Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches

Detalhes bibliográficos
Autor(a) principal: Almeida, Eduardo Luís Menezes de
Data de Publicação: 2024
Tipo de documento: Tese
Idioma: eng
Título da fonte: LOCUS Repositório Institucional da UFV
Texto Completo: https://locus.ufv.br//handle/123456789/32091
https://doi.org/10.47328/ufvbbt.2024.019
Resumo: As atuais crises ambientais promovidas pelo uso extensivo de petróleo têm realçado a necessidade de cadeias produtivas sustentáveis. Lipídios e ácidos graxos produzidos a partir de hidrolisados lignocelulósicos por leveduras oleaginosas são fontes promissoras de oleoquímicos. Portanto, a seleção e construção de linhagens robustas de leveduras capazes de crescer e produzir lipídios em hidrolisados lignocelulósicos é essencial para ampliar sua aplicação e viabilidade. Lipomyces starkeyi é uma levedura oleaginosa que cresce e produz lipídios a partir de diversas fontes de carbono. O seu crescimento e produção de lipídios já foram demonstrados em biomassas lignocelulósicas. Papiliotrema laurentii também pode assimilar açúcares derivados de subprodutos agrícolas, como a glucose e a xilose de biomassas lignocelulósicas, e convertê-los em elevadas concentrações de lipídios. No entanto, linhagens selvagens de P. laurentii são sensíveis ao ácido acético, um dos principais inibidores presentes em hidrolisados lignocelulósicos. A compreensão das respostas adaptativas e da fisiologia dessas leveduras pode ser facilitada por abordagens holísticas, incluindo redes biológicas e ômicas. Portanto, a nossa hipótese é que o emprego de abordagens de biologia de sistemas, incluindo modelos metabólicos em escala genômica (MMEG) e transcriptômica, bem como a sua integração, pode auxiliar na compreensão do metabolismo e das respostas ao estresse de leveduras oleaginosas e determinação de alvos para a engenharia metabólica. Neste trabalho, propomos o primeiro MMEG de L. starkeyi, lista-GEM. Reconstruímos o lista-GEM usando dois modelos de leveduras oleaginosas de alta qualidade como templates e conduzimos a curadoria manual para refletir o metabolismo de L. starkeyi. Os fenótipos simulados e as distribuições de fluxo previstas apresentaram boa conformidade com os dados experimentais. Em seguida, prevemos alvos para melhorar a produção de lípidos em glicose, xilose e glicerol. As enzimas relacionadas com a síntese de lípidos no retículo endoplasmático, como estearoil- CoA dessaturase, acil-CoA sintase, diacilglicerol aciltransferase e glicerol-3-fosfato aciltransferase, foram os principais alvos para melhorar a produção de lípidos. Genes glicolíticos também foram previstos como alvos de superexpressão. Piruvato descarboxilase,acetaldeído desidrogenase, acetil-CoA sintetase, adenilato quinase, difosfatase inorgânica e triose-fosfato isomerase foram previstas apenas quando o glicerol era a fonte de carbono. Dessa forma, o lista-GEM fornece múltiplos alvos de engenharia metabólica para melhorar a produção de lípidos por L. starkeyi a partir de resíduos agrícolas e industriais. Em seguida, combinamos o transcriptoma e a modelação metabólica em escala genômica para aprofundar o nosso conhecimento sobre os alvos do estresse por ácido acético, bem como sobre as respostas adaptativas de P. laurentii. O ácido acético promoveu alterações globais de expressão e a maioria dos genes reprimidos estava relacionada com processos transcricionais e translacionais. Sob estresse, a linhagem sensível induziu mecanismos de reparo do DNA e meiose, enquanto a linhagem tolerante regulou negativamente a autofagia e o ciclo celular. A linhagem tolerante induziu também processos responsáveis pelo aumento do pH intracelular (ex. arginase, metabolismo da ornitina, ciclo da ureia), detoxificação (ex. metabolismo da glutationa) e efluxo de prótons. A linhagem tolerante também apresentou uma reserva notável de NAD(P)H na análise de modelagem metabólica, o que suportaria o poder redutor exigido pelos mecanismos de tolerância. Por outro lado, a estirpe sensível induziu genes relacionados com a biogênese da parede celular e a síntese de cobalamina. Em geral, os genes e vias aqui descritos como relacionados com a tolerância podem ser úteis em futuras estratégias de engenharia metabólica para melhorar a tolerância de P. laurentii a ácidos fracos, impulsionando a sua aplicação em biorrefinarias baseadas em lignocelulose. Palavras-chave: Modelagem metabólica; Transcriptômica; Não-Saccharomyces.
