153-194 p. JOSHI, C. P.; MANSFIELD, S. D. The cellulose paradox - simple molecule, complex biosynthesis. Current Opinion in Plant Biology, v. 10, p. 220-226, 2007. KASHYAP, D.R. et al. Applications of pectinases in the commercial sector: a review. Bioresource Technology, v. 77, p. 215-227, 2001. KHAN, M.; NAKKEERAN, E.; UMESH-KUMAR, S. Potential application of pectinase in developing functional foods. Annual Review of Food Science and Technology, v. 4, p. 21-34, 2013. KREDICS, L.; ANTAL, Z.; MANCZINGER, L.; SZEKERES, A.; KEVEI, F.; NAGY, E. Influence of environmental parameters on Trichoderma strains with biocontrol. Food Technology and Biotechnology, v. 41, n. 1, p. 37-42, 2003. KUBICEK C. P. The cellulase proteins of Trichoderma reesei: structure, multiplicity, mode of action and regulation of formation. Advances in biochemical engineering, biotechnology, v. 45, p. 1-27, 1992. KUBICEK, C. P. Systems biological approaches towards understanding cellulose production by Trichoderma reesei. Journal Biotechnol, v. 163, p. 133-142, 2013. KUMAR, K.; AMARESAN, N.; BHAGAT, S.; MADHURI, K.; SRIVASTAVA, R. C. Isolation and characterization of Trichoderma spp. for antagonistic activity against root rot and foliar pathogens. Indian Journal of Microbiology, v. 52, n. 2, p. 137-144, 2012. KUMAR, V.; SINHA, A. K.; MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. Dietary roles of phytate and phytase in human nutrition: A review. Food and Chemistry, v. 120, p. 945-959, 2010. KUNIEDA-ALONSO, S.; ALFENAS, A. C.; MAFFIA, L. A. Sobrevivência de micélio e escleródios de Rhizoctonia solani tratados com Trichoderma spp. em restos de cultura de Eucalyptus sp. Fitopatologia Brasileira, v. 30, n. 2, p. 164-168, 2005. KUTATELADZE, L.; ZAKARIASHVILI, N.; JOBAVA, M.; URUSHADZE, T.; KHVEDELIDZE, R.; KHOKHASHVILI, I. Selection of Microscopic Fungi - Pectinase Producers. Bulletin of The Georgian National Academy of Sciences, v. 3, n. 1, 2009. LARENA, I.; SALAZAR, O.; GONZALEZ, V.; JULIAN, M. C.; RUBIO, V. Design of a primer for ribosomal DNA internal transcribed spacer with enhanced specificity for ascomycetes. Journal of Biotechnology, v. 75, p. 187-194, 1999. LAXMAN, R. S. et al. Optimization and scale up of production of alkaline protease from Conidiobolus coronatus. Process Biochemistry, v. 40, p. 3152-3158, 2005. 45 LEHNINGER, A. L.; NELSON, D. L.; COX, M. M. Princípios de Bioquímica. 6. ed. São Paulo: Artmed, 2014. 1336 p. LEI, G. X.; PORRES, M. J. Phytase enzymology, applications, and biotechnology. Biotechnology Letters, v. 25, p. 1787-1794, 2003. LEITÃO, V. O.; LIMA, R. C. M.; VAINSTEIN, M. H.; ULHOA, C. J. Purification and characterization of an acid phosphatase from Trichoderma harzianum. Biotechnology Letters, v. 32, n. 8, p. 1083-1088, 2010. LIMA, M. C. R. Caracterização Bioquímica de uma fosfatase ácida produzida por Trichoderma harzianum. 2006. 54 f. Dissertação (Mestrado) Universidade Federal de Goiás, Instituto de Ciências Biológicas, Goiânia, 2006. LIU, B. L., RAFIQ, A., TZENG, Y. M. AND ROB, A. The induction and characterization of phytase and beyond. Enzyme and Microbial Technology, v.22, p. 415–424, 1998. LO, C.; HSIE, J.; PENG, K. Screening strains of Trichoderma spp. For decomposition of agriculture wastes. Phytopathology, v. 101, n. 6, p. 101-109, 2011. LORITO, M.; WOO, S.L.; HARMAN, G.E.; MONTE, E. Translational research on Trichoderma: from ‘Omics to the field. Annual Review of Phytopathol, v. 48, p. 395-417, 2010. MACHADO, M. F. D.; PARZIANELLO, R. F.; SILVA, F. C. A.; ANTONIOLLI, I. Z. Trichoderma no Brasil: O Fungo e O Bioagente. Revista de Ciências Agrárias, v. 35, n. 1, p. 274-288, 2012. MACIEL, M. H. C. Abordagem polifásica para identificação de linhagens de Aspergillus seção Nigri preservadas na micoteca URM e caracterização quanto a produção e purificação de poligalacturonases. 2013. 