Produção, extração e purificação integrada de proteases com atividade fibrinolítica produzida por fungos do gênero Rhizopus e sua caracterização bioquímica
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Data de Publicação: | 2022 |
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Texto Completo: | http://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede2/handle/tede2/9686 |
Resumo: | Enzymes with fibrinolytic activity are obtained from different sources and can degrade fibrin, the main protein component of blood clots. The accumulation of fibrin in vessels can lead to thrombosis, a disease that occurs when clots form without bleeding. The work in question has as objectives to produce and purify proteases with fibrinolytic activity from filamentous fungi by submerged fermentation; carry out purification processes through an aqueous two-phase system (PEG/Citrate), in addition to biochemically characterize the fibrinolytic enzyme obtained from Rhizopus arrhizus UCP 1605. For production, a submerged fermentation was carried out with fungi of the genus Rhizophus using a complete 2³ factorial design to determine the best production conditions. The influence of the variables substrate type (TS), substrate concentration (CS) and glucose concentration (GC) were evaluated under the production of fibrinolytic proteases. The produced enzyme was extracted by an aqueous two-phase system (ATPS) consisting of polyethylene glycol (PEG) and sodium citrate, being carried out according to a 24 factorial design, to evaluate the influence of the variables: molar mass of PEG (MPEG), PEG concentration (CPEG), sodium citrate concentration (Ccit) and pH, on the partition coefficient (K), recovery (Y%) and purification factor (FP). Then the enzyme was characterized of biochemical and kinetic parameters. A 24 factorial design was also carried out to evaluate the influence of MPEG, CPEG, Ccit and pH on K and Y in extractive fermentation. The fibrinolytic protease from Rhizopus arrhizus UCP 1605 was produced under the conditions of 3% soybean and 0.5% glucose, under stirring at 120 rpm, at 30ºC for 96 hours of submerged fermentation, showing a protease activity of 10.37 U /mL and a fibrinolytic activity with a halo of 31 mm, corresponding to an activity of 850.60 U/mL. As for extraction in ATPS, the best results were obtained in the assay formed by 24.0% (m/m) of PEG 8000, 15% (m/m) of sodium citrate and pH 8. In this condition, the enzyme preferentially partitioned to the PEG-rich phase, with a K of 1.58, FP 4.07, Y of 97.0% and a fibrinolytic activity with a halo of 16 mm, corresponding to an activity of 44.39 U/ml. In the extractive fermentation process, the enzyme partitioned for both phases, with the best condition in the test composed of PEG 8000 g/mol, at a concentration of 20%, 15% citrate and pH 8.0, with a K of 2.4 and activity recovery (Y) 71.5% and 3.83 U/mL of activity protease. The enzyme present in both the enzymatic extract and the ATPS showed an optimal temperature of 50ºC and an optimal pH of 8. As for the kinetic parameters, the enzymatic extract presented a Michaelis Menten constant (Km) of 4.06 mg/mL with a maximum velocity of 45.05 U/mL. The enzyme obtained by extractive fermentation wasn't biochemically characterized. These results demonstrate the potential of the production of Rhizopus arrhizus UCP 1605 in submerged fermentation and of the fibrinolytic proteases extraction processes and their possibility to be explored in industrial applications as candidates for thrombolytic agents. |
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PORTO, Tatiana SouzaCUNHA, Márcia Nieves Carneiro daPORTO, Camila SouzaNASCIMENTO, Thiago PajeúSILVA, Marllyn Marques daCONNIFF, Amanda Emmanuelle Saleshttp://lattes.cnpq.br/2893282709618465SANTOS, Steliane Lima2024-07-23T20:56:44Z2022-11-28SANTOS, Steliane Lima. Produção, extração e purificação integrada de proteases com atividade fibrinolítica produzida por fungos do gênero Rhizopus e sua caracterização bioquímica. 2022. 