id UFV_126587e5a6e471c59af5ce9796b0bafc
oai_identifier_str oai:locus.ufv.br:123456789/32091
network_acronym_str UFV
network_name_str LOCUS Repositório Institucional da UFV
repository_id_str 2145
spelling Brandão, Marcelo MendesAlmeida, Eduardo Luís Menezes dehttp://lattes.cnpq.br/3157480507007265Silveira, Wendel Batista da2024-02-01T20:25:26Z2024-02-01T20:25:26Z2024-01-30ALMEIDA, Eduardo Luís Menezes de. Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches.2024. 189 f. Tese (Doutorado em Microbiologia Agrícola) - Universidade Federal de Viçosa, Viçosa. 2024.https://locus.ufv.br//handle/123456789/32091https://doi.org/10.47328/ufvbbt.2024.019As atuais crises ambientais promovidas pelo uso extensivo de petróleo têm realçado a necessidade de cadeias produtivas sustentáveis. Lipídios e ácidos graxos produzidos a partir de hidrolisados lignocelulósicos por leveduras oleaginosas são fontes promissoras de oleoquímicos. Portanto, a seleção e construção de linhagens robustas de leveduras capazes de crescer e produzir lipídios em hidrolisados lignocelulósicos é essencial para ampliar sua aplicação e viabilidade. Lipomyces starkeyi é uma levedura oleaginosa que cresce e produz lipídios a partir de diversas fontes de carbono. O seu crescimento e produção de lipídios já foram demonstrados em biomassas lignocelulósicas. Papiliotrema laurentii também pode assimilar açúcares derivados de subprodutos agrícolas, como a glucose e a xilose de biomassas lignocelulósicas, e convertê-los em elevadas concentrações de lipídios. No entanto, linhagens selvagens de P. laurentii são sensíveis ao ácido acético, um dos principais inibidores presentes em hidrolisados lignocelulósicos. A compreensão das respostas adaptativas e da fisiologia dessas leveduras pode ser facilitada por abordagens holísticas, incluindo redes biológicas e ômicas. Portanto, a nossa hipótese é que o emprego de abordagens de biologia de sistemas, incluindo modelos metabólicos em escala genômica (MMEG) e transcriptômica, bem como a sua integração, pode auxiliar na compreensão do metabolismo e das respostas ao estresse de leveduras oleaginosas e determinação de alvos para a engenharia metabólica. Neste trabalho, propomos o primeiro MMEG de L. starkeyi, lista-GEM. Reconstruímos o lista-GEM usando dois modelos de leveduras oleaginosas de alta qualidade como templates e conduzimos a curadoria manual para refletir o metabolismo de L. starkeyi. Os fenótipos simulados e as distribuições de fluxo previstas apresentaram boa conformidade com os dados experimentais. Em seguida, prevemos alvos para melhorar a produção de lípidos em glicose, xilose e glicerol. As enzimas relacionadas com a síntese de lípidos no retículo endoplasmático, como estearoil- CoA dessaturase, acil-CoA sintase, diacilglicerol aciltransferase e glicerol-3-fosfato aciltransferase, foram os principais alvos para melhorar a produção de lípidos. Genes glicolíticos também foram previstos como alvos de superexpressão. Piruvato descarboxilase,acetaldeído desidrogenase, acetil-CoA sintetase, adenilato quinase, difosfatase inorgânica e triose-fosfato isomerase foram previstas apenas quando o glicerol era a fonte de carbono. Dessa forma, o lista-GEM fornece múltiplos alvos de engenharia metabólica para melhorar a produção de lípidos por L. starkeyi a partir de resíduos agrícolas e industriais. Em seguida, combinamos o transcriptoma e a modelação metabólica em escala genômica para aprofundar o nosso conhecimento sobre os alvos do estresse por ácido acético, bem como sobre as respostas adaptativas de P. laurentii. O ácido acético promoveu alterações globais de expressão e a maioria dos genes reprimidos estava relacionada com processos transcricionais e translacionais. Sob estresse, a linhagem sensível induziu mecanismos de reparo do DNA e meiose, enquanto a linhagem tolerante regulou negativamente a autofagia e o ciclo celular. A linhagem tolerante induziu também processos responsáveis pelo aumento do pH intracelular (ex. arginase, metabolismo da ornitina, ciclo da ureia), detoxificação (ex. metabolismo da glutationa) e efluxo de prótons. A linhagem tolerante também apresentou uma reserva notável de NAD(P)H na análise de modelagem metabólica, o que suportaria o poder redutor exigido pelos mecanismos de tolerância. Por outro lado, a estirpe sensível induziu genes relacionados com a biogênese da parede celular e a síntese de cobalamina. Em geral, os genes e