151 f. Tese (Doutorado em Biologia de Fungos) – Universidade Federal de Pernambuco, Recife, 2013. MAEDA, R. N.; SERPA, V. I.; ROCHA, V. A. L.; MESQUITA, R. A. A.; SANTA ANNA, L. M. M.; CASTRO, A. M. de; DRIEMEIER, C. E.; PEREIRA Jr, N.; POLIKARPOV, I. Enzymati chydrolysis of pretreated sugar cane bagasse using Penicillium funiculosum and Trichoderma harzianum cellulases. Process Biochemistry, v. 46, p. 1196-1201, 2011. MAHAJAN, R. T.; BADGUJAR, S. B. Biological aspects of proteolytic enzymes: a review, Journal of Pharmacy Research, v. 3, n. 9, p. 2048-2068, 2010. MALLER, A. Produção, purificação e caracterização do complexo pectinolítico do fungo Aspergillus niveus. 2008. 98 f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Ribeirão Preto/SP, 2008. MARQUES, S. F. F. Biotecnologia enzimática: produção de complexo multienzimático de Trichoderma harzianum e sua aplicação na alimentação de frangos de corte. 2007. 92 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Goiás, Goiânia, 2007. 46 MARTINS, C. Y. S. Promoção de Crescimento e Colonização Radicular por Trichoderma spp. em Pinhão Manso (Jatropha curcas L.) e Mamoneira (Ricinus cmmunis L.). 2010. 80 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal do Recôncavo da Bahia, 2010. MELO, I. S. Potencialidades de utilização de Trichoderma spp. no controle biológico de doenças de plantas. In: BETTIOL. W. (Org) Controle biológico de doenças de plantas. Jaguariúna: EMBRAPA-CNPMA, p. 135-156, 1991. MELO, I. S.; COSTA, F. G. Desenvolvimento de uma formulação granulada a base de Trichoderma harzianum para controle de fitopatógenos. Jaguariúna: Embrapa Meio Ambiente, Comunicado Técnico 31, 2005. MENDONZA, D. P. G. Variações do secretoma de Trichoderma harzianum em resposta a diferentes fontes de carbono. 2009. 80 f. (Mestrado) - Biologia Celular, Universidade de Brasília, 2009. MENEZES, J. P.; LUPATINI, M.; ANTONIOLLI, Z. I.; BLUME, E.; JUNGES, E.; MANZONI, C. G.Variabilidade Genética na Região ITS do rDNA DE ISOLADOS DE Trichoderma spp. (Biocontrolador) e Fusarium Oxysporum f. sp. Chrysanthemi. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 34, n. 1, p. 132-139, 2010. MITIDIERI, S., et al. Detergentes biológicos biodegradáveis: avaliação das formulações do mercado. Biotecnologia Ciência e Desenvolvimento, v. 26, p. 56-60, 2002. MUKESH KUMAR, D. J. et al. Production and Optimization of Pectinase from Bacillus sp. MFW7 using Cassava Waste. Asian Journal of Plant Science and Research, v. 2, n. 3, p. 369-375, 2012. MUKHERJEE, P. K.; HORWITZ, B. A; HERRERA-ESTRELLA, A.; SCHMOLL, M.; KENERLEY, C. M. Trichoderma Research in the genome era. Annual Review of Phytopathology, v. 51, p. 105-129, 2013. MURO, M. A.; LUCHI, M. R. Preservação de Micro-organismos. Fundação Tropical de Pesquisas e Tecnologia “André Tosello”. Campinas, 1989. 92 p. NABI, N. G.; ASGHER, M.; SHAH, A. H.; SHEIKH, M. A.; ASAD, M. J. Production of pectinase by Trichoderma harzianum in solid state fermentation of citrus peel, v. 40, p. 3-4, 2003. NC-IUBMB, Nomenclature Committee of the International Union of Biochemistry and Molecular Biology. Enzyme nomenclature. San Diego: Academic Press, 1992. 862 p. NEIROTTI, E.; AZEVEDO, J. L. Técnica semiquantitativa de avaliação da produção de celulases em Humicola sp. Revista de Microbiologia, v. 19, p. 78-81, 1988. NOGUEIRA, E. B. S; CAVALCANTI, M. A. Q. Cellulolytic fungi isolated from process edoats. Revista de Microbiologia, v. 27, n. 1, p. 7-9, 1996. 47 ORLANDELLI, R. C.; SPECIAN, V.; FELBER, A. C.; PAMPHILE, J. A. Enzimas de interesse industrial: Produção por fungos e aplicações. Revista de Saúde e Biologia, v.7, n.3, p. 97-109, 2012. PANDEY, A.; WEBB, C.; SOCCOL, C. R.; LARROCHE, C. Enzyme Technology. New Delhi: Asiatech Publishers, 2005. 760 p. PARIS, L. D. Produção de enzimas fúngicas por fermentação em estado sólido das sojas orgânica, transgênica e convencional. 2008. 