120 f. Tese (Programa de Pós-Graduação em Biociência Animal) - Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife.http://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede2/handle/tede2/9686Enzymes with fibrinolytic activity are obtained from different sources and can degrade fibrin, the main protein component of blood clots. The accumulation of fibrin in vessels can lead to thrombosis, a disease that occurs when clots form without bleeding. The work in question has as objectives to produce and purify proteases with fibrinolytic activity from filamentous fungi by submerged fermentation; carry out purification processes through an aqueous two-phase system (PEG/Citrate), in addition to biochemically characterize the fibrinolytic enzyme obtained from Rhizopus arrhizus UCP 1605. For production, a submerged fermentation was carried out with fungi of the genus Rhizophus using a complete 2³ factorial design to determine the best production conditions. The influence of the variables substrate type (TS), substrate concentration (CS) and glucose concentration (GC) were evaluated under the production of fibrinolytic proteases. The produced enzyme was extracted by an aqueous two-phase system (ATPS) consisting of polyethylene glycol (PEG) and sodium citrate, being carried out according to a 24 factorial design, to evaluate the influence of the variables: molar mass of PEG (MPEG), PEG concentration (CPEG), sodium citrate concentration (Ccit) and pH, on the partition coefficient (K), recovery (Y%) and purification factor (FP). Then the enzyme was characterized of biochemical and kinetic parameters. A 24 factorial design was also carried out to evaluate the influence of MPEG, CPEG, Ccit and pH on K and Y in extractive fermentation. The fibrinolytic protease from Rhizopus arrhizus UCP 1605 was produced under the conditions of 3% soybean and 0.5% glucose, under stirring at 120 rpm, at 30ºC for 96 hours of submerged fermentation, showing a protease activity of 10.37 U /mL and a fibrinolytic activity with a halo of 31 mm, corresponding to an activity of 850.60 U/mL. As for extraction in ATPS, the best results were obtained in the assay formed by 24.0% (m/m) of PEG 8000, 15% (m/m) of sodium citrate and pH 8. In this condition, the enzyme preferentially partitioned to the PEG-rich phase, with a K of 1.58, FP 4.07, Y of 97.0% and a fibrinolytic activity with a halo of 16 mm, corresponding to an activity of 44.39 U/ml. In the extractive fermentation process, the enzyme partitioned for both phases, with the best condition in the test composed of PEG 8000 g/mol, at a concentration of 20%, 15% citrate and pH 8.0, with a K of 2.4 and activity recovery (Y) 71.5% and 3.83 U/mL of activity protease. The enzyme present in both the enzymatic extract and the ATPS showed an optimal temperature of 50ºC and an optimal pH of 8. As for the kinetic parameters, the enzymatic extract presented a Michaelis Menten constant (Km) of 4.06 mg/mL with a maximum velocity of 45.05 U/mL. The enzyme obtained by extractive fermentation wasn't biochemically characterized. These results demonstrate the potential of the production of Rhizopus arrhizus UCP 1605 in submerged fermentation and of the fibrinolytic proteases extraction processes and their possibility to be explored in industrial applications as candidates for thrombolytic agents.Enzimas com atividade fibrinolítica são obtidas de diferentes fontes e possuem a capacidade de degradar a fibrina, o principal componente proteico dos coágulos sanguíneos. O acúmulo de fibrina nos vasos pode gerar trombose, uma doença que ocorre quando há formação de coágulos sem haver sangramento. Nesse sentido, o objetivo desta tese foi selecionar fungos filamentosos do gênero Rhizopus, produzir e extrair proteases fibrinolíticas por fermentação submersa, fermentação extrativa e sistema de duas fases aquosas (PEG/Citrato), além de caracterizar bioquimicamente a enzima. Para a seleção do microorganismo foi realizada uma fermentação submersa com fungos do gênero Rhizophus, utilizando um planejamento fatorial 2³ completo para determinar as melhores condições de produção. A influência das variáveis tipo de substrato (TS), concentração do substrato (CS) e concentração de glicose (CG) foram avaliadas sobre a produção da protease fibrinolítica. A enzima produzida foi extraída por sistema de duas fases aquosas (SDFA) constituído de polietilenoglicol (PEG) e citrato de sódio, sendo realizado de acordo