vias aqui descritos como relacionados com a tolerância podem ser úteis em futuras estratégias de engenharia metabólica para melhorar a tolerância de P. laurentii a ácidos fracos, impulsionando a sua aplicação em biorrefinarias baseadas em lignocelulose. Palavras-chave: Modelagem metabólica; Transcriptômica; Não-Saccharomyces.The current environmental crises promoted by the extensive use of oil have highlighted the necessity of alternative and sustainable production chains. Lipids and fatty acids from oleaginous yeasts produced from lignocellulosic hydrolysates are promising sources for oleochemicals. Hence, selecting and developing robust yeast strains that can grow and produce lipids in lignocellulosic hydrolysates is pivotal to broaden their applicability and viability. Lipomyces starkeyi is an oleaginous yeast capable of growing and producing lipids using a diverse range of carbon sources. Its growth and lipid production have been demonstrated in lignocellulosic biomasses. Papiliotrema laurentii can also assimilate sugars derived from agricultural wastes, such as glucose and xylose from lignocellulosic biomasses, and convert them into high lipid amounts. However, wild P. laurentii strains are highly sensitive to acetic acid, one of the primary inhibitors in lignocellulosic hydrolysates. The understanding of multifactorial stress responses and yeast physiology can be facilitated by the application of holistic approaches, including biological networks and high-throughput data. Therefore, we hypothesized that the use of systems biology approaches, including genome-scale metabolic models (GEMs) and transcriptomics, as well as their integration, can support us to understand the metabolism and stress responses of oleaginous yeasts and identify suitable targets for metabolic engineering. Herein, we propose the first GEM of L. starkeyi, lista-GEM. We reconstructed lista-GEM using two high-quality oleaginous yeast models as templates and curated it to reflect the metabolism of L. starkeyi. The simulated phenotypes and predicted flux distributions were in good accordance with experimental data. Then, we predicted targets to improve lipid production in glucose, xylose, and glycerol. Enzymes related to lipid synthesis in the endoplasmic reticulum, such as stearoyl-CoA desaturase, fatty-acyl-CoA synthase, diacylglycerol acyltransferase, and glycerol-3-phosphate acyltransferase, were the main targets to improve lipid production. Glycolytic genes were also predicted as targets for overexpression. Pyruvate decarboxylase, acetaldehyde dehydrogenase, acetyl-CoA synthetase, adenylate kinase, inorganic diphosphatase, and triose-phosphate isomerase were predicted only when glycerol was the carbon source. Hence, lista-GEM provides multiple metabolic engineeringtargets to improve lipid production by L. starkeyi using carbon sources from agricultural and industrial wastes. Furthermore, we combined transcriptome and genome-scale metabolic modeling to deepen our understanding regarding the targets of acetic acid stress, as well as the adaptive responses in P. laurentii. Acetic acid stress promoted global expression changes and most repressed genes were related to transcriptional and translational processes. Under stress, the sensitive strain induced DNA mismatch repair mechanisms and meiosis, while the tolerant strain negatively regulated autophagy and the cell cycle. The tolerant strain induced processes responsible for increasing the intracellular pH (e.g., arginase, ornithine metabolism, urea cycle), detoxification of toxic compounds (e.g., glutathione metabolism), and proton efflux. The tolerant strain also presented a remarkable NAD(P)H pool in the metabolic modeling analysis, which might support the reducing power required by tolerance mechanisms. Otherwise, the sensitive strain induced genes related to cell wall biogenesis and cobalamin synthesis. Overall, the genes and pathways described herein as tolerant-related can be useful in future metabolic engineering strategies to improve the tolerance of P. laurentii to weak acids, boosting its application in lignocellulosic-based biorefineries. Keywords: Metabolic modeling; Transcriptomics; Non-Saccharomyces.Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - CNPQengUniversidade Federal de ViçosaMicrobiologia AgrícolaLevedurasMetabolismo - RegulaçãoPerfilação da expressão gênicaMicrobiologia AgrícolaAssessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approachesAvaliação da regulação metabólica e da resposta ao stress de leveduras oleaginosas através da biologia de sistemasinfo:eu-repo/semantics/publishedVersioninfo:eu-repo/semantics/doctoralThesisUniversidade Federal de ViçosaDepartamento de Microbiologia AgrícolaDoutor em Microbiologia AgrícolaViçosa - MG2024-01-30Doutoradoinfo:eu-repo/semantics/openAccessreponame:LOCUS Repositório Institucional da UFVinstname:Universidade Federal de Viçosa (UFV)instacron:UFVORIGINALtexto completo.pdftexto completo.pdftexto completoapplication/pdf4042961https://locus.ufv.br//bitstream/123456789/32091/1/texto%20completo.pdfe0b6cbfa411b96f8042e32ea5f94a731MD51LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-81748https://locus.ufv.br//bitstream/123456789/32091/2/license.txt8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33MD52123456789/320912024-02-01 17:25:26.863oai:locus.ufv.br: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Repositório InstitucionalPUBhttps://www.locus.ufv.br/oai/requestfabiojreis@ufv.bropendoar:21452024-02-01T20:25:26LOCUS Repositório Institucional da UFV - Universidade Federal de Viçosa (UFV)false
dc.title.en.fl_str_mv Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
dc.title.pt-BR.fl_str_mv Avaliação da regulação metabólica e da resposta ao stress de leveduras oleaginosas através da biologia de sistemas
title Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
spellingShingle Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
Almeida, Eduardo Luís Menezes de
Leveduras
Metabolismo - Regulação
Perfilação da expressão gênica
Microbiologia Agrícola
title_short Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
title_full Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
title_fullStr Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
title_full_unstemmed Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
title_sort Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches
author Almeida, Eduardo Luís Menezes de
author_facet Almeida, Eduardo Luís Menezes de
author_role author
dc.contributor.authorLattes.pt-BR.fl_str_mv http://lattes.cnpq.br/3157480507007265
dc.contributor.none.fl_str_mv Brandão, Marcelo Mendes
dc.contributor.author.fl_str_mv Almeida, Eduardo Luís Menezes de
dc.contributor.advisor1.fl_str_mv Silveira, Wendel Batista da
contributor_str_mv Silveira, Wendel Batista da
dc.subject.pt-BR.fl_str_mv Leveduras
Metabolismo - Regulação
Perfilação da expressão gênica
topic Leveduras
Metabolismo - Regulação
Perfilação da expressão gênica
Microbiologia Agrícola
dc.subject.cnpq.fl_str_mv Microbiologia Agrícola
description As atuais crises ambientais promovidas pelo uso extensivo de petróleo têm realçado a necessidade de cadeias produtivas sustentáveis. Lipídios e ácidos graxos produzidos a partir de hidrolisados lignocelulósicos por leveduras oleaginosas são fontes promissoras de oleoquímicos. Portanto, a seleção e construção de linhagens robustas de leveduras capazes de crescer e produzir lipídios em hidrolisados lignocelulósicos é essencial para ampliar sua aplicação e viabilidade. Lipomyces starkeyi é uma levedura oleaginosa que cresce e produz lipídios a partir de diversas fontes de carbono. O seu crescimento e produção de lipídios já foram demonstrados em biomassas lignocelulósicas. Papiliotrema laurentii também pode assimilar açúcares derivados de subprodutos agrícolas, como a glucose e a xilose de biomassas lignocelulósicas, e convertê-los em elevadas concentrações de lipídios. No entanto, linhagens selvagens de P. laurentii são sensíveis ao ácido acético, um dos principais inibidores presentes em hidrolisados lignocelulósicos. A compreensão das respostas adaptativas e da fisiologia dessas leveduras pode ser facilitada por abordagens holísticas, incluindo redes biológicas e ômicas. Portanto, a nossa hipótese é que o emprego de abordagens de biologia de sistemas, incluindo modelos metabólicos em escala genômica (MMEG) e transcriptômica, bem como a sua integração, pode auxiliar na compreensão do metabolismo e das respostas ao estresse de leveduras oleaginosas e determinação de alvos para a engenharia metabólica. Neste trabalho, propomos o primeiro MMEG de L. starkeyi, lista-GEM. Reconstruímos o lista-GEM usando dois modelos de leveduras oleaginosas de alta qualidade como templates e conduzimos a curadoria manual para refletir o metabolismo de L. starkeyi. Os fenótipos