115 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Universidade Estadual do Oeste do Paraná, Toledo, 2008. PASHA, K. M.; ANURADHA, P.; RAO, D. S. Screening of a pectinolytic fungal strain; Aspergillus foetidus MTCC 10367 for the production of multiple enzymes of industrial importance. International Journal of Pharma and Bio Sciences, v. 4, n. 2, p. 1205-1209, 2013. PEIXOTO NETO, P. A. S.; AZEVEDO, J. L.; ARAÚJO, W. L. Micro-organismos endofíticos: interação com as plantas e potencial biotecnológico. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento, Brasília, n. 29, p. 62-76, 2002. PEKKARINEN, A., et al. Production of proteases by Fusarium species grown on barley grains and in media containing cereal proteins. Journal of Cereal Science, London, v. 31, n. 3, p. 253-261, 2000. PEREDA, J. A. O.; RODRÍGUES, M. I. C.; ÁLVAREZ, L. F.; SANZ, M. L. G.; MINGUILLÓN, G. D. G. F.; PERALES, L. H.; CORTECERO, M. D. S. Tecnologia de Alimentos- Componentes dos Alimentos e Processos, v. 1, Porto Alegre: Artmed, 2005. PERES, E.; MELO, I. S. Variabilidade entre isolados de Trichoderma harzianum. I-aspectos citológicos. Scientia Agrícola, v. 52, p. 56-59, 1995. PIKOVSKAYA, R. J. Mobilization of phosphorous in soil in connection with vital activity of some microbial species. Mikrobiologiya, New York, v.17, p. 362-370, 1948. POINTING, S. B. Qualitative methods for the determination of lignocellulolytic enzyme production by tropical fungi. Fungal Diversity, v. 2, p. 17-33, 1999. POZO, M. J., BAEK, J. M., GARCIA, J. M.; KENERLEY, C. M. Functional analysis of tvsp1, a serine protease-encoding gene in the biocontrol agent Trichoderma virens. Fungal Genetics and Biology, v. 41, p. 336-348, 2004. QUALHATO, T. F. Avaliação do perfil enzimático e expressão gênica de cinco espécies de Trichoderma e potencial antagônico contra Fusarium solani, Rhizoctonia solani e Sclerotinia sclerotiorum. 2013. 99 f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Goiás, Goiânia, 2013. RAVEN, P. H.; EVERT, R. F.; EICHHORN, S. E. Biologia Vegetal. 7. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2007. 856 p. RAWLINGS, N. D.; TOLLE, D. P.; BARRETT A. J. Evolutionary families of peptidase inhibitors. Biochemical Journal, v. 378, p. 705-716, 2004. 48 RIFAI, M.A. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers, Wallingford, v. l16, p.1-56, 1969. RUEGGER, M. J. S. Atividade Enzimática e Produção de Ácido Gama- Linolênico por Fungos Filamentosos Isolados de Solo, da Estação Ecológica de Juréia-ITATINS, SP. 2001. 98 f. Tese (Doutorado) – Universidade Estadual Paulista, 2001. RUEGGER, M. J. S.; TAUK-TORNISIELO, S. M. Atividade da celulase de fungos isolados do solo da Estação Ecológica de Juréia-Itatins, São Paulo, Brasil. Revista Brasileira de Botânica, v. 27, n. 2, p. 205-211, 2004. SAID, S.; PIETRO, R. C. L. R. Enzimas como agentes biotecnológicos. Ribeirão Preto: Legis Summa, v. 1, p. 416, 2004. SALMON, D. N. X. Desenvolvimento de um bioprocesso para a produção, caracterização e recuperação da fitase de Schizophyllum commune obtida por fermentação em estado sólido. 2011. 107 f. Dissertação (Mestrado em Processos Biotecnológicos) – Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 2011. SAMSON, R. A.; HOUBRAKEN, J.; THRANE, U.; FRISVAD, J. C.; ANDERSEN, B. 2010, Food and Indoor Fungi, Vol. 2., CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre. Utrecht, Netherlands. SAMUELS, G. J. Trichoderma: A guide to identification and biology. Beltsville: USDA/ARS, p.54, 2006a. SAMUELS, G. J. Trichoderma: a review of biology and systematics of the genus. Mycology Research, v. 100, p. 923-935, 1996. SAMUELS, G. J.; CHAVERRI, P.; FARR, D. F.; MCCRAY, E. B. (n.d.) Trichoderma Online, Systematic Botany e Mycology Laboratory, ARS, USDA. Disponível em: <http://nt.ars-grin.gov/taxadescriptions/keys/TrichodermaIndex.cfm>. Acesso em: 2 Set. 2015. SAMUELS, G. J.; ISMAIEL, A.; BOM, M. C.; RESPINIS, S.; PETRINI, O. Trichoderma asperellum sensulato consists of two cryptic species. Mycologia, v.102, n. 4, p. 944-966, 2010. SAMUELS, G. J.; ISMAIEL, A.; MULAW, T. B.; SZAKACS, G.; DRUZHININA, I. S.; KUBICEK, C.P.; JAKLITSCH, W. M. The Longibrachiatum Clade of Trichoderma: a revision with new species. Fungal Diversity, v. 55, p. 77-108, 2012. SAMUELS, G.J., LIECKFELDT, E., NIREMBERG, H.I. Trichoderma asperellum, a new species with warted conidia, and redescription of T. viride. Sidowia, v. 51, n. 1 p. 71-88, 1999. SANT’ANNA JUNIOR, G. L. Produção de enzimas microbianas. In: LIMA, U. A.; AQUARONE, E.; BORZANI, W.; SCHMIDELL, W. (Coords.). Biotecnologia industrial - processos fermentativos e enzimáticos. São Paulo: Edgard Blücher Ltda., 2001. 351-362 p. 49 SANTANA, R. S. M. Produção de enzimas amilolíticas através da fermentação emestado sólido. 2012. 73 f. Dissertação (Mestrado em Engenharia de Alimentos) – Universidade Estadual do Sudoeste da Bahia, Itapetinga - BA, 2012. SANTOS M. V. O. Phytophthora spp.em cultivos diversos no sul da Bahia e identificação de agentes de biocontrole a estes patógenos. 2010. 105 f. (Dissertação em Produção Vegetal) – Universidade Estadual de Santa Cruz, Ilhéus - BA, 2010. SAVITHA, S.; SADHASIVAM, S.; SWAMINATHAN, K.; LIN, F. H. Fungal protease: Production, purification and compatibility with laundry detergents and their wash performance. Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers, v. 42, p. 298-304, 2011. SCHMITZ A, RIESNER, D. Purification of nucleic acids by selective precipitation with polyethylene glycol 6000. Analytical Biochemistry, v. 354, n. 2, p. 311-313, 2006. SCHUSTER, A.; SCHMOLL, M. Biology and biotechnology of Trichoderma. Applied Microbiology and Biotechnology, v. 87, n. 3, p. 787-799, 2010. SELLE, P. H.; RAVINDRAN, V. Microbial phytase in poultry nutrition. Animal Feed Science and Technology, v. 135, p. 1-41, 2007. SHOUKOUHI, P.; BISSETT, J. Preferred primers for sequencing the 5’ end of the translation elongation factor 1-alpha gene (eEF1a1). 2008, ISTH Available from: http://www.isth.info/methods. SIDDIQUEE, S.; TAN, S. G.; YUSUF, U. K.; FATIHAH, N. H. N.; HASAN, M. M. Characterization of Malaysian Trichoderma isolates using random amplified microsatellites (RAMS). Molecular Biology Reports, published online, v. 39, p. 715-722, 2011. SILVA, R. L. O.; LUZ, J. S. L.; SILVEIRA, E. B.; CAVALCANTE, U. M. T. Fungos endofíticos em Annona spp.: isolamento, caracterização enzimática e promoção do crescimento em mudas de pinha (Annonas quamosa L.). Acta Botanica Brasilica, Feira de Santana, v. 20, n. 3, p. 649-655, 2006. ŠIMKOVIČ, M.; KURUCOVÁ, A.;
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.none.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.publisher.program.fl_str_mv Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia de Alimentos
dc.publisher.initials.fl_str_mv UFRRJ
dc.publisher.country.fl_str_mv Brasil
dc.publisher.department.fl_str_mv Instituto de Tecnologia
publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
dc.source.none.fl_str_mv reponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
instname:Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron:UFRRJ
instname_str Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
instacron_str UFRRJ
institution UFRRJ
reponame_str Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
collection Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ
bitstream.url.fl_str_mv https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/1/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.jpg
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/2/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf.txt
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/3/2016%20-%20Michele%20Rodrigues%20Francisco.pdf
https://rima.ufrrj.br/jspui/bitstream/20.500.14407/11033/4/license.txt
bitstream.checksum.fl_str_mv cc73c4c239a4c332d642ba1e7c7a9fb2
6005bc3814ac890c40767f480feaef8f
598c2fe8a98038b9745debaf13625959
7b5ba3d2445355f386edab96125d42b7
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRRJ - Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ)
repository.mail.fl_str_mv bibliot@ufrrj.br||bibliot@ufrrj.br
_version_ 1810108220496150528