com um planejamento fatorial 24, para avaliar a influência das variáveis: massa molar de PEG (MPEG), concentração de PEG (CPEG), concentração de citrato de sódio (Ccit) e pH, sobre o coeficiente de partição (K), recuperação(Y%) e fator de purificação (FP). Em seguida a enzima foi caracterizada em parâmetros bioquímicos e cinéticos. Um planejamento fatorial 24 também foi realizado para avaliar a influência de MPEG, CPEG, Ccit e pH sobre o K e Y na fermentação extrativa. A protease fibrinolítica de Rhizopus arrhizus UCP 1605 foi produzida nas condições de 3% de soja, e 0,5% de glicose, sob agitação de 120 rpm, a 30ºC por 96 horas de fermentação submersa, apresentando uma atividade proteásica de 10,37 U/mL e uma atividade fibrinolítica com um halo de 31 mm, correspondendo a uma atividade de 850,60 U/mL. Quanto à extração em SDFA, os melhores resultados foram obtidos no ensaio formado por 24,0 % (m/m) de PEG 8000, 15 % (m/m) de citrato de sódio e pH 8. Nesta condição a enzima particionou preferencialmente para fase rica em PEG, com um K de 1,58, FP 4,07, Y de 97,0% e uma atividade fibrinolítica com um halo de 16 mm, correspondendo a uma atividade de 44,39 U/mL. No processo de fermentação extrativa a enzima particionou para ambas as fases, tendo a melhor condição no ensaio composto por PEG 8000 g/mol, na concentração de 20%, 15% de citrato e pH 8,0, apresentando um K de 2,4 e recuperação de atividade (Y) 71,5% e 3,83 U/mL de atividade proteásica. A enzima presente no tanto no extrato enzimático, quanto no SDFA apresentaram temperatura ótima de 50ºC e pH ótimo 8. Quanto aos parâmetros cinéticos o extrato enzimático apresentou constante de Michaelis Menten (Km) de 4,06 mg/mL com velocidade máxima de 45,05 U/mL. A enzima obtida por fermentação extrativa não foi caracterizada bioquimicamente. Esses resultados demonstram o potencial da produção de Rhizopus arrhizus UCP 1605 em fermentação submersa e dos processos de extração da protease fibrinolítica e sua possibilidade para ser explorado em aplicações industriais como candidatos a agentes trombolíticos.Submitted by (ana.araujo@ufrpe.br) on 2024-07-23T20:55:53Z No. of bitstreams: 1 Steliane Lima Santos.pdf: 978122 bytes, checksum: ab706f75e7efae6fab42c8631b9f20f0 (MD5)Made available in DSpace on 2024-07-23T20:56:44Z (GMT). No. of bitstreams: 1 Steliane Lima Santos.pdf: 978122 bytes, checksum: ab706f75e7efae6fab42c8631b9f20f0 (MD5) Previous issue date: 2022-11-28application/pdfporUniversidade Federal Rural de PernambucoPrograma de Pós-Graduação em Biociência AnimalUFRPEBrasilDepartamento de Morfologia e Fisiologia AnimalRhizopusProtease fibrinolíticaFermentação extrativaPurificação de enzimaCIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIAProdução, extração e purificação integrada de proteases com atividade fibrinolítica produzida por fungos do gênero Rhizopus e sua caracterização bioquímicainfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesis-1510757014399315592600600600-8922364187987396204453670264235017319info:eu-repo/semantics/openAccessreponame:Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRPEinstname:Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE)instacron:UFRPEORIGINALSteliane Lima Santos.pdfSteliane Lima Santos.pdfapplication/pdf978122http://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede2/bitstream/tede2/9686/2/Steliane+Lima+Santos.pdfab706f75e7efae6fab42c8631b9f20f0MD52LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-82165http://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede2/bitstream/tede2/9686/1/license.txtbd3efa91386c1718a7f26a329fdcb468MD51tede2/96862024-07-23 17:56:44.962oai:tede2: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Biblioteca Digital de Teses e Dissertaçõeshttp://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede/PUBhttp://www.tede2.ufrpe.br:8080/oai/requestbdtd@ufrpe.br ||bdtd@ufrpe.bropendoar:2024-07-23T20:56:44Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRPE - Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE)false |
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Biblioteca Digital de Teses e Dissertações da UFRPE - Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE) |
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