simulados e as distribuições de fluxo previstas apresentaram boa conformidade com os dados experimentais. Em seguida, prevemos alvos para melhorar a produção de lípidos em glicose, xilose e glicerol. As enzimas relacionadas com a síntese de lípidos no retículo endoplasmático, como estearoil- CoA dessaturase, acil-CoA sintase, diacilglicerol aciltransferase e glicerol-3-fosfato aciltransferase, foram os principais alvos para melhorar a produção de lípidos. Genes glicolíticos também foram previstos como alvos de superexpressão. Piruvato descarboxilase,acetaldeído desidrogenase, acetil-CoA sintetase, adenilato quinase, difosfatase inorgânica e triose-fosfato isomerase foram previstas apenas quando o glicerol era a fonte de carbono. Dessa forma, o lista-GEM fornece múltiplos alvos de engenharia metabólica para melhorar a produção de lípidos por L. starkeyi a partir de resíduos agrícolas e industriais. Em seguida, combinamos o transcriptoma e a modelação metabólica em escala genômica para aprofundar o nosso conhecimento sobre os alvos do estresse por ácido acético, bem como sobre as respostas adaptativas de P. laurentii. O ácido acético promoveu alterações globais de expressão e a maioria dos genes reprimidos estava relacionada com processos transcricionais e translacionais. Sob estresse, a linhagem sensível induziu mecanismos de reparo do DNA e meiose, enquanto a linhagem tolerante regulou negativamente a autofagia e o ciclo celular. A linhagem tolerante induziu também processos responsáveis pelo aumento do pH intracelular (ex. arginase, metabolismo da ornitina, ciclo da ureia), detoxificação (ex. metabolismo da glutationa) e efluxo de prótons. A linhagem tolerante também apresentou uma reserva notável de NAD(P)H na análise de modelagem metabólica, o que suportaria o poder redutor exigido pelos mecanismos de tolerância. Por outro lado, a estirpe sensível induziu genes relacionados com a biogênese da parede celular e a síntese de cobalamina. Em geral, os genes e vias aqui descritos como relacionados com a tolerância podem ser úteis em futuras estratégias de engenharia metabólica para melhorar a tolerância de P. laurentii a ácidos fracos, impulsionando a sua aplicação em biorrefinarias baseadas em lignocelulose. Palavras-chave: Modelagem metabólica; Transcriptômica; Não-Saccharomyces.
publishDate 2024
dc.date.accessioned.fl_str_mv 2024-02-01T20:25:26Z
dc.date.available.fl_str_mv 2024-02-01T20:25:26Z
dc.date.issued.fl_str_mv 2024-01-30
dc.type.status.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/doctoralThesis
format doctoralThesis
status_str publishedVersion
dc.identifier.citation.fl_str_mv ALMEIDA, Eduardo Luís Menezes de. Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches.2024. 189 f. Tese (Doutorado em Microbiologia Agrícola) - Universidade Federal de Viçosa, Viçosa. 2024.
dc.identifier.uri.fl_str_mv https://locus.ufv.br//handle/123456789/32091
dc.identifier.doi.pt-BR.fl_str_mv https://doi.org/10.47328/ufvbbt.2024.019
identifier_str_mv ALMEIDA, Eduardo Luís Menezes de. Assessment of metabolic regulation and stress response in oleaginous yeasts by systems biology approaches.2024. 189 f. Tese (Doutorado em Microbiologia Agrícola) - Universidade Federal de Viçosa, Viçosa. 2024.
url https://locus.ufv.br//handle/123456789/32091
https://doi.org/10.47328/ufvbbt.2024.019
dc.language.iso.fl_str_mv eng
language eng
dc.rights.driver.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
eu_rights_str_mv openAccess
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal de Viçosa
dc.publisher.program.fl_str_mv Microbiologia Agrícola
publisher.none.fl_str_mv Universidade Federal de Viçosa
dc.source.none.fl_str_mv reponame:LOCUS Repositório Institucional da UFV
instname:Universidade Federal de Viçosa (UFV)
instacron:UFV
instname_str Universidade Federal de Viçosa (UFV)
instacron_str UFV
institution UFV
reponame_str LOCUS Repositório Institucional da UFV
collection LOCUS Repositório Institucional da UFV
bitstream.url.fl_str_mv https://locus.ufv.br//bitstream/123456789/32091/1/texto%20completo.pdf
https://locus.ufv.br//bitstream/123456789/32091/2/license.txt
bitstream.checksum.fl_str_mv e0b6cbfa411b96f8042e32ea5f94a731
8a4605be74aa9ea9d79846c1fba20a33
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv LOCUS Repositório Institucional da UFV - Universidade Federal de Viçosa (UFV)
repository.mail.fl_str_mv fabiojreis@ufv.br
_version_ 